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食管鱗癌原位模型小鼠腸道菌群分析

2022-03-07 06:20:42張玉雙于富洋吳忠冰王一然李晶
中國(guó)全科醫(yī)學(xué) 2022年8期
關(guān)鍵詞:物種小鼠差異

張玉雙,于富洋,吳忠冰,王一然,李晶,*

本研究背景:

已有研究表明腸道菌群與多種腫瘤的發(fā)生、發(fā)展和治療密切相關(guān),尤其在結(jié)直腸癌、肝癌方面的研究較多。食管癌是我國(guó)的高發(fā)腫瘤,其發(fā)病率與死亡率均為世界平均水平的2 倍以上。我國(guó)以食管鱗癌為主,早期行根治術(shù)后預(yù)后較好,但相當(dāng)多的患者就診時(shí)已處于中晚期,失去手術(shù)機(jī)會(huì)。因此尋找簡(jiǎn)便易取材的檢驗(yàn)方法,提高食管癌早期診斷率并給予干預(yù)措施十分重要。

本研究創(chuàng)新點(diǎn):

(1)高比例成功制備了食管鱗癌原位模型小鼠,模擬了食管鱗癌發(fā)生、發(fā)展的過(guò)程,為同類(lèi)研究提供了基礎(chǔ)。(2)選擇飼養(yǎng)環(huán)境一致的小鼠作為研究對(duì)象,可以減少因?yàn)轱嬍场h(huán)境等因素對(duì)菌群研究結(jié)果造成的誤差。(3)通過(guò)初步對(duì)食管癌差異菌屬的篩選,為下一步探討機(jī)制研究提供基礎(chǔ)。

最新的《全球癌癥統(tǒng)計(jì)報(bào)告》數(shù)據(jù)顯示,2020 年全球食管癌新發(fā)病例數(shù)為60.4 萬(wàn)例,死亡病例數(shù)為54.4 萬(wàn)例,分別占全球癌癥新發(fā)、死亡總病例數(shù)的3.1%、5.5%[1]。食管癌發(fā)病風(fēng)險(xiǎn)地域差異較大,我國(guó)是食管癌發(fā)病高風(fēng)險(xiǎn)國(guó)家,據(jù)統(tǒng)計(jì)2020 年我國(guó)新發(fā)食管癌病例數(shù)為32.4 萬(wàn)例,死亡病例數(shù)為30.1 萬(wàn)例,分別占全球食管癌新發(fā)、死亡總病例數(shù)的53.7%、55.3%[2]。我國(guó)食管癌患者病理類(lèi)型以鱗癌為主,早期行根治術(shù)后預(yù)后較好,但由于相當(dāng)多的食管癌患者確診時(shí)已處于中晚期,失去了手術(shù)機(jī)會(huì),因此提高食管癌早期診斷率仍具有十分重要的意義。

隨著高通量測(cè)序技術(shù)的應(yīng)用與發(fā)展,腸道微生態(tài)研究已成為目前腫瘤領(lǐng)域研究的熱點(diǎn)之一。有研究證實(shí)腸道菌群在腫瘤的發(fā)生、發(fā)展中具有重要作用,食管鱗癌患者口腔、癌組織及癌旁正常組織中菌群結(jié)構(gòu)發(fā)生了改變并與食管癌的發(fā)生有關(guān)[3-4]。因腸道菌群的影響因素較多,本研究特選取飼養(yǎng)環(huán)境可控的食管鱗癌原位模型小鼠,以觀察與食管鱗癌相關(guān)的腸道菌群結(jié)構(gòu)變化、篩選出特異性改變的腸道菌屬,為食管鱗癌的早期篩查提供參考。

1 材料與方法

1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物 從北京維通利華實(shí)驗(yàn)動(dòng)物技術(shù)有限公司購(gòu)買(mǎi)雌性SPF 級(jí)C57BL/6 小鼠20 只〔合格證號(hào):SCXK(京)2016-0006〕,體質(zhì)量14~17 g,鼠齡6 周。適應(yīng)性喂養(yǎng)1 周后將所有小鼠隨機(jī)分為對(duì)照組(DZ 組)和模型組(MX 組),每組10 只。所有實(shí)驗(yàn)操作嚴(yán)格遵照河北醫(yī)科大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心指南執(zhí)行,遵守動(dòng)物保護(hù)、動(dòng)物倫理原則及相關(guān)規(guī)定。本實(shí)驗(yàn)時(shí)間為2020 年8 月至2021 年5 月。

