楊莉 黃嬌 彭媛 母立峰 劉福
(川北醫學院附屬醫院藥劑科,四川 南充 637000)
乳腺癌是一種乳腺上皮組織惡性腫瘤,對女性生命健康有較大威脅[1-2]。目前,手術及放化療是治療乳腺癌的主要手段,其中順鉑是治療多種實體瘤的一線化療藥,但由于腫瘤細胞原發或繼發耐藥性的產生,以及順鉑具有較明顯的腎毒性、胃腸道反應等,使其治療效果欠佳,目前臨床也將多西紫杉醇作為乳腺癌、卵巢癌等惡行腫瘤的一線用藥[3-4]。奈達鉑是日本研發的第二代鉑類抗腫瘤藥,具有抗癌譜廣、活性強、腎毒性小、胃腸道反應低的特點,臨床研究證實其對宮頸癌、乳腺癌等實體腫瘤均有效[5-6]。然而,目前有關奈達鉑對乳腺癌的治療作用機制尚未統一。因此,本研究通過探討奈達鉑對乳腺癌細胞行為學的影響及可能的機制,旨在為臨床治療乳腺癌提供更多的理論基礎。
1.1 主要材料與試劑 人乳腺癌MDA-MB-2311細胞株(貨號BNCC337893)購自北京北納創聯生物技術研究院。
奈達鉑(HY-13700,規格50 mg)購自美國MCE公司;DMEM-H培養基(GC3110-100ML)購自北京鼎國昌盛生物技術有限公司;3-2(4,5-二甲基噻唑-2)-2-四甲基偶氮噻唑藍(MTT)(1120-02-1)均購自美國sigma公司;蛋白提取試劑盒(BC3711-50T)、AnnexinV-FITC/PI細胞凋亡雙染試劑盒(556547)均購自上海谷研實業有限公司;兔抗人增殖細胞核抗原(Proliferating cell nuclear antigen,PCNA)(ATA35203)、B淋巴細胞瘤-2(B-cell lymphoma-2,Bcl-2)(BYFG-70R-36053)、Bcl-2相關X蛋白(Bcl-2 aasociated X protein,Bax)(RM-9106)、E-鈣粘附蛋白(E-cadherin)(ACRO)、N-鈣粘附蛋白(N-cadherin)(M00403-FCZ)、Toll樣受體4(Toll-like receptor4,TLR4)(BYFG-70R-11717)、髓樣細胞分化蛋白88(Myeloid differentiation primary response gene88,MyD88)(310748-T08)、核轉錄因子kappa B(Nuclear factor-kappa B,NF-κB)(ATA33868)、白細胞介素(Interleukin-1β,IL-1β)(ATA31401)、腫瘤壞死因子-α(Tumor necrosis factor-alpha,TNF-α)(ATA38860)、GAPDH(ABP57456)多克隆抗體、山羊抗兔HRP(SE12-0.1)二抗均購自北京索萊寶科技有限公司。
CO2細胞培養箱(型號NHD DYE1738)、酶標儀(型號ELx800)購自美國Bio-rad公司。
1.2 方法
1.2.1 細胞培養 復蘇MDA-MB-231細胞,培養于含10% FBS+90% DMEM-H培養基中,置于37℃飽和濕度、5%CO2培養箱中,每2~3天更換一次培養液,PBS清洗兩遍后,加入6 mL(/100 mm皿)胰酶,在顯微鏡下觀察,期間禁止搖晃培養皿,細胞剛有脫落時,吸除大部分胰酶,留約0.5 mL,移至培養箱消化,約2 min取出,加入10% FBS+90% DMEM-H培養基終止消化,吹打均勻,進行傳代培養。
