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紫娟茶中甲基化兒茶素提取工藝優化

2022-02-13 10:43:20李宇倩高創創李明超李曉蕾
食品與機械 2022年1期
關鍵詞:質量

李宇倩 高創創 李明超 李曉蕾 郝 倩

(1. 昆明理工大學生命科學與技術學院,云南 昆明 650500; 2. 昆明理工大學分析測試研究中心,云南 昆明 650500)

紫娟茶是一種芽、葉、莖均為紫色的茶樹品種,為普洱茶的一個重要變種[1]。紫娟茶具有明顯的降壓及抗敏作用[2],且含有豐富的化學成分,如兒茶素類[3-4]、花青素類[5]、色素[6]及微量元素[7]等。前期研究[8]表明,紫娟茶中含有甲基化兒茶素類成分。甲基化兒茶素是最早被日本科學家[9]從綠茶品種Benihomare中分離得到,是具有顯著抗過敏、消炎、降血壓等效果的新型化合物[10]。Sano等[11-12]分別從臺灣凍頂烏龍、綠茶Benihomare中先后分離得到EGCG3"Me和EGCG4"Me,且EGCG3"Me在動物血液中的穩定性顯著高于未甲基化的EGCG,其口服吸收率約為EGCG的9倍[13],這可能是由于甲基化后的兒茶素脂溶性增加,總體脂溶量和吸收率均高于正常兒茶素,其生物利用度也有很大程度提高[14]。此外,茶樹秋冬季鮮葉中的甲基化兒茶素含量高于春夏季,且隨葉片成熟度的提高而升高[15]。呂海鵬等[16]研究表明紫娟茶第三葉的EGCG3"Me成分含量最高并達到1.24%。目前關于兒茶素提取工藝優化的研究多以提取時間、提取溫度、溶液含水率等為影響因素,通過響應面法對兒茶素提取工藝進行優化[17-18]。但有關甲基化兒茶素的提取工藝研究甚少[13]。

試驗前期,從云南產紫娟茶中分離得到的兩個甲基化兒茶素EGCG3"Me和ECG3"Me結構如圖1所示。試驗擬采用HPLC和響應面分析法優化紫娟茶中甲基化兒茶素成分的提取工藝,采用Design-Expert 8.0.6軟件對數據進行分析并建立分析模型,明確提取時間、提取溫度和料液比3個因素對紫娟茶中甲基化兒茶素(EGCG3"Me和ECG3"Me)提取質量分數的交互影響,以期為該茶樹品種開發新功能性飲料及保健食品的發展提供依據。

圖1 EGCG3"Me和ECG3"Me結構

1 材料與方法

1.1 試驗材料、試劑與儀器

紫娟茶:2010年,產地云南邦東;

EGCG3"Me、ECG3"Me標準品:純度為95%,昆明理工大學云南省高校靶點藥物篩選與利用重點實驗室自制;

無水甲醇、無水乙醇:分析純,天津致遠化學試劑有限公司;

三氟乙酸:分析純,重慶川東化學試劑廠;

乙腈:色譜純,美國BCR試劑公司;

電子天平:CP64C型,奧豪斯儀器(上海)有限公司;

高效液相色譜:U-3000型,戴安(中國)有限公司;

電熱恒溫水浴鍋:SB-1200型,上海愛朗儀器有限公司。

1.2 試驗方法

1.2.1 標準樣品制備及標準曲線繪制 參照孫業良等[13-14,19-20]的方法。HPLC條件:Welchrom C18色譜分析柱(4.6 mm×250 mm, 5 μm);乙腈(A)—50 mmol/L磷酸(B)為流動相,4%~100%梯度洗脫,洗脫時間60 min,流速1.0 mL/min,柱溫30 ℃,波長280 nm。

1.2.2 精密度試驗 取混合標準品液6份,按1.2.1的HPLC條件分別進樣6次,計算EGCG3"Me和ECG3"Me峰面積的相對標準偏差(RSD)。

1.2.3 重復性試驗 選取供試品溶液6份,按1.2.1的HPLC條件連續進樣6次,計算EGCG3"Me和ECG3"Me峰面積。

1.2.4 穩定性試驗 選取供試品溶液1份,配制后避光冷藏0,2,4,6,8,12 h,按1.2.1的HPLC條件進樣,計算EGCG3"Me和ECG3"Me的RSD值。

1.2.5 回收率試驗 選取已確定濃度的含有EGCG3"Me的樣品6份,各加入0.1 mg EGCG3"Me標品,按樣品質量分數測定方法進行處理和測定;取已確定濃度的含有ECG3"Me的樣品6份,加入0.1 mg ECG3"Me標準品,按樣品質量分數測定方法處理和測定,計算樣品的平均加樣回收率。

1.2.6 單因素試驗

(1) 提取溶劑:準確稱取1.00 g紫娟茶樣品,浸泡于50 mL溶液中,分別以酸性甲醇(1% TFA)、酸性乙醇(1% TFA)、水、酸性水(1% TFA)、酸性甲醇水(1% TFA)、酸性乙醇水(1% TFA)為提取溶劑, 60 ℃提取60 min,重復提取3次,取上清經微孔濾膜后進行HPLC分析,考察提取溶劑對浸提液中甲基化兒茶素(EGCG3"Me和ECG3"Me)質量分數的影響。

