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馬鞭草總苷對(duì)大鼠慢性前列腺炎/骨盆疼痛綜合征的改善作用及機(jī)制研究

2022-03-29 08:11:10李長(zhǎng)建焦玉濤王玉華吳春磊
關(guān)鍵詞:劑量模型

李長(zhǎng)建,焦玉濤,王玉華,吳春磊

(1.新鄉(xiāng)醫(yī)學(xué)院第三附屬醫(yī)院泌尿外科,河南新鄉(xiāng) 453003;2.新鄉(xiāng)醫(yī)學(xué)院第一附屬醫(yī)院泌尿外科,河南新鄉(xiāng) 453100)

慢性前列腺炎/骨盆疼痛綜合征(chronic prostatitis/chronic pelvic pain syndrome,CP/CPPS)是成年男性常見(jiàn)的泌尿系統(tǒng)疾病,占慢性前列腺炎的90%以上,本病表現(xiàn)為不同程度的下尿路癥狀和性功能障礙,并伴有頑固持續(xù)性的盆腔會(huì)陰區(qū)域疼痛,嚴(yán)重影響患者的生活[1-2]。馬鞭草(Verbena officinalisL.)為中醫(yī)臨床治療前列腺炎的常用中草藥,具有補(bǔ)腎益肝、利水消腫、潤(rùn)腸通便之功效[3]。馬鞭草主要活性成分——馬鞭草總苷對(duì)消痔靈誘導(dǎo)的慢性非細(xì)菌性前列腺炎(chronic nonbacterial protatitis,CNP)小鼠和大鼠模型均有較好的改善作用[4-5],因此,馬鞭草總苷對(duì)CP/CPRS是否具有抗炎、鎮(zhèn)痛作用值得進(jìn)一步深入研究。p38絲裂原活化蛋白激酶(p38MAPK)信號(hào)通路與動(dòng)物體內(nèi)的應(yīng)激反應(yīng)和免疫調(diào)控密切相關(guān),可通過(guò)調(diào)節(jié)炎性因子的活性廣泛參與慢性前列腺炎疼痛的發(fā)生與發(fā)展[6]。本研究建立CP/CPPS大鼠模型,觀察p38MAPK信號(hào)通路及輔助性T細(xì)胞(Th)1/Th2細(xì)胞平衡的變化,并進(jìn)一步探討馬鞭草總苷對(duì)CP/CPPS的抗炎、鎮(zhèn)痛作用及具體機(jī)制,以期為臨床上CP/CPPS的治療提供新的方法和依據(jù),現(xiàn)將研究結(jié)果報(bào)道如下。

1 材料與方法

1.1 動(dòng)物SPF級(jí)雄性SD大鼠45只,8周齡,體質(zhì)量200~220 g,購(gòu)自北京維通利華實(shí)驗(yàn)動(dòng)物技術(shù)有限公司,動(dòng)物質(zhì)量合格證號(hào):201912108,動(dòng)物生產(chǎn)許可證號(hào):SCXK(京)2019-1-005。實(shí)驗(yàn)大鼠飼養(yǎng)及組織取材均于新鄉(xiāng)醫(yī)學(xué)院實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心完成。飼養(yǎng)環(huán)境:室溫(23±2)℃,12 h循環(huán)明暗燈光,恒定濕度。飼養(yǎng)期間給予嚙齒類動(dòng)物標(biāo)準(zhǔn)顆粒飼料,自由飲水。

1.2 藥品與試劑馬鞭草總苷(總環(huán)烯醚萜苷含量為51.26%,批號(hào):20190327),購(gòu)自江蘇南京青澤醫(yī)藥科技有限公司;吸附無(wú)細(xì)胞百白破聯(lián)合疫苗(批號(hào):20190408-3)購(gòu)自武漢生物制品研究所;完全弗式佐劑,大鼠腫瘤壞死因子α(TNF-α)、白細(xì)胞介素1β(IL-1β)、白細(xì)胞介素8(IL-8)酶聯(lián)免疫吸咐分析(ELISA)試劑盒購(gòu)自美國(guó)Sigma公司;兔抗大鼠p38MAPK、p-p38MAPK多克隆抗體及基質(zhì)金屬蛋白酶9(MMP-9)單克隆抗體購(gòu)自美國(guó)Abcam公司。