1.2.2 細胞分組及處理 取1.2.1對數生長期的MDA-MB-231細胞,接種至96孔板(5×104個/孔),當細胞生長至60%~70%融合時換無血清培養液繼續培養24 h,將細胞隨機分成5組:①空白對照組:只含MDA-MB-231細胞,培養細胞48 h。②陽性對照組:加入1 μmol/L多西紫杉醇[7]溶液,培養細胞48 h。③奈達鉑低、中、高劑量組:分別加入32、64、96 μg/mL奈達鉑[8]溶液,培養細胞48 h。收集細胞用于后續實驗。
1.2.3 MTT法檢測細胞增殖能力 取1.2.2各組培養48 h的MDA-MB-231細胞重懸并接種于96孔培養板(5×104個/孔),均于培養12、24、48 h后向各孔加入20 μl MTT,繼續培養4 h后,棄去上清,加入150 μL DMSO,振蕩10 min。于490 nm處測定各孔細胞光密度(Optic density,OD)值,每組設6個復孔,取平均值。計算細胞增殖抑制率(%)=(對照組OD-實驗組OD)/對照組OD×100%。試驗重復3次。
1.2.4 AnnexinV-FITC/PI雙染法檢測細胞凋亡情況 取1.2.2各組培養48 h的MDA-MB-231細胞,使用AnnexinV-FITC/PI雙染試劑盒及流式細胞儀檢測細胞凋亡情況,PBS溶液洗滌2次,棄上清,并調節濃度至1×106個/mL的細胞懸液,取100 μL細胞懸液加入5 μL的AnnexinV/PITC及10 μL的PI(20 μg/mL)混勻,室溫避光孵育30 min,流式細胞儀檢測凋亡率。每組均設3個重復。
1.2.5 Transwell實驗檢測細胞侵襲能力 取液態Matrigel基質膠(50 μL,2.0 mg/mL)于Transwell小室上層,凝固30 min(37 ℃),取1.2.2各組培養48 h的MDA-MB-231細胞,接種至小室上層(3×103個/孔),小室下層加入含10% FBS的培養基(600 μL),孵育24 h。用棉簽擦除上層未遷移細胞,下層用甲醛溶液(4%)固定15 min;結晶紫染色(0.2%,20 min),沖洗、封片。拍照、統計各組侵襲細胞數。試驗重復3次。
1.2.6 劃痕實驗檢測細胞遷移能力 取1.2.2各組培養48 h的MDA-MB-231細胞重懸并接種于24孔板(2.5×104個/孔),待細胞鋪滿底部時,利用滅菌槍頭(10 μL)呈做“一”字劃痕,分別于0、24 h后顯微鏡下取點,觀察并拍照。以初始距離為對比,測量細胞遷移距離并計算細胞遷移率。細胞遷移率(%)=(d0 h-d24 h)/d0 h×100%,每組設6個復孔,取平均值。試驗重復3次。
1.2.7 蛋白免疫印跡法檢測增殖、侵襲遷移、凋亡及TLR4/NF-κB通路相關蛋白表達變化 取1.2.2各組培養48 h的MDA-MB-231細胞,每組均設6個重復,PBS洗滌2遍,冰上加裂解液,裂解30 min,離心取上清,取50 μg蛋白樣品進行12%SDS-PAGE電泳分離,電泳結束后,將凝膠上的蛋白轉移至PVDF膜上(95 mA電流)3 h,脫脂牛奶(5 %)封閉3 h,室溫封閉1 h,加入PCNA、caspase-3、Bcl-2、Bax、N-Cadherin、E-Cadherin、TLR4、MyD88、NF-κB、IL-1β、TNF-α、GAPDH抗體作為一抗,稀釋比均為(1∶1000),4℃孵育過夜,TBST洗膜3次,次日加入HRP標記山羊抗兔二抗(1∶5000),室溫孵育2 h,顯色、顯影定影,分析各蛋白相對表達量。