1.2 干預(yù)方法 DZ 組小鼠常規(guī)喂養(yǎng)32 周,全程給予普通飲用水;MX 組小鼠按照造模方法常規(guī)喂養(yǎng)并給予含0.1 mg/ml 的誘癌劑4-硝基喹啉-1-氧化物(4NQO)飲用水喂養(yǎng)16 周,之后給予普通飲用水喂養(yǎng)至32 周。4NQO 飲用水制備方法:將誘癌劑4NQO(購(gòu)自Sigma-Aldrich 公司,型號(hào):N8141)溶解于1,2 丙二醇,配制成濃度為2%的母液并保存于-20 ℃冰箱,使用時(shí)按照0.1 mg/ml 濃度比例混入飲用水中。

1.3 糞便的無(wú)菌收集與處理 喂養(yǎng)32 周后收集兩組小鼠糞便:在籠具里面放入干凈的濾紙后將小鼠依次放入,每籠1 只;用鑷子輕輕刺激小鼠下腹和肛門(mén),待小鼠排便后立即用凍存管進(jìn)行收集;將凍存管做好標(biāo)記后放入液氮中,5 min 后再將凍存管放入-80 ℃冰箱中保存。最終共收集到20 個(gè)糞便標(biāo)本,每組10 個(gè)。上述操作均在滅菌超凈臺(tái)上進(jìn)行,且所用材料均采用紫外線滅菌處理。

1.4 糞便樣本檢測(cè)與數(shù)據(jù)分析 采用十六烷基三甲基溴化銨(CTAB 法)提取糞便標(biāo)本基因組DNA,應(yīng)用16SV34 區(qū)域引物序列341F:CCTAYGGGRBGCASCAG、806R:GGACTACNNGGGTATCTAAT 進(jìn)行聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(PCR)擴(kuò)增;將PCR 產(chǎn)物進(jìn)行磁珠純化,并根據(jù)PCR 產(chǎn)物濃度進(jìn)行等量混樣,充分混勻后使用2%瓊脂糖凝膠電泳,然后采用膠回收試劑盒回收目的條帶以純化產(chǎn)物;最后使用TruSeq? DNA PCR-Free Sample PreParation Kit 建庫(kù)試劑盒進(jìn)行文庫(kù)構(gòu)建,經(jīng)Qubit、Q-PCR 定量檢測(cè)構(gòu)建文庫(kù)合格后使用NovaSeq6000 進(jìn)行上機(jī)測(cè)序。

通過(guò)對(duì)測(cè)序序列(Reads)進(jìn)行拼接、質(zhì)控和過(guò)濾,以97%的一致性將序列聚類(lèi)成為基于序列間相似度的分類(lèi)操作單元(operational taxonomic units,OTU),然后參照Silva138 數(shù)據(jù)庫(kù)對(duì)得到的OTU 序列進(jìn)行物種注釋,并根據(jù)物種注釋情況進(jìn)一步分析Alpha 多樣性、Beta 多樣性、物種豐度。

Alpha 多樣性分析包括:(1)稀釋曲線:是描述樣本多樣性的曲線,能夠直接反映樣本相關(guān)測(cè)序數(shù)據(jù)量的合理性,并間接反映樣本中物種的豐富程度。(2)Shannon 指數(shù):為菌群物種Alpha 多樣性分析常用的指數(shù),反映不同樣本間物種多樣性和均一性的差別,Shannon 指數(shù)越大說(shuō)明菌群多樣性越高。

Beta 多樣性分析:是對(duì)兩組樣品間的菌群構(gòu)成情況進(jìn)行比較分析。主坐標(biāo)分析(PCoA)是常用的Beta多樣性分析方法,其基于Unweighted Unifrac 距離來(lái)進(jìn)行分析,樣本間距離越遠(yuǎn)代表樣本間多樣性差異越大。

物種豐度分析采用T-test 檢驗(yàn)和LEfSe 分析,其中LEfSe 分析是一種軟件分析,其能夠找到組間有統(tǒng)計(jì)學(xué)差異的生物標(biāo)志物。

