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花抗繆勒氏管激素基因克隆、抗體制備及其對外源雌激素的響應

2022-02-03 07:57:48張李敏郭琦王向斌黃茜李學軍周傳江趙道全張建新劉慧芬
南方農業學報 2022年10期
關鍵詞:檢測

張李敏,郭琦,王向斌,黃茜,李學軍,周傳江,趙道全,張建新,劉慧芬*

(1河南師范大學水產學院/河南省水產動物養殖工程技術研究中心,河南新鄉 453007;2河南省黃河流域伊洛河水生生物野外科學觀測研究站,河南鄭州 450000)

0 引言

1 材料與方法

1.1 試驗材料

表1 引物序列信息Table 1 Primers sequence

1.2 花?Amh基因cDNA克隆及序列分析

1.3 花?Amh基因原核表達及多克隆抗體制備

1.4 重組蛋白AMH免疫熒光定位

1.5 雌二醇處理對花?Amh基因表達的影響

雌激素處理參考Jiang等(2017)的方法,按照0(對照)、100和200 μg/g梯度劑量稱取雌二醇,溶于95%乙醇中,然后均勻噴灑在飼料上。將處理后的飼料置于40℃烘箱中烘干,對照組飼料用95%乙醇噴灑進行同樣處理。選取3月齡幼魚,挑選480尾規格一致的健康個體隨機分成3組,按照設計的試驗組分別于每天8:00、12:00和17:00投喂飼料,60 d后分離不同劑量的處理組和對照組卵巢樣品,置于-80℃保存,用于Amh基因表達分析。

1.6 RNA提取及實時熒光定量PCR檢測

采用TRIzol提取卵巢組織RNA,以瓊脂糖凝膠電泳檢測RNA完整性,用NanoDrop 2000檢測RNA濃度和純度。使用PrimeScript RT reagent Kit with gDNA Eraser將質量合格的RNA反轉錄合成第一鏈cDNA。以GAPDH和β-actin為內參基因,通過實時熒光定量PCR檢測Amh基因的表達情況,反應體系10.0 μL:TB GreenTMPremix ExTaqTMⅡ5.0 μL,10 μmol/L上、下游引物各0.5 μL,cDNA模板2.0 μL,無菌水2.0 μL。擴增程序:95℃30 s,95℃5 s,60℃20 s,進行40個循環。每個樣品設3個重復,采用2-△△Ct法計算基因相對表達量。

1.7 數據分析

采用SPSS 22.0進行統計分析,以單因素方差分析(ANOVA)和Duncan's多重比較分別檢驗不同組之間的差異顯著性。

2 結果與分析

2.1 Amh基因序列分析結果

基于轉錄組數據,通過PCR擴增獲得Amh基因,其cDNA序列全長1849 bp,ORF為1671 bp,編碼556個氨基酸殘基,5'端非編碼區(5'-UTR)28 bp,3'端非編碼區(3'-UTR)150 bp。ORF編碼的AMH蛋白分子式為C2688H4306N768O845S23,理論分子量為61.60 kD,理論等電點(pI)為5.81,脂肪系數為85.38,親水性系數為-0.385,說明該蛋白為穩定的親水性蛋白。生物信息學軟件分析結果顯示,AMH蛋白具有典型的TGF-β和AMH-N端結構域,為非跨膜蛋白,第1~21位氨基酸為信號肽,且在第21~22個氨基酸間存在信號肽剪切位點,第455~461個氨基酸(RTQRAAR)為纖溶酶蛋白酶裂解位點(圖1);AMH蛋白定位于細胞膜的概率較高。運用MEGA 7.0基于不同物種AMH基因同源比對結果構建系統發育進化樹,結果發現不同物種AMH基因分為兩支,哺乳動物與硬骨魚各聚為一支,其中,花與同屬于鯉科魚類的斑馬魚、黃河鯉、銀鯽、四川裂腹魚等聚為一小支,與鲆科和合鰓魚科等親緣關系較遠,與花的生物學地位相一致(圖2)。

圖1 花?Amh基因cDNA序列及其推導氨基酸序列Fig.1 cDNA sequence and deduced amino acid sequence of H.maculatus Amh gene