1.3 儀器IX73倒置熒光顯微鏡購(gòu)自日本奧林巴斯光學(xué)有限公司;BD FACS Calibur流式細(xì)胞儀購(gòu)自Beckman公司;Von Frey纖維絲測(cè)痛儀購(gòu)自意大利Ugo Basile Srl公司;冷凍干燥機(jī)購(gòu)自松源華興有限公司;Chemi Doc XRS+System凝膠成像儀購(gòu)自美國(guó)Bio-Rad公司;Multiskan Sky 450 nm酶標(biāo)儀購(gòu)自美國(guó)Thermo Fisher Scientific公司。

1.4 CP/CPPS大鼠模型的建立參考文獻(xiàn)研究[7]的方法制備前列腺蛋白提純液:處死5只雄性SD大鼠,剝離全部前列腺組織,加入等質(zhì)量的生理鹽水溶液制備成組織勻漿,低溫離心(15 000 r/min,離心半徑15 cm)30 min,收集上清,用冷凍干燥,機(jī)制備成凍干粉末(-80℃保存),臨用前與適量生理鹽水混合,制成1.0 mg/mL的前列腺蛋白提純液。參考文獻(xiàn)研究[8]的方法制備CP/CPPS大鼠模型:大鼠適應(yīng)性喂養(yǎng)1周后,在實(shí)驗(yàn)的第0、7、14、28天,用10 g/L戊巴比妥鈉腹腔麻醉,于大鼠盆腔區(qū)域皮下及雙側(cè)肩胛皮下多點(diǎn)(≥6)注射前列腺蛋白提純液和完全弗氏佐劑(1∶1 200 μL),同時(shí),腹腔注射0.5 mL百白破疫苗[8]。

1.5 動(dòng)物分組與給藥方法將造模成功的32只CP/CPPS模型大鼠按照隨機(jī)數(shù)字表分為模型對(duì)照組,馬鞭草總苷低、中、高劑量組,每組8只,另設(shè)8只正常大鼠作為空白對(duì)照組。在建模第30天開(kāi)始進(jìn)行馬鞭草總苷的干預(yù),連續(xù)22 d,每日1次。馬鞭草總苷低、中、高劑量組分別對(duì)應(yīng)灌胃30、60、120 mg·kg-1的馬鞭草總苷[4],空白對(duì)照組和模型對(duì)照組則灌胃等體積的生理鹽水。末次給藥后的第2天,進(jìn)行后續(xù)相關(guān)指標(biāo)檢測(cè)。

1.6 觀察指標(biāo)與方法

1.6.1 機(jī)械性異常痛敏測(cè)定末次給藥后的第2天,參考文獻(xiàn)研究[9]的方法,用Von Frey纖維絲測(cè)痛儀測(cè)定各組大鼠機(jī)械性痛閾。安靜環(huán)境下,將大鼠放置在疼痛檢測(cè)鋼絲籠內(nèi),在適應(yīng)10 min后,用Von Frey纖維絲垂直刺激其骨盆區(qū)域10次,每次進(jìn)行10 s,2次刺激間隔20 s,刺激程度由輕及重(0.008~4 g),待大鼠表現(xiàn)出立即舔或抓蹭刺激區(qū)域、腹部急劇收縮或跳躍等陽(yáng)性反應(yīng)時(shí),記錄測(cè)痛儀的壓力值,即為痛反應(yīng)閾值(g)。

1.6.2 前列腺指數(shù)測(cè)定末次給藥后第2天,各組大鼠禁食后稱定體質(zhì)量,處死大鼠,剝離前列腺組織并準(zhǔn)確稱質(zhì)量,計(jì)算前列腺指數(shù)(前列腺指數(shù)=前列腺濕質(zhì)量/體質(zhì)量×100%)。