1.5 食管組織蘇木素-伊紅(HE)染色 完成糞便收集后處死兩組小鼠,剝?nèi)∑涫彻芙M織并采用4%多聚甲醛溶液固定,之后進(jìn)行石蠟包埋、切片、HE 染色,觀察兩組小鼠食管組織病理改變。

1.6 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 采用SPSS 21.0 統(tǒng)計(jì)學(xué)軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析。符合正態(tài)分布的計(jì)量資料以(±s)表示,先進(jìn)行方差齊性分析,之后進(jìn)行T-test 檢驗(yàn)。Anosim 相似性分析用于檢驗(yàn)組間差異是否大于組內(nèi),判斷實(shí)驗(yàn)分組是否存在意義。基于兩兩樣本間的距離值排序獲得的秩(組間的為Between,組內(nèi)的為Within),這樣任一兩兩樣本的比較可以獲得3 個(gè)分類(lèi)的數(shù)據(jù),并進(jìn)行箱線圖的展示(若兩個(gè)箱的凹槽互不重疊,則表明兩樣本的中位數(shù)有顯著差異)。以P<0.05 為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

2 結(jié)果

2.1 食管組織病理改變 兩組小鼠在實(shí)驗(yàn)過(guò)程中未出現(xiàn)死亡,MX 組小鼠均造模成功。DZ 組小鼠食管組織正常,MX 組小鼠食管組織可見(jiàn)鱗狀上皮增殖、癌巢形成且癌巢內(nèi)可見(jiàn)角化珠(圖1)。

圖1 兩組小鼠食管組織HE 染色結(jié)果(×200)Figure 1 HE staining results of esophagus tissues two groups of mice

2.2 腸道菌群測(cè)序數(shù)據(jù)質(zhì)量評(píng)估與OTU 分析 對(duì)兩組小鼠共20 例糞便標(biāo)本進(jìn)行16Sr DNA 基因測(cè)序,對(duì)檢測(cè)的原始數(shù)據(jù)進(jìn)行拼接、過(guò)濾,得到有效數(shù)據(jù),平均每樣品測(cè)得86 110 條tags,經(jīng)過(guò)質(zhì)控平均得到83 261條有效數(shù)據(jù),質(zhì)控有效數(shù)據(jù)量達(dá)54 489,質(zhì)控有效率達(dá)63.16%。然后基于有效數(shù)據(jù)進(jìn)行分析共得到2 314 個(gè)OTU,再用OTU 序列進(jìn)行物種注釋。結(jié)果共有862 個(gè)OTU 注釋到物種屬水平。

基于OTU 的Venn 圖中,2 種不同顏色的圓對(duì)應(yīng)兩組小鼠糞便所含的菌群,重疊部分則為兩組共同含有的菌群,DZ 組較MX 組腸道菌群物種豐富程度明顯增加,兩組小鼠的腸道菌群結(jié)構(gòu)存在差異,見(jiàn)圖2。同時(shí)選擇DZ 組與MX 組在門(mén)水平上豐度排名前10 的物種,繪制物種相對(duì)豐度柱狀圖(圖3),由圖可見(jiàn),在門(mén)水平上兩組小鼠樣本部分物種豐度存在明顯差異,MX 組與DZ組相比,擬桿菌門(mén)(Bacteroidota)及厚壁菌門(mén)(Firmicutes)比例升高,而疣微菌門(mén)(Verrucomicrobiota)及變形菌門(mén)(Proteobacteria)比例降低。

圖2 兩組小鼠腸道菌群Venn 圖Figure 2 Venn diagram of intestinal flora between two groups of mice

圖3 兩組小鼠腸道菌群門(mén)水平物種相對(duì)豐度柱狀圖Figure 3 Relative abundance of species at phylum level intestinal flora of mice between two groups

2.3 兩組小鼠腸道菌群Alpha 多樣性分析

2.3.1 兩組小鼠腸道菌群物種多樣性曲線 兩組小鼠菌群稀釋曲線均趨于平坦,則說(shuō)明目前樣本測(cè)序數(shù)據(jù)量漸進(jìn)合理,即使增加數(shù)據(jù)量也只會(huì)產(chǎn)生少量新的物種,見(jiàn)圖4。