圖2 基于不同物種AMH蛋白氨基酸序列構建的系統發育進化樹Fig.2 Phylogenetic analysis of AMH protein amino acid sequence in different species

2.2 AMH重組蛋白的原核表達及純化結果

將獲得的Amh基因序列與pET-32a載體連接構建重組表達載體pET32a-Amh,并轉化BL21感受態細胞。隨后采用1.0 mmol/L IPTG進行誘導,結果發現,在28.5 kD左右出現目的條帶,而陰性對照和空白對照在同一區域未出現特異條帶,表明重組表達載體pET32a-Amh構建成功。誘導后菌體經超聲破碎、離心、SDS-PAGE電泳分析表明重組蛋白主要存在于上清液中。利用親和純化的方法對AMH重組蛋白進行純化,結果顯示,50 mmol/L咪唑的洗脫液洗脫時開始檢測到目的蛋白;200和500 mmol/L咪唑的洗脫液洗脫時,檢測到大量的目的蛋白,但200 mmol/L咪唑的洗脫液洗脫時,獲得高濃度和高純度的目的蛋白(圖3)。

圖3 AMH重組蛋白的表達純化結果Fig.3 Expression and purification ofAMH recombinant protein

2.3 多克隆抗體效價檢測及特異性分析結果

小鼠經過4次免疫后進行采血,收集血清。使用ELISA對獲得的AMH多克隆抗體進行效價測定,結果顯示多克隆抗體的效價為2.4×106(表2)。Western blotting檢測結果顯示在28.5 kD附近可見清晰的條帶,其大小與AMH原核表達結果相一致,表明制備的AMH多克隆抗體可有效識別AMH抗原(圖4)。

圖4 Western blotting檢測AMH重組蛋白的特異性Fig.4 The specificity of AMH recombinant protein was detected by Western blotting

表2 AMH多克隆抗體效價檢測結果Table 2 AMH polyclonal antibody potency assay

2.4 花?AMH蛋白細胞定位

圖5 AMH在花?卵巢中的定位結果(標尺=20 μm)Fig.5 Localization of AMH in H.maculatus ovary(scale bar=20 μm)

2.5 雌二醇對花?卵巢組織學影響

組織學分析結果(圖6)顯示,雌二醇處理20 d后,對照組卵母細胞核明顯,嗜堿性強;低濃度處理組(100 μg/g)中的初級卵母細胞數量增多,可觀察到細胞核及核仁;高濃度處理組(200 μg/g)中的卵母細胞體積明顯大于其他試驗組,核質比降低。雌二醇處理40 d后,對照組的卵母細胞進入小生長期,細胞體積增大,核仁數量增多;低濃度處理組的卵母細胞呈圓形,胞核體積增大,核仁大小不一;高濃度處理組的卵母細胞體積不斷增加,但仍可觀察到卵原細胞。根據時間的推移,飼喂60 d后,卵母細胞發育至Ⅱ期中期,核質比上升,胞核嗜堿性減弱,低濃度處理組的卵母細胞增長速度加快,已完成卵原細胞增殖期,且卵膜內緣皮質層不斷擴散,形成強嗜堿性絲狀物質;高濃度處理組中的卵母細胞較低濃度處理組發育緩慢,仍含有一期的卵原細胞(圖6)。

圖6 雌二酵處理下花?卵巢組織學觀察Fig.6 Histology observation of H.maculatus ovary after estradiol treatment

2.6 雌二醇處理對花?卵巢Amh基因表達的影響

實時熒光定量PCR檢測雌二醇處理對花?卵巢Amh基因表達的影響,結果發現Amh基因在低濃度處理組(100 μg/g)和高濃度處理組(200 μg/g)均呈下降趨勢(圖7),其中,低濃度處理組Amh基因表達相對表達量最低,抑制作用顯著(P<0.05),說明雌激素在卵巢發育中對Amh基因表達具有抑制作用。

圖7 雌二醇對花?卵巢Amh基因表達的影響Fig.7 Effects of estradiol on the expression of Amh gene in H.maculatus ovary