1.6.3 前列腺組織病理檢查將上述獲取的前列腺組織參考文獻(xiàn)研究[10]的方法制備病理學(xué)切片。用體積分?jǐn)?shù)4%甲醛溶液固定24 h,二甲苯透明,石蠟包埋,蘇木素-伊紅染色后,在顯微鏡下觀察前列腺標(biāo)本的組織病理學(xué)改變,分析各組大鼠前列腺的腺體結(jié)構(gòu)、導(dǎo)管以及腺體周圍間質(zhì)的差異。

1.6.4 流式細(xì)胞術(shù)檢測(cè)外周血Th1、Th2淋巴細(xì)胞百分比參考文獻(xiàn)研究[11]的方法將獲得的外周血進(jìn)行細(xì)胞培養(yǎng)、活化及細(xì)胞表面抗原標(biāo)記、破膜及胞內(nèi)細(xì)胞因子染色。方法:100 μL外周血加入100 μL RPMI 1640培養(yǎng)液、刺激劑佛醇乙酯(PMA)(25 ng/mL)和離子霉素(Ion-omycin)(1 μg/mL),隨后加入蛋白轉(zhuǎn)運(yùn)阻斷劑藍(lán)菌素A(BFA)(10 μg/mL),混勻后在體積分?jǐn)?shù)5%CO2培養(yǎng)箱中37℃培養(yǎng)4 h,各加入CD3-PC5和CD8-FITC進(jìn)行標(biāo)記。加入Fix&Perm破膜劑分別固定、破膜和溶血。加入抗大鼠IFN-γ PE、IL-4 PE進(jìn)行胞內(nèi)細(xì)胞因子染色,隨后上機(jī)檢測(cè)。使用CD3+CD8-設(shè)門來(lái)圈定CD4+T細(xì)胞群,在收集1×104個(gè)細(xì)胞后,使用Cellquest軟件分析得出Th1(CD3+CD8-/IFNγ+)和Th2(CD3+CD8-/IL-4+)的百分比及相應(yīng)細(xì)胞分布。

1.6.5 ELISA法檢測(cè)前列腺組織TNF-α、IL-1β及IL-8含量將上述獲取的前列腺組織參考文獻(xiàn)研究[12]的方法制備前列腺組織勻漿,4℃離心(3 000 r/min,離心半徑15 cm)15 min,分離上清,嚴(yán)格按照TNF-α、IL-1β、IL-8試劑盒說(shuō)明書(shū)步驟操作,最后應(yīng)用全自動(dòng)酶標(biāo)儀在450 nm波長(zhǎng)處檢測(cè)光密度值,計(jì)算各指標(biāo)含量。

1.6.6 蛋白免疫印跡(Western Blot)法檢測(cè)前列腺組織總p38MAPK、p-p38MAPK及MMP-9的表達(dá)取前列腺組織,參考文獻(xiàn)研究[13]的方法制備前列腺組織勻漿,提取總蛋白,用二喹啉甲酸(BCA)試劑盒進(jìn)行蛋白定量。繼而常規(guī)上樣,聚丙烯酰胺凝膠電泳,轉(zhuǎn)膜,封閉,兔抗鼠MMP-9單克隆一抗(1∶100稀釋)、p38MAPK(1∶100稀釋)多克隆一抗和p-p38MAPK(1∶100稀釋)多克隆一抗孵育及辣根過(guò)氧化物酶標(biāo)志鼠抗兔二抗(1∶2 000稀釋)孵育,化學(xué)底物發(fā)光法顯色,圖像掃描分析,最后應(yīng)用Image-QuaNT軟件測(cè)量其光密度,以各β-actin為內(nèi)參對(duì)照分析。

1.7 統(tǒng)計(jì)方法采用SPSS 21.0統(tǒng)計(jì)方法進(jìn)行數(shù)據(jù)分析,計(jì)量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示,多組間均數(shù)比較采用單因素方差分析(One-way ANOVA)檢驗(yàn),兩兩比較采用LSD-t檢驗(yàn)。以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