(2) 提取時間:精確稱取1.00 g紫娟茶樣品,浸泡于50 mL溶液中,以酸性乙醇(1% TFA)為溶劑,60 ℃下分別提取20,40,60,80,100,120 min,重復提取3次,取上清經微孔濾膜后進行HPLC分析,考察提取時間對浸提液中甲基化兒茶素(EGCG3"Me和ECG3"Me)質量分數的影響。

(3) 提取溫度:精確稱取1.00 g紫娟茶樣品,浸泡于50 mL溶液中,以酸性乙醇(1% TFA)為溶劑,提取溫度分別為30,40,50,60,70,80 ℃,提取時間為100 min,重復提取3次,取上清液經微孔濾膜過濾后進行HPLC分析,考察提取溫度對浸提液中甲基化兒茶素(EGCG3"Me和ECG3"Me)質量分數的影響。

(4) 料液比:精確稱取1.00 g紫娟茶樣品,以酸性乙醇(1% TFA)為溶劑,料液比分別為(m紫娟茶∶V溶劑)1∶10,1∶20,1∶30,1∶40,1∶50,1∶60 (g/mL),70 ℃提取100 min,重復提取3次,取上清液經微孔濾膜過濾后進行HPLC分析,考察料液比對浸提液中甲基化兒茶素(EGCG3"Me和ECG3"Me)質量分數的影響。

1.2.7 響應面試驗優化 參照高晶晶等[21]的方法,根據單因素試驗結果確定響應面試驗的因素水平取值,采用Box-Behnken設計,以浸提液中甲基化兒茶素(EGCG3"Me和ECG3"Me)質量分數為響應值,優化紫娟茶中甲基化兒茶素提取工藝條件。

2 結果與分析

2.1 紫娟茶中甲基化兒茶素含量HPLC分析方法的建立

2.1.1 標準曲線制作 以不同濃度梯度ECG3"Me和EGCG3"Me兩個標品的HPLC峰面積作縱坐標,兩個標品濃度 (mg/mL) 為橫坐標,計算標準曲線線性回歸方程分別為Y=3 204.94X-36.94,Y=2 911.45X-25.65,且兩種標品在0~3 mg/mL時,質量濃度與峰面積表現出顯著線性關系,其R2分別為0.999 60和0.999 86。

2.1.2 精密度試驗 經測定,EGCG3"Me和ECG3"Me峰面積的相對標準偏差(RSD)分別為1.43%,1.59%,均在2%之內,說明試驗方法的精密度良好。

2.1.3 重復性試驗 經測定,EGCG3"Me和ECG3"Me峰面積的RSD分別為0.49%,1.48%,均在2%之內,說明此方法的重復性良好。

2.1.4 穩定性試驗 經測定,EGCG3"Me和ECG3"Me峰面積的RSD值分別為0.48%,1.58%,說明供試品的溶液在12 h內穩定。

2.1.5 回收率試驗 通過回收率試驗的考察,樣品的平均加樣回收率分別為94.5%,92.5%,說明該方法有較好的回收率。

2.2 單因素試驗

2.2.1 提取溶劑 由圖2可知,以酸性乙醇為提取溶劑時,浸提液中EGCG3"Me質量分數達最大值;以酸性甲醇為提取溶劑時,浸提液中ECG3"Me質量分數達最大值。從甲基化兒茶素(EGCG3"Me和ECG3"Me)的提取質量分數來看,酸性乙醇的提取質量分數可達14.755 mg/g,70%酸性甲醇的次之,水溶劑提取的最小。因此試驗選取酸性乙醇作為提取溶劑。酸性乙醇中甲基化兒茶素(EGCG3"Me和ECG3"Me)提取質量分數最高,可能是因為甲基化兒茶素比非甲基化兒茶素的脂溶性更強。

2.2.2 提取時間 由圖3可知,隨著提取時間的延長,EGCG3"Me、ECG3"Me以及甲基化兒茶素(EGCG3"Me和ECG3"Me)質量分數均先變大后減小,且均在100 min時達最大值,此時甲基化兒茶素(EGCG3"Me和ECG3"Me)質量分數為5.663 mg/g。因此選取100 min為最佳提取時間。這可能是甲基化兒茶素起初會隨時間的延長,浸出物增加,呈上升趨勢,經過一段時間的累積,甲基化兒茶素的浸出量接近飽和,且甲基化兒茶素會隨著時間的延長存在部分降解的現象,從而呈下降趨勢。