3 討論

AMH是動物性腺發育過程中的一個關鍵因子。在哺乳動物中,較多的研究已證實,Amh基因在卵巢中發揮作用,但目前Amh基因在魚類卵巢發育過程中的基礎生物學研究相對較少。本研究克隆得到花Amh基因cDNA全長序列1849 bp,共編碼556個氨基酸殘基,該蛋白含有TGF-β結構域,屬于典型的TGF-β家族成員。Pfennig等(2015)比較了不同物種Amh基因序列,結果發現不同物種的Amh基因編碼蛋白普遍含有1個N端序列以及緊鄰TGF-β結構域上游的纖溶酶蛋白酶裂解位點(R-X-X-R),該位點為蛋白酶的識別位點,是AMH配體加工所必需的。除日本比目魚(Paralichthys olivaceus)(Yoshinaga et al.,2004)外,大多數魚類中Amh基因編碼的蛋白酶識別位點為雙基序(R-X-X-R-X-X-R)。花AMH蛋白中纖溶酶蛋白酶裂解位點(RTQRAAR)也為雙基序,說明其配體加工過程與哺乳動物類似。氨基酸同源比對分析結果顯示,不同脊椎動物AMH蛋白的氨基酸序列整體相似性較低,且系統發育進化結果顯示,花與斑馬魚、鯉魚等鯉科魚類單獨聚為一支,這與花的生物學分類地位相符合,證明克隆得到的序列為花Amh基因。

從哺乳動物的研究發現,雄性睪丸支持細胞在妊娠第7周就開始分泌AMH,雌性動物在性別分化時不產生AMH,妊娠36周后才能檢測到AMH(Zeng et al.,2015)。研究發現,Amh基因在原始卵泡、初級卵泡和次級卵泡中高表達,優勢卵泡選擇后表達量逐漸下降,在閉鎖卵泡中幾乎檢測不到Amh基因表達(Renato,2018)。魚類Amh基因的研究主要集中在雄性性別分化,常被用作雄性魚類的性別標記,但在雌性性腺中也表達。研究發現,在成熟斑馬魚中檢測到Amh基因在卵母細胞和濾泡層中高表達(Hofsten et al.,2005)。大西洋鱈的Amh基因在卵巢發育早期表達,而在后期信號消失(Johnsen et al.,2013)。黑鯛的Amh基因在卵巢發育早期不表達,在卵黃蛋白原合成期表達量升高(Wu et al.,2010)。本研究克隆獲得花Amh基因的ORF,并成功構建到原核表達載體pET-32a上,經IPTG誘導獲得重組蛋白分子量約為28.5 kD,以可溶性狀態表達,純化后免疫小鼠,獲得多克隆抗體,其能識別重組蛋白。此外,本研究應用多克隆抗體進行免疫熒光試驗,結果顯示AMH蛋白主要表達于顆粒細胞,與在羅非魚(Ijiri et al.,2008)、斑馬魚(Kaviani et al.,2013)中發現的細胞定位結果類似,推測Amh對花卵細胞發育具有重要作用。

雌激素在調節卵巢發育和卵子發生中行使重要功能。劉濤(2012)研究發現,外源17-β雌二醇處理促進中華鱘卵母細胞生長和發育。呂德亮等(2017)研究發現,注射雌二醇可顯著提高海膽的性腺指數,促進其性腺發育。類似的現象在中華絨螯蟹(Eriocheir sinensis)(沈蓓杰等,2010)、三疣梭子蟹(Portunus trituberculatus)(Liu et al.,2018)中 也有報道。在本研究中,以100 μg/g雌二醇長期喂養花,同樣發現其卵母細胞發育進程高于對照組(0 μg/g)。外源性激素處理除了對動物的性腺發育有影響,對調控通路中的基因表達也有一定的作用。本研究還發現,在雌性花中雌二醇抑制了Amh基因表達。吳燕鐸等(2022)在探究性類固醇激素對斑鱧雌性相關基因Foxl2表達的影響中發現,外源激素濃度過高會抑制內源性激素的分泌,從而抑制雌性相關基因的表達。由此推測長期喂養雌二醇會造成雌性花體內雌激素過高,通過負反饋機制抑制Amh基因表達。因此,深入研究花雌激素與Amh基因表達之間存在的關聯機制,將有助于理解魚類卵巢發育的分子機理。

4 結論

Amh基因含有TGF-β家族典型的結構域,在卵巢顆粒細胞表達,且響應雌激素的調控,可能在花卵巢發育中發揮調控作用。

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