2 結(jié)果

2.1 各組大鼠前列腺組織病理變化比較圖1結(jié)果顯示:空白對(duì)照組大鼠前列腺組織結(jié)構(gòu)完整清晰,未見(jiàn)水腫、充血,腺腔和間質(zhì)內(nèi)未見(jiàn)炎癥細(xì)胞浸潤(rùn),腺泡間纖維分布正常;模型對(duì)照組大鼠前列腺組織出現(xiàn)了嚴(yán)重的結(jié)構(gòu)紊亂,可見(jiàn)明顯的水腫和充血,腺腔內(nèi)分泌物明顯減少,腺腔和間質(zhì)內(nèi)有大量的炎癥細(xì)胞浸潤(rùn),腺腔壁上皮細(xì)胞明顯增生;馬鞭草總苷低劑量組大鼠前列腺組織可見(jiàn)輕微損傷破壞,可見(jiàn)水腫和充血,腺腔和間質(zhì)內(nèi)有中等量的纖維增生及炎癥細(xì)胞浸潤(rùn);馬鞭草總苷中劑量組大鼠前列腺組織未見(jiàn)明顯損傷破壞,未見(jiàn)水腫和充血,但腺腔和間質(zhì)內(nèi)有少量的纖維增生及炎癥細(xì)胞浸潤(rùn);馬鞭草總苷高劑量組大鼠前列腺組織同樣未見(jiàn)明顯的損傷破壞、水腫和充血,整個(gè)前列腺基底膜較為完整,腺腔和間質(zhì)未有纖維增生,但可見(jiàn)較少量的炎癥細(xì)胞浸潤(rùn)。

圖1 各組大鼠前列腺組織病理變化比較(HE染色法,×200)Figure 1 Comparison of histopathological changes of prostate tissues in various groups of rats(by HE staining,×200)

2.2 各組大鼠前列腺指數(shù)、機(jī)械痛閾值比較表1結(jié)果顯示:前列腺指數(shù)與機(jī)械痛閾值各組間比較,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05或P<0.01)。與空白對(duì)照組比較,模型對(duì)照組大鼠前列腺指數(shù)顯著增加(P<0.05),機(jī)械痛閾值顯著降低(P<0.01);與模型對(duì)照組比較,馬鞭草總苷低、中、高劑量組的前列腺指數(shù)顯著降低(P<0.05)、機(jī)械痛閾值均顯著增加(P<0.05或P<0.01),且呈劑量依賴性。

表1 各組大鼠前列腺指數(shù)、機(jī)械痛閾值比較Table 1 Comparison of prostate index and mechanical pain threshold in various groups of rats(±s)

表1 各組大鼠前列腺指數(shù)、機(jī)械痛閾值比較Table 1 Comparison of prostate index and mechanical pain threshold in various groups of rats(±s)

①P<0.05,②P<0.01,與空白對(duì)照組比較;③P<0.05,④P<0.01,與模型對(duì)照組比較

前列腺指數(shù)/(mg?g-1)2.05±0.18 3.57±0.26①3.14±0.31①③2.52±0.24①③2.27±0.21③4.569 0.023機(jī)械痛閾值/g 71.22±6.75 41.57±3.98②47.59±4.41②③54.66±4.69②③66.78±5.38①④6.583 0.008組別空白對(duì)照組模型對(duì)照組馬鞭草總苷低劑量組馬鞭草總苷中劑量組馬鞭草總苷高劑量組F值P值鼠數(shù)/只8 8 8 8 8

2.3 各組大鼠前列腺組織TNF-α、IL-1β及IL-8含量比較表2結(jié)果顯示:TNF-α、IL-1β及IL-8含量各組間比較,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05或P<0.01)。與空白對(duì)照組比較,模型對(duì)照組的TNF-α、IL-1β及IL-8含量均顯著增加(P<0.01);與模型對(duì)照組比較,馬鞭草總苷低、中、高劑量組的TNF-α、IL-1β及IL-8含量均顯著降低(P<0.05或P<0.01),且呈劑量依賴性。

表2 各組大鼠前列腺組織TNF-α、IL-1β及IL-8含量比較Table 2 Comparison of contents of TNF-α,IL-1β and IL-8 in the prostate tissues in various groups of rats (±s,ng·g-1 prot)