2.1 各組MDA-MB-231細胞增殖能力比較 與空白對照組比較,12 h時各組MDA-MB-231細胞增殖抑制率無顯著差異(P>0.05),24、48 h時奈達鉑低、中、高劑量組MDA-MB-231細胞增殖抑制率顯著升高(均P<0.05),呈劑量依賴性,且高劑量組MDA-MB-231細胞增殖抑制率與陽性對照組無顯著差異(P>0.05);隨著培養時間的延長,奈達鉑低、中、高劑量各組MDA-MB-231細胞增殖抑制率顯著升高(P<0.05),有時間依賴性,見圖1。

圖1 各組MDA-MB-231細胞增殖抑制率比較
2.2 各組MDA-MB-231細胞凋亡情況比較 與空白對照組[(8.66±1.29)%]比較,陽性對照組[(47.95±7.19)%]以及奈達鉑低[(16.77±2.52)%]、中[(33.73±5.06)%]、高劑量組[(48.25±7.23)%] MDA-MB-231細胞凋亡率顯著升高(P<0.05),奈達鉑各組呈劑量依賴性,且高劑量組MDA-MB-231細胞凋亡率與陽性對照組無顯著差異(P>0.05),見圖2。

圖2 各組MDA-MB-231細胞凋亡情況比較
2.3 各組MDA-MB-231細胞侵襲情況比較 與空白對照組[(310.15±46.52)個]比較,陽性對照組[(125.83±18.87)個]以及奈達鉑低[(278.97±41.85)個]、中[(212.58±31.88)個]、高劑量組[(123.37±18.51)個]侵襲細胞數顯著減少(均P<0.05),奈達鉑各組呈劑量依賴性,且高劑量組MDA-MB-231細胞侵襲細胞數與陽性對照組無顯著差異(P>0.05),見圖3。

圖3 各組MDA-MB-231細胞侵襲情況比較(200×)
2.4 各組MDA-MB-231細胞遷移情況比較 與空白對照組[(43.16±6.47)%]比較,陽性對照組[(15.66±2.35)%]以及奈達鉑低[(35.98±5.38)%]、中[(22.01±3.30)%]、高劑量組[(15.37±2.31)%]細胞遷移率顯著降低(均P<0.05),奈達鉑各組呈劑量依賴性,且高劑量組細胞遷移率與陽性對照組無顯著差異(P>0.05),見圖4。

圖4 各組MDA-MB-231細胞遷移情況比較(40×)
2.5 各組MDA-MB-231細胞增殖、侵襲遷移及凋亡相關蛋白表達情況比較 與空白對照組比較,陽性對照組以及奈達鉑低、中、高劑量組MDA-MB-231細胞Bcl-2、N-Cadherin蛋白表達顯著降低,Bax、E-Cadherin蛋白表達顯著升高(均P<0.05),奈達鉑各組呈劑量依賴性,且高劑量組MDA-MB-231細胞PCNA、Bax、Bcl-2、E-Cadherin、N-Cadherin蛋白表達與陽性對照組無顯著差異(P>0.05),見圖5、表1。

表1 各組MDA-MB-231細胞增殖、侵襲遷移及凋亡相關蛋白表達情況比較

圖5 各組MDA-MB-231細胞增殖、侵襲遷移及凋亡相關蛋白表達情況比較
2.6 各組MDA-MB-231細胞TLR4/NF-κB通路相關蛋白表達情況比較 與空白對照組比較,陽性對照組以及奈達鉑低、中、高劑量組MDA-MB-231細胞TLR4、MyD88、NF-κB、IL-1β、TNF-α蛋白表達水平顯著降低(P<0.05),奈達鉑各組呈劑量依賴性,且高劑量組MDA-MB-231細胞TLR4、MyD88、NF-κB、IL-1β、TNF-α蛋白表達水平與陽性對照組無顯著差異(P>0.05),見圖6、表2。