圖3 提取時間對甲基化兒茶素質量分數的影響

2.2.3 提取溫度 由圖4可知,隨著提取溫度的升高,物質擴散系數增大,浸出量增大,EGCG3"Me、ECG3"Me以及甲基化兒茶素(EGCG3"Me和ECG3"Me)質量分數均增加,當提取溫度>60 ℃時,EGCG3"Me、ECG3"Me以及甲基化兒茶素(EGCG3"Me和ECG3"Me)質量分數上升趨勢均趨于平緩當提取溫度為60 ℃時,甲基化兒茶素(EGCG3"Me和ECG3"Me)質量分數為15.467 mg/g;當提取溫度為70 ℃時,甲基化兒茶素(EGCG3"Me和ECG3"Me)質量分數為17.177 mg/g,提取質量分數明顯提高;當提取溫度為80 ℃時,甲基化兒茶素(EGCG3"Me和ECG3"Me)質量分數為19.605 mg/g,雖然有增長的趨勢但較平緩,且乙醇的沸點為78.5 ℃,隨著提取溫度的升高,乙醇會因沸騰而造成揮發,影響溶劑對紫娟茶的浸提作用。因此,確定最佳的提取溫度為70 ℃。

圖4 提取溫度對甲基化兒茶素質量分數的影響

2.2.4 料液比 由圖5可知,隨著料液比的增加,EGCG3"Me、ECG3"Me以及甲基化兒茶素(EGCG3"Me和ECG3"Me)質量分數上升,且當料液比(m紫娟茶∶V溶劑)>1∶70 (g/mL)后上升趨勢較平穩。但就甲基化兒茶素(EGCG3"Me和ECG3"Me)質量分數來看,當料液比(m紫娟茶∶V溶劑)為1∶10~1∶70 (g/mL),甲基化兒茶素(EGCG3"Me和ECG3"Me)質量分數逐漸升高,當料液比(m紫娟茶∶V溶劑)為1∶70~1∶90 (g/mL)時,甲基化兒茶素質量分數雖有增高但趨于平緩,考慮其經濟效益,選擇1∶70 (g/mL)作為最優料液比。

圖5 料液比對甲基化兒茶素質量分數的影響

2.3 響應面分析法優化工藝結果

2.3.1 響應面模型構建 基于單因素試驗結果,選取提取時間、提取溫度和料液比為試驗因素,以浸提液中甲基化兒茶素(EGCG3"Me和ECG3"Me)質量分數為響應值,采用Design-Expert 8.0.6軟件輔助設計三因素三水平的響應面分析試驗。試驗因素水平見表1,試驗設計及結果見表2。

表1 響應面因素水平

對表2試驗數據進行多元回歸分析,經擬合得到甲基化兒茶素(EGCG3"Me和ECG3"Me)質量分數的二次多項回歸方程為:

表2 響應面試驗設計方案及結果

(1)

表3 回歸方程的方差分析?

2.3.3 響應面曲面分析 由圖5可知,提取時間與料液比交互作用的曲面相對較陡,因此提取溫度對用酸性乙醇提取甲基化兒茶素(EGCG3"Me和ECG3"Me)質量分數的影響顯著性最強;料液比對甲基化兒茶素(EGCG3"Me和ECG3"Me)質量分數的影響次之。在圖6(b)和圖6(d)中,隨提取時間增加兒茶素質量分數呈現先增大后減小的趨勢,提取時間在110 min左右出現最大值;在圖6(d)和圖6(f)中,隨著料液比增大兒茶素質量分數先快速增加后趨于平緩;在圖6(b)和圖6(f)中,隨著提取溫度升高兒茶素質量分數呈現先增大后減小的趨勢,提取溫度在75 ℃左右出現最大值。根據響應面優化模型可預測紫娟茶中甲基化兒茶素(EGCG3"Me和ECG3"Me)提取的最優條件為以酸性乙醇為提取溶劑,提取時間100 min、提取溫度75 ℃、料液比(m紫娟茶∶V溶劑)1∶74 (g/mL),此時浸提液中甲基化兒茶素(EGCG3"Me和ECG3"Me)質量分數理論值為27.1 mg/g。

圖6 各因素交互作用的等高線和響應面圖

2.3.4 驗證實驗 根據響應面優化所得最優提取條件進行3次平行實驗,測定浸提液中EGCG3"Me質量分數平均值為13.4 mg/g,ECG3"Me質量分數平均值為13.3 mg/g,甲基化兒茶素(EGCG3"Me和ECG3"Me)質量分數平均值為26.7 mg/g。甲基化兒茶素(EGCG3"Me和ECG3"Me)質量分數與理論預測值的相對誤差為1.48%,說明該回歸模型優化的工藝組合是有效的。

3 結論

建立了紫娟茶中甲基化兒茶素含量的HPLC分析方法,并對其提取工藝進行了優化。結果表明,紫娟茶中甲基化兒茶素(EGCG3"Me和ECG3"Me)的最優提取工藝為以酸性乙醇為提取溶劑,提取時間100 min、提取溫度75 ℃、料液比(m紫娟茶∶V溶劑)1∶74 (g/mL),此時甲基化兒茶素質量分數為26.7 mg/g,與理論預測值的相對誤差為1.48%。后續考慮對甲基化兒茶素的藥理作用進行研究,分析不同位點的甲基化對兒茶素的藥理作用的影響,并研究不同藥理作用形成的原因。

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