表2 各組大鼠前列腺組織TNF-α、IL-1β及IL-8含量比較Table 2 Comparison of contents of TNF-α,IL-1β and IL-8 in the prostate tissues in various groups of rats (±s,ng·g-1 prot)

①P<0.05,②P<0.01,與空白對(duì)照組比較;③P<0.05,④P<0.01,與模型對(duì)照組比較

組別空白對(duì)照組模型對(duì)照組馬鞭草總苷低劑量組馬鞭草總苷中劑量組馬鞭草總苷高劑量組F值P值IL-8 7.25±0.68 18.65±1.57②15.43±1.09①③11.74±0.84①③8.41±0.73③13.457 0.003鼠數(shù)/只8 8 8 8 8 TNF-α 17.32±3.52 35.42±3.73②30.42±3.36②③23.28±2.91①③19.47±2.21④6.283 0.009 IL-1β 23.46±2.68 47.35±3.75②40.68±3.09②③33.81±2.69②③26.59±1.98①④18.662<0.001

2.4 各組大鼠前列腺組織p38MAPK信號(hào)通路相關(guān)蛋白表達(dá)的比較圖2、表3結(jié)果顯示:p38MAPK蛋白相對(duì)表達(dá)量各組間比較,差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05),但p-p38MAPK、MMP-9蛋白相對(duì)表達(dá)量及p-p38MAPK/p38MAPK比值組間比較,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。與空白對(duì)照組比較,模型對(duì)照組的p-p38MAPK、MMP-9蛋白相對(duì)表達(dá)量及p-p38MAPK/p38MAPK比值均顯著增加(P<0.05);與模型對(duì)照組比較,馬鞭草總苷低、中、高劑量組的p-p38MAPK、MMP-9蛋白相對(duì)表達(dá)量及p-p38MAPK/p38MAPK比值均顯著降低(P<0.05),且呈劑量依賴性。

表3 各組大鼠前列腺組織p38MAPK信號(hào)通路相關(guān)蛋白表達(dá)的比較Table 3 Comparison of expression of p38MAPK signaling pathway-related proteins in prostate tissues of various groups of rats (x±s)

圖2 各組大鼠前列腺組織p38MAPK信號(hào)通路相關(guān)蛋白Western Blot電泳條帶Figure 2 Western Blot electrophoretic bands of p38MAPK signaling pathway-related proteins in prostate tissues in various groups of rats

2.5 各組大鼠外周血Th1、Th2淋巴細(xì)胞百分比及Th1/Th2比值的比較表4結(jié)果顯示:Th1淋巴細(xì)胞百分比及Th1/Th2比值各組間比較,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。與空白對(duì)照組比較,模型對(duì)照組大鼠Th1淋巴細(xì)胞百分比及Th1/Th2比值顯著升高(P<0.05),Th2淋巴細(xì)胞百分比顯著降低(P<0.05);與模型對(duì)照組比較,馬鞭草總苷低、中、高劑量組的Th1淋巴細(xì)胞百分比及Th1/Th2比值顯著降低(P<0.05),Th2淋巴細(xì)胞百分比顯著升高(P<0.05),且呈劑量依賴性。

表4 各組大鼠外周血Th1、Th2淋巴細(xì)胞百分比及Th1/Th2比值的比較Table 4 Comparison of Th1,Th2 lymphocyte percentage and Th1/Th2 ratio in peripheral blood in various groups of rats (x±s)