圖4 兩組小鼠菌群物種稀釋曲線Figure 4 Rarefaction curve of intestinal flora between two groups of mice

2.3.2 兩組小鼠腸道菌群Alpha 多樣性指數(shù)組間差異分析 MX 組腸道菌群Shannon 指數(shù)低于DZ 組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),見(jiàn)表1。

表1 兩組小鼠腸道菌群Shannon 指數(shù)比較(±s)Table 1 Shannon Diversity Index analysis of intestinal flora between two groups of mice

表1 兩組小鼠腸道菌群Shannon 指數(shù)比較(±s)Table 1 Shannon Diversity Index analysis of intestinal flora between two groups of mice

注:DZ 組=對(duì)照組,MX 組=模型組

組別 只數(shù) Shannon 指數(shù)DZ 組 10 5.807±0.461 MX 組 10 4.549±1.450 t 值 2.614 P 值 0.024

2.4 兩組小鼠腸道菌群Beta 多樣性指數(shù)組間差異分析 PCoA 圖顯示,MX 組與DZ 組樣本基本上分別聚集在不同的象限,相距較遠(yuǎn),樣本間多樣性差異較大(t=22.444,P=0.004),見(jiàn)圖5。

圖5 兩組小鼠腸道菌群Beta 多樣性PCoA 圖Figure 5 PCoA diagram of Beta diversity in intestinal flora between two groups of mice

2.5 兩組小鼠腸道菌群組間差異物種分析

2.5.1 兩組小鼠腸道菌群組間與組內(nèi)差異性分析Anosim 相似性分析結(jié)果顯示,兩組小鼠腸道菌群差異組間大于組內(nèi),差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(R=0.476,P=0.001),見(jiàn)圖6。

圖6 兩組小鼠腸道菌群Anosim 組間差異分析Figure 6 Analysis of similarities (ANOSIM) of intestinal flora between two groups of mice

2.5.2 腸道菌群差異物種分析 在門(mén)水平,MX 組未明確細(xì)菌(Unidentified_ Bacteria)、藍(lán)細(xì)菌(Cyanobacteria)、易感微生物(Elusimicrobia)、彎曲桿菌(Campilobacterota)豐度高于DZ 組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P 均<0.05),見(jiàn)圖7。

圖7 兩組小鼠腸道菌群門(mén)水平差異分析Figure 7 Differential species analysis of intestinal flora at the phylum level between two groups of mice

在屬水平,共有27 類(lèi)菌的豐度在兩組小鼠腸道菌群內(nèi)有差異(P 均<0.05)。豐度較高的前10 位腸道菌群:MX 組普雷沃菌科_UCG-003(Prevotellaceae_UCG-003)、擬桿菌屬(Bacteroides)、毛螺菌科NK4A136組(Lachnospiraceae_NK4A136_group)、 瘤 胃 球 菌 屬(Ruminococcus)、普雷沃菌科_UCG-001(Prevotellaceae_UCG-001)、普雷沃菌屬(Prevotella)、大腸埃希菌(Colidextribacter)、毛螺菌科_UCG-006(Lachnospiraceae_UCG-006)豐度高于DZ 組,羅姆布茨菌(Romboutsia)、土桿菌屬(Turicibacter)豐度低于DZ 組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),見(jiàn)圖8。

圖8 兩組小鼠腸道菌群屬水平差異分析Figure 8 Differential species analysis of intestinal flora at the genus level between two groups of mice

2.5.3 兩組小鼠腸道菌群LEfSe 分析 LEfSe 分析結(jié)果顯示,兩組共有21 種腸道菌群豐度有差異,其中梭狀芽孢桿菌綱(Clostridia)、普雷沃菌科(Prevotellaceae)、毛螺菌科(Lachnospiraceae)、毛螺菌目(Lachnospirales)、Prevotellaceae_UCG-003、腸桿菌目(Enterobacterales)、腸桿菌科(Enterobacteriaceae)、埃希菌-志賀菌屬(Escherichia-Shigella)、大腸埃希菌種(Escherichia_coli)、 顫 螺 旋 菌 目(Oscillospirales)、 擬 桿 菌 科(Bacteroidaceae)、Bacteroides、Lachnospiraceae_NK4A136_group、顫螺旋菌科(Oscillospiraceae)、瘤胃球菌科(Ruminococcaceae)豐度在MX 組升高,另外Peptostreptococcales_Tissierellales、Romboutsia_ilealis、Romboutsia、消化鏈球菌科(Peptostreptococcaceae)、丹 毒 絲 菌 科(Erysipelotrichaceae)、 丹 毒 絲 菌 目(Erysipelotrichales) 豐 度 在DZ 組 升 高(P<0.05)。在 屬 水 平 上,Prevotellaceae_UCG-003、Escherichia-Shigella、Bacteroides、Lachnospiraceae_ NK4A136_group在MX 組 豐 度 增 高;Romboutsia 豐 度 在DZ 組 增 高(P<0.05),見(jiàn)圖9。

