從普通母豬中生產高質量實驗用豬生產技術的探討*

華利忠 王海燕 馮志新 王 佳 袁 廳 甘 源 張 磊 邵國青

(1.江蘇省農業科學院獸醫研究所 農業部獸用生物制品工程技術重點實驗室，南京 210014)(2.江蘇農林職業技術學院，鎮江 212400)

SPF(specific pathogen free)豬即無特定病原豬, 其特殊價值在于：無主要的傳染病、無垂直傳染性疾病、無人豬共患病、無對實驗研究可能產生干擾的微生物[1]，不僅在畜牧獸醫生產實踐中發揮著重要作用，也是生命科學研究、生物制品生產的重要實驗材料和原材料，其質量好壞直接關系到上述多方面研究成果的可靠性及準確性[2],是高質量實驗用豬。我國的SPF豬按國家標準GB 22914—2008-T指應無豬瘟病毒(classical swine fever virus，CSFV)、豬繁殖與呼吸綜合征病毒(porcine reproductive and respiratory syndrome virus，PRRSV)、豬偽狂犬病毒(pseudorabies virus，PRV)、豬流行性腹瀉病毒(porcine epidemic diarrhea virus，PEDV)、豬傳染性胃腸炎病毒(transmissible gastroenteritis virus of swine, TGEV)、豬肺炎支原體(mycoplasma hyopneumoniae, Mhp)、豬胸膜肺炎放線桿菌(actinobacillus pleuropneumoniae,APP)、豬產毒素多殺性巴氏桿菌(Toxigenic pasteurella multocida，T+Pm)、流行性乙型腦炎病毒(japanese encephalitis virus,JEV)等共12種病原，且臨床檢測沒有豬口蹄疫(foot-and-mouth disease, FMD)、非洲豬瘟(African swine fever,ASF)等15種病的豬。由于我國SPF豬的供應還沒有產業化，數量有限，隨著生物醫藥和醫學的發展，特別是2018年非洲豬瘟傳入我國后[3]，我國高質量實驗用豬的缺口也越來越大。如何批量生產能夠在一定程度上替代SPF豬的高質量實驗用豬，是促進我國生物醫藥及醫學領域發展的重要基礎條件。本研究通過供體母豬的管理，無菌接產方式和人工飼喂標準以及人工乳配方的優化等方式，初步嘗試了一種以普通母豬為供體，分娩高質量實驗用仔豬的方法，成功獲得了豬主要疫病均為陰性的高質量實驗用豬，該方法的應用推廣，可批量提供高質量實驗用豬，彌補國內實驗用豬的缺口。

1 材料和方法

1.1 妊娠母豬選擇及處理

本實驗分兩批動物進行，均選擇3～5胎次臨床健康經產母豬。實驗一為2頭二花臉母豬和2頭大白豬，實驗二為5頭長大二元母豬。上述母豬經檢測均為PRRSV、PRV、PCV2以及Mhp陽性母豬。上述母豬在前一次分娩14 d后肌肉注射PRRSV減毒活疫苗，21 d斷奶后隔離環境下封群飼養，并采用對應的精液(二花臉×二花臉；大白豬×大白豬；長大二元母豬×杜洛克公豬)人工授精。封閉飼養后第20天肌肉注射豬偽狂犬基因缺失苗，50 d后肌肉注射豬瘟兔化弱毒疫苗1次，分娩前1月肌肉注射豬圓環滅活苗1次。分娩前20 d拌料給藥：80%泰妙菌素250 g/t+15%金霉素2 000 g/t+電解多維400 g/t，連用2周。

1.2 人工乳

人工乳為江蘇省農業科學院獸醫研究所自配奶粉，配方奶主要成分和含量見表1，并采用放射性同位素鈷60射線源輻照滅菌，輻照劑量為20 KGy。

表1 新生仔豬人工乳配方

1.3 主要試劑

CSFV抗體ELISA檢測試劑盒、PRRSV抗體ELISA檢測試劑盒、豬偽狂犬gE蛋白(pseudorabies virus gE protein,PRV gE)抗體ELISA檢測試劑盒和Mhp抗體ELISA檢測試劑盒(愛德士生物科技公司)；Trizol Reagent(Invitrogen公司)和Taq酶(TaKaRa公司)。

1.4 實驗設計

本實驗分兩次動物實驗進行。實驗一：人工乳和市售嬰兒奶粉飼養無菌接產豬對比實驗。無菌接產2頭二花臉母豬和2頭大白母豬，分娩時采用無菌接產方式接產仔豬，然后在隔離環境下人工飼喂，并隨機分為兩組。實驗組飼喂自配人工乳，對照組飼喂市售普通1段嬰兒奶粉。實驗二：人工乳飼喂和母豬自養(母乳飼養)對比實驗。隔離飼養的5頭二元母豬，每頭無菌接產5頭三元仔豬(無菌接產的仔豬選擇第1、3、5、7、9頭出生仔豬)，隔離環境下采用人工乳人工喂養。剩余仔豬由母豬自繁自養。