3 討論

慢性前列腺炎/骨盆疼痛綜合征(CP/CPPS)是慢性前列腺炎的常見(jiàn)類型,臨床主要以改善排尿不暢、緩解疼痛、提高患者生活質(zhì)量為主[14]。馬鞭草總苷為馬鞭草中的主要活性成分。在本研究中,馬鞭草總苷對(duì)CP/CPPS模型大鼠干預(yù)后,可顯著保護(hù)前列腺組織,減少前列腺的纖維增生及炎癥細(xì)胞浸潤(rùn),同時(shí)可明顯降低模型大鼠的前列腺指數(shù),不同程度地改善前列腺增大的癥狀。這表明馬鞭草總苷對(duì)CP/CPPS具有較好的改善作用。陰部或前列腺區(qū)域酸脹痛甚至劇痛是困擾CP/CPPS綜合征患者的主要問(wèn)題,在臨床一直備受重視[15]。在本研究中,馬鞭草總苷的干預(yù)可明顯提高CP/CPPS模型大鼠的機(jī)械痛閾值,表明馬鞭草總苷能夠有效緩解CP/CPPS的疼痛癥狀。預(yù)測(cè)臨床應(yīng)用馬鞭草可能可以有效克服CP/CPPS患者伴隨的持續(xù)性、難治性的疼痛問(wèn)題,故對(duì)此作用及機(jī)制我們做了進(jìn)一步的探討。

有研究表明,在Ⅲ型前列腺炎患者的前列腺液中均發(fā)現(xiàn)了IL-1β、TNF-α等炎癥因子的升高,認(rèn)為該炎性細(xì)胞因子參與了CP/CPPS的病理進(jìn)展,其表達(dá)水平與CP/CPPS患者的病理性疼痛等問(wèn)題密切相關(guān)[16]。在本研究中,馬鞭草總苷的干預(yù)能夠明顯減少CP/CPPS模型大鼠前列腺組織中TNF-α、IL-1β及IL-8炎性因子的含量,并且隨著劑量的增加,降低作用更明顯,這與上述馬鞭草總苷改善CP/CPPS模型大鼠前列腺病理進(jìn)程及疼痛閾值結(jié)果相一致。p38 MAPK信號(hào)通路廣泛參與了動(dòng)物體內(nèi)的應(yīng)激反應(yīng)和炎癥反應(yīng),有研究表明,炎癥因子TNF-α作為p38 MAPK信號(hào)通路的上游啟動(dòng)因子可激活p38 MAPK信號(hào)通路,使其磷酸化水平提高,繼而又加劇炎性因子和MMP-9的表達(dá),造成前列腺炎組織進(jìn)一步損害[17-18]。在本研究中,馬鞭草總苷干預(yù)后,CP/CPPS模型大鼠前列腺組織MMP-9蛋白相對(duì)表達(dá)量及p-p38MAPK/p38MAPK比值均顯著降低,表明馬鞭草總苷抑制了p38MAPK蛋白的磷酸化,其可通過(guò)調(diào)控p38MAPK信號(hào)通路降低炎癥因子的表達(dá),進(jìn)而改善CP/CPPS的炎癥反應(yīng)和疼痛。

自身免疫和T細(xì)胞增殖反應(yīng)參與了CP/CPPS的病理進(jìn)程,T細(xì)胞亞群(Th1/Th2)之間的相互協(xié)調(diào)對(duì)于維持男性泌尿生殖系統(tǒng)的正常免疫平衡尤為重要,Th1細(xì)胞分泌的IFNγ可抑制Th2類細(xì)胞因子的產(chǎn)生,而Th2細(xì)胞分泌的IL-4則能夠下調(diào)Th1細(xì)胞的功能[15,19]。在本研究中,馬鞭草總苷干預(yù)后,CP/CPPS模型大鼠外周血Th1淋巴細(xì)胞百分比及Th1/Th2比值顯著降低,表明馬鞭草總苷能夠調(diào)節(jié)T細(xì)胞亞群比例,對(duì)CP/CPPS過(guò)程中的Th1/Th2漂移起到恢復(fù)作用。

綜上所述,馬鞭草總苷能有效降低CP/CPPS模型大鼠的前列腺指數(shù)。抑制炎癥反應(yīng),其作用機(jī)制可能與下調(diào)p38MAPK信號(hào)通路相關(guān)調(diào)控蛋白和調(diào)節(jié)Th1/Th2細(xì)胞亞群比例有關(guān)。本研究初步探究了馬鞭草總苷治療CP/CPPS的抗炎、鎮(zhèn)痛作用,顯示馬鞭草總苷臨床治療CP/CPPS有一定的應(yīng)用前景。

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