圖9 兩組小鼠腸道菌群LEfSe 分析柱狀圖Figure 9 Histogram of LEfSe analysis of intestinal flora between two groups of mice

3 討論

腸道是一個(gè)復(fù)雜的微生態(tài)系統(tǒng),其擁有一個(gè)密集而多樣的微生物群落,稱之為腸道菌群,該菌群與宿主共同進(jìn)化以建立相互關(guān)系[5]。腸道菌群對(duì)宿主健康的主要作用表現(xiàn)在分解不可消化的碳水化合物[6]、合成維生素[7]、調(diào)節(jié)宿主防御[8]及調(diào)控腫瘤[9],尤其在腫瘤生長(zhǎng)過(guò)程中發(fā)揮了重要作用。已有研究表明腸道菌群與多種腫瘤的發(fā)生、發(fā)展和治療效果密切相關(guān),如結(jié)直腸癌[10-11]、肺癌[12]、胃癌[13]、肝癌[14]、黑色素瘤[15-16]等。目前有關(guān)腸道菌群在結(jié)直腸癌方面的研究較多,已發(fā)現(xiàn)部分特異性差異菌群,并進(jìn)行了深入的機(jī)制研究,如研究發(fā)現(xiàn)Colidextribacter 通過(guò)增加癌基因bcl-2 和bcl-xl 的表達(dá),抑制結(jié)腸細(xì)胞凋亡,從而促進(jìn)腫瘤的形成[17]。產(chǎn)腸毒素脆弱擬桿菌可產(chǎn)生脆弱擬桿菌毒素,與結(jié)腸上皮細(xì)胞相互作用,激活調(diào)節(jié)性T 淋巴細(xì)胞并降低白介素(IL)-2 水平,隨著IL-2 水平的下降,輔助性T 淋巴細(xì)胞(Th17)的產(chǎn)生導(dǎo)致IL-17 水平升高,促進(jìn)癌細(xì)胞存活和增殖[18]。雙歧桿菌能增強(qiáng)樹(shù)突狀細(xì)胞功能,導(dǎo)致腫瘤微環(huán)境中CD8+T 細(xì)胞的啟動(dòng)和聚集介導(dǎo)效應(yīng),從而增加程序性死亡受體-配體1(PD-L1)特異性抗體治療效果,抑制結(jié)腸癌的發(fā)展[19]。

關(guān)于腸道菌群和食管鱗癌相關(guān)性的研究較少,目前文獻(xiàn)已報(bào)道的差異菌群多為從口腔取材,腸道菌群報(bào)道較少。位俊敏等[20]研究發(fā)現(xiàn)食管癌患者口腔中卟啉菌屬表達(dá)升高。ZHAO 等[4]報(bào)道食管癌患者唾液菌群中顯著增加的菌群為Firmicutes、革蘭陰性菌門(mén)(Negativicutes)、硒單胞菌門(mén)(Selenomonadales)、Prevotellaceae、Prevotella 和韋榮菌科(Veillonellaceae),而Proteobacteria、β-變形桿菌門(mén)(Betaproteobacteria)、奈瑟菌目(Neisseriales)、奈瑟菌科(Neisseriaceae)和奈瑟菌屬(Neisseria)則顯著減少。而DENG 等[21]研究發(fā)現(xiàn)在屬水平上,食管鱗癌患者糞便中鏈球菌(Streptococcus)、 雙 歧 桿 菌(Bifidobacterium)、Subdoligranulum、布勞特菌屬(Blautia)、Romboutsia、柯林斯菌屬(Collinsella)、Paeniclostridium、多爾菌屬(Dorea)和阿托波菌屬(Atopobium)豐度顯著增加,而毛螺菌屬(Lachnospira)、Bacteroides、Agathobacter、Lachnoclostridium、副擬桿菌屬(Parabacteroides)、帕拉普菌屬(Paraprevotella)等菌屬豐度降低。可見(jiàn)上述研究報(bào)道的菌群存在很大差別,縱觀之前文獻(xiàn)報(bào)道的雖為同一類(lèi)型腫瘤患者,但腸道菌群中檢測(cè)出的具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義的菌群差別也較大,考慮腸道菌群是一個(gè)復(fù)雜的微環(huán)境,容易受到患者飲食、情志、基礎(chǔ)疾病及藥物等的影響,故本研究選取4NQO 原位誘導(dǎo)食管癌模型小鼠糞便為檢測(cè)標(biāo)本,最大限度使飲食、環(huán)境等外界因素達(dá)到統(tǒng)一性,盡量避免誤差。