1.5 無菌接產程序

母豬有分娩癥狀時采用聚維酮碘全身消毒，并在母豬后驅鋪上滅菌墊子。分娩時，接產人員穿上無菌工作服，消毒雙手后帶上無菌手套準備接生。每接生一頭消毒一次。仔豬出生后立即放入37～40 ℃預熱的聚維酮碘內，同時用無菌毛巾擦拭口中及體表黏液，斷臍，再轉入37 ℃保溫運輸箱內，迅速運至另一隔離間的屏障系統內。

1.6 仔豬的飼養管理

人工飼喂的仔豬，分別用對應的人工乳和市售奶粉進行飼養。飼喂方法：取1份人工乳(或奶粉)，加入7份40～45 ℃滅菌蒸餾水中，充分混勻后奶瓶飼喂。飼喂頻率及環境溫度根據仔豬日齡調整(表2)。其中1～7日齡，全部飼喂流質的人工乳或奶粉，7日齡后統一逐步添加經放射性同位素鈷60輻照過的仔豬教槽料，直到21日齡斷奶，全部改為教槽料。實驗二中自繁自養的仔豬同樣在7日齡時開始教槽，21日齡斷奶，斷奶后母子分離，仔豬隔離飼養，飼養條件等同實驗組。

表2 各日齡階段仔豬人工飼喂次數及溫度控制

1.7 臨床癥狀觀察、體質量測定及存活率統計

每天觀察所有仔豬的臨床癥狀，記錄。分別于21日齡和2月齡統計各實驗組的存活率。新生仔豬在接產后立即進行初生重測定，并于21日齡斷奶時測定其斷奶重，并對比日增重差異。

1.8 病原及抗體的檢測

新生仔豬在21日齡斷奶時根據NY/T 541規定的方法進行血樣、鼻拭子、扁桃體樣以及糞便樣品的采集。其中血清樣本進行PRRSV、CFSV、PRVgE、PCV2、FMD和Mhp的抗體檢測以及PRRSV和PCV2病原檢測；鼻拭子進行Mhp、APP以及T+Pm的病原檢測；扁桃體進行CSFV和PRVgE的病原檢測；糞便進行PEDV和TGEV的病原檢測。

2 結果

2.1 無菌接產仔豬數量及分組情況

無菌接產情況，實驗分組及數量見表3。其中實驗一 一共無菌接產二花臉仔豬18頭以及純種大白仔豬19頭，所有仔豬在隔離環境下人工飼喂，并分為兩組。實驗組為8頭二花臉和10頭大白豬，飼喂自配人工乳，對照組為10頭二花臉和9頭大白豬，飼喂市售普通1段嬰兒奶粉。實驗二共分娩59頭仔豬，每窩按計劃無菌接產5頭三元仔豬，共25頭，作為實驗組，飼喂人工乳，其余豬(34頭)作為對照組由母豬自繁自養。

表3 各個實驗組仔豬數量及飼喂配方

2.2 臨床觀察及存活率統計

在實驗一中，對照組豬在2日齡時就出現了水樣腹瀉，黃色，5 d內擴散到全組，腹瀉率達到100%，迅速消瘦脫水，其中大白豬首例死亡出現在4日齡，二花臉豬首例死亡出現在6日齡。實驗組豬在3日齡開始出現一過性腹瀉，黃色，并在5～6日齡后恢復，腹瀉數大白豬4頭，二花臉豬3頭。實驗組和對照組在21日齡和2月齡的存活率統計見表3。由表3顯示實驗組仔豬100%存活，而對照組僅存活10%左右。

實驗二的腹瀉數和存活率統計見表4。由表4發現實驗組中出現腹瀉的數量每窩在1～3頭不等，但很快好轉，存活率達到了100%。而對照組僅1窩出現了2頭腹瀉，另1窩淘汰了1頭弱仔外，沒有出現其他異常，存活率幾乎也達到了100%。

表4 實驗豬腹瀉數及21日齡存活率統計

2.3 體質量變化

由于實驗一的對照組死亡較多，體質量統計對比沒有意義。在本實驗中，僅統計了實驗二的體質量數據，結果見表5。由表5發現，對照組和實驗組的平均初生重一致，分別為1.66和1.63 kg，但斷奶重差別較大，分別為5.05和7.48 kg，差異有統計學意義(P<0.05)。實驗組和對照組的日增重分別為0.16和0.28 kg/d，差異有統計學意義(P<0.05)。