圖6 各組MDA-MB-231細胞TLR4/NF-κB通路相關蛋白表達情況比較

表2 各組MDA-MB-231細胞TLR4/NF-κB通路相關蛋白表達情況比較
乳腺癌是最常見乳腺導管上皮惡性腫瘤,發病率呈逐年上升趨勢,已成為全世界女性死亡的主要原因之一[9-10]。順鉑能損傷腫瘤細胞的DNA誘導腫瘤細胞凋亡,但其反復應用也易誘導乳腺癌細胞產生耐藥性,嚴重影響治療效果[11-12]。奈達鉑即順-甘醇酸二氨合鉑,與順鉑比較,其毒副作用較小,治療乳腺癌有一定療效及安全性[13-14]。莫遠群等[15]研究顯示,與順鉑+吉西他濱治療組比較,奈達鉑+吉西他濱治療組三陰性乳腺癌患者治療有效率升高,不良反應顯著降低,且安全性較好。然而目前有關奈達鉑治療乳腺癌具體機制尚未統一。TLR4介導信號轉導途徑主要是炎癥信號通路,與腫瘤關系密切[16-17]。張祥建等[18]研究顯示,由黃芪、黨參、白術等制成的凍干粉制劑可以通過抑制TLR4/NF-κB信號通路促進細胞凋亡,進而增加乳腺癌細胞對紫杉醇的化療敏感性。本研究通過體外培養乳腺癌MDA-MB-231細胞,分析奈達鉑對其生物學行為及TLR4/NF-κB通路的影響,旨在為臨床提高乳腺癌治療效果提供參考。
腫瘤發生和發展被認為是細胞增殖與凋亡失衡、細胞發生侵襲轉移等因素共同作用的結果[19]。PCNA能夠調節腫瘤細胞DNA復制,在癌變組織中呈高表達,Bcl-2能夠阻礙細胞皺縮、DNA是內源性抗凋亡因子,Bax是人體最主要促凋亡基因,caspase-3是細胞凋亡過程關鍵執行者之一,處于凋亡途徑的核心環節[20-21]。E-cadherin、N-cadherin是上皮-間充質轉化生物學過程的分子學標志物,介導細胞連接作用,E-cadherin蛋白表達降低,N-cadherin蛋白表達升高,胞間黏附作用減弱,進一步促使細胞向周邊組織侵襲、轉移[22]。本研究結果顯示,與空白對照組比較,24、48 h時奈達鉑低、中、高劑量組MDA-MB-231細胞增殖抑制率顯著升高,呈劑量依賴性;隨著培養時間的延長,奈達鉑低、中、高劑量各組MDA-MB-231細胞增殖抑制率顯著升高,呈時間依賴性。與空白對照組比較,48 h時奈達鉑低、中、高劑量組MDA-MB-231細胞凋亡率、Bax、E-cadherin蛋白水平顯著升高,侵襲細胞數、細胞遷移率及PCNA、Bcl-2、N-cadherin蛋白水平顯著降低,有劑量依賴性。這說明奈達鉑可能抑制乳腺癌MDA-MB-231細胞增殖、侵襲及遷移,并誘導細胞凋亡。
TLR4/NF-κB是一條炎癥信號通路,與TLR4相應配體如內毒素結合后再與MyD88的C末端鏈接形成復合體,進一步使復合體發生磷酸化反應,使NF-κB激活處于游離狀態,進而透過核膜從胞質進入核內,促使IL-1β、TNF-α等發生基因轉錄。炎癥因子又可反作用于信號分子TLR4,導致炎癥反應循環往復,造成DNA不可逆損傷或突變,使腫瘤細胞增殖[23-24]。張祥建等[25]研究顯示,扶正類中藥(黃芪、黨參、白術等)制備而成的凍干粉制劑可抑制乳腺癌細胞增殖,誘導細胞凋亡,逆轉細胞對紫杉醇的耐藥性,可能與抑制TLR4/NF-κB信號通路活化有關。本研究結果顯示,與空白對照組比較,奈達鉑低、中、高劑量組MDA-MB-231細胞TLR4、MyD88、NF-κB、IL-1β、TNF-α蛋白表達水平顯著降低,呈劑量依賴性,與既往相關研究結果一致。這說明奈達鉑可抑制乳腺癌MDA-MB-231細胞增殖、侵襲及遷移并誘導凋亡,可能是通過抑制TLR4/NF-κB通路活化實現的。但本研究未能明確TLR4/NF-κB通路在乳腺癌MDA-MB-231細胞凋亡的具體作用機制,后期仍需進一步研究。
奈達鉑可能通過抑制TLR4/NF-κB通路活化抑制乳腺癌MDA-MB-231細胞增殖、侵襲及遷移并誘導細胞凋亡。