本研究結(jié)果顯示,MX 組與DZ 組相比腸道菌群的物種豐富度和多樣性明顯降低。兩組腸道菌群差異物種分析顯示,MX 組小鼠糞便中Prevotellaceae_UCG-003、Bacteroides、Lachnospiraceae_NK4A136_group、Ruminococcus、Prevotellaceae_UCG-001、Prevotella、Colidextribacter、Lachnospiraceae_UCG-006 豐度高于DZ組,Romboutsia、Turicibacter 豐度低于DZ 組。LEfSe 分析結(jié)果顯示,在屬水平上,Prevotellaceae_UCG-003、埃希菌-志賀菌屬(Escherichia-Shigella)、Bacteroides、Lachnospiraceae_ NK4A136_group 在MX 組 豐 度 明 顯增高,Romboutsia 豐度在DZ 組明顯降低。兩種檢驗(yàn)分析中均有統(tǒng)計(jì)學(xué)差異的菌屬為Prevotellaceae_UCG-003、Bacteroides、Lachnospiraceae_NK4A136_group 和Romboutsia,這4 種菌屬可能更具有生物標(biāo)志物意義。Bacteroidota 是腸道菌群的主要成分,其與Firmicutes約占腸道菌群的90% 以上,研究證實(shí)擬桿菌屬(Bacteroidetes)在結(jié)直腸癌患者糞便菌群中豐度明顯增高[22-23],并有研究發(fā)現(xiàn)擬桿菌屬在食管鱗癌診斷中準(zhǔn)確率較高[21];Prevotellaceae 在食管癌患者口腔菌群中及結(jié)直腸癌患者糞便菌群中豐度雖有明顯增高[4,24],但本研究結(jié)果與其一致。但Lachnospiraceae_NK4A136_group 及Romboutsia 在結(jié)直腸癌及胃癌等腫瘤患者中豐度雖有明顯變化[21,25-26],但本研究結(jié)果與之不同,因此還需進(jìn)一步研究檢測(cè)確定。

綜上所述,食管鱗癌原位模型小鼠腸道菌群物種多樣性降低,存在特異性差異菌屬,可為食管癌的診斷提供參考。雖然本研究發(fā)現(xiàn)了MX 組較DZ 組小鼠腸道菌群顯著改變,但16SrDNA 為半定量檢測(cè),故仍需宏基因組學(xué)或靶向微生物學(xué)的研究進(jìn)一步明確差異菌群,并進(jìn)行更加深入的機(jī)制研究來(lái)進(jìn)行驗(yàn)證,尋找食管鱗癌特異性的靶菌群。

作者貢獻(xiàn):張玉雙、李晶進(jìn)行文章的構(gòu)思與設(shè)計(jì),負(fù)責(zé)文章的質(zhì)量控制及審校;張玉雙、于富洋、吳忠冰、王一然進(jìn)行數(shù)據(jù)收集;張玉雙、于富洋、吳忠冰整理數(shù)據(jù);于富洋、吳忠冰進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)處理;張玉雙負(fù)責(zé)結(jié)果的分析與解釋、撰寫(xiě)與修訂論文;李晶對(duì)文章整體負(fù)責(zé),監(jiān)督管理。

本文無(wú)利益沖突。

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