表5 實驗二中實驗豬體質量和日增重

2.4 抗體檢測

實驗一所有的豬，所有檢測的抗體指標均為陰性。而實驗二中，所有實驗組的抗體指標均為陰性，但對照組斷奶豬PRRSV、CSFV、PRVgE、PCV2、FMD和Mhp的抗體陽性率分別為63.6%、84.8%、100%、100%、100%以及90.9%(表6)。

表6 實驗二抗體檢測結果

2.5 斷奶豬病原檢測

實驗一實驗組和對照組共20頭斷奶豬，經檢測PRRSV、PCV2、CSFV、PRV、Mhp、APP、T+Pm、PEDV和TGEV全為陰性。而實驗二中實驗組上述指標也全是陰性，但在對照組的33頭斷奶仔豬中分別檢測出了2頭PRRSV陽性，25頭PCV2陽性，18頭Mhp陽性以及1頭PEDV陽性(表7)。

表7 實驗二病原檢測結果

3 討論

SPF豬一般采用外科手術法獲取，其理論依據是：絕大多數豬病不能通過胎盤傳染給胎兒，手術法取胎后隔離器飼養人工飼喂仔豬可防止病原的水平傳播。然該技術對供體母豬要求高，操作相對復雜、生產成本較高、不易推廣普及，所以很多研究轉向利用自然分娩法培育SPF豬，原理同手術法。丹麥、日本和臺灣也采用此法獲取初級SPF豬，并建立了SPF豬群。通過自然分娩，但不吃初乳(snatch-farrowed, porcine-colostrum-deprived, SF-pCD)仔豬的培育，獲得了高質量的實驗用豬，并將其用于疾病模型的建立[4-5]。有研究[6]也做了初步的嘗試，凈化了PRV、弓形體以及PRRSV等多種病原。此外，胚胎移植技術也能生產SPF豬。其主要步驟是：無菌環境下回收胚胎，將胚胎用含有雙抗和抗真菌的新鮮培養基清洗后進行移植，再通過無菌接產和隔離器飼養，可達到培育SPF豬的目的。有研究[7]利用這個技術成功培育了SPF五指山豬。但這個技術要求更高，也無法大面積推廣。

除SPF豬規定的病原外，PCV2的存在也會對實驗造成影響，但去除PCV2相對困難。有研究采用屏障系統[8]，剖宮產和無菌接產技術培育了PCV陰性仔豬，但也存在轉陽的情況。哈爾濱獸醫研究所已建立了該套技術體系，利用該技術從CSFV、FMD、PRRSV、JE、PRV、PCV2、PPV等陽性母豬中接生到了全部為陰性的仔豬[2]。但是該技術并不能保證百分百可以剔除垂直傳播病原。本研究用普通母豬作為供體，在沒有剖宮產和手術取胚的情況下，通過無菌接產，隔離器飼養等多方面進行病原控制，也達到了培育PRRSV、CSFV、PRV、PCV2等多種豬主要疫病病原全陰性實驗用豬的目的。該方法主要原理和上述方法一致，但供體母豬廣泛，操作相對簡單，容易推廣。該方法相對剖宮產技術的主要風險在于阻斷垂直傳播更為困難。所以在實施無菌接產之前，對母豬的管理尤為重要，本實驗通過選取3～5胎次的臨床健康經產母豬為供體，實施封群和疫苗免疫，其目的就是盡可能的阻斷病原的垂直傳播，再通過無菌接產，屏障系統等措施，阻斷水平傳播，以達到凈化相關病原的目的。但由于本實驗涉及的母豬數僅9頭，數量不多，目前還不能得出該技術能100%成功的結論，所以，在批量生產時，需建立小單元的屏障系統，以減少仔豬在飼養過程中，部分病原大面積轉陽的風險。

在人工飼喂過程中，腹瀉是仔豬存活率的一大風險。腹瀉的主要因素有仔豬胃腸道的發育不全、人工乳的營養以及大腸桿菌等。本研究優化了人工乳的配方，提供了相對全面的營養以及多種抗腹瀉和提高免疫力的原料，大大降低了仔豬的腹瀉率，這也是保證本實驗所培育的仔豬存活率大大提高的原因之一。在體質量方面，相比母豬自繁自養的仔豬，人工培育的仔豬體質量相對較輕，那是人工喂養時由于勞動力等因素，仔豬采食的頻率沒有自繁自養的高，再加上少數幾頭豬一過性的腹瀉，對日增重有所影響。而由于每窩移走了5頭仔豬，母豬自帶的仔豬相對較少，所能獲得的母乳相對充足，又未發生腹瀉等疾病，故日增重相對較大。

通過供體母豬的管理，無菌接產，人工乳的優化，屏障系統內人工喂養的系列措施，可實現以普通母豬為供體，培育出豬主要疫病均為陰性的高質量實驗用豬。該方法可在沒有現成SPF母豬的前提下，建立了一種科學、有效、簡便的高質量實驗用豬的生產技術，為我國優質實驗動物的產業化提供了臨床經驗和理論依據。