馬秀娟,趙艷萌,王文良,靳曉飛,周曉紅,高維娟
(河北中醫(yī)學院,河北省心腦血管病中醫(yī)藥防治研究重點實驗室,河北 石家莊 050091)
缺血性腦卒中臨床常用的治療手段是血管內溶栓[1],但是腦組織恢復血流灌注后常發(fā)生缺血/再灌注(ischemia-reperfusion,IR)損傷。腦IR損傷可以導致細胞水腫、壞死,其發(fā)病機制復雜,包括自由基增多、炎癥反應、鈣超載、自噬等[2]。AMPK是以上機制的交叉口,可被多種因素激活,活化的AMPK可啟動AMPK/mTOR/ULK1信號通路,從而激活細胞自噬[3]。多項研究表明補陽還五湯可通過調控自噬發(fā)揮抗腦IR損傷作用[4-7],但對于補陽還五湯是否可通過AMPK/mTOR/ULK1自噬信號通路發(fā)揮神經保護作用尚未見相關報道。本課題組經離體實驗表明,補陽還五湯可通過該自噬信號通路減輕大鼠原代神經元缺氧缺糖/復氧復糖損傷;本研究基于AMPK/mTOR/ULK1自噬信號通路,探討補陽還五湯抗大鼠腦IR損傷的機制。
1.1 實驗動物48只SPF級SD大鼠,♂,體質量(250-280) g,購自北京維通利華實驗動物技術有限公司(許可證號:SCXK(京)2016-0006),飼養(yǎng)時溫度、濕度適宜,適應性飼養(yǎng)7 d,自由攝食、飲水。
1.2 實驗藥品、試劑、儀器補陽還五湯內含黃芪120 g,赤芍5 g,當歸6 g,紅花、桃仁、川芎、地龍各3 g,水煎劑濃縮至100 mL,濃度1.43 mg·L-1(藥材購自河北樂仁堂藥業(yè)有限公司);AMPK激動劑Metformin(HY-17471A)購自MCE公司;抗體AMPKa(#2532)、mTOR(#2972)、p-AMPKa(#2535)、p-mTOR(#5536)、p-ULK1(#14202)均購自CST;ULK1抗體(SAB2109080-100uL)、LC3B抗體(L7543-100 uL)均購自Sigma;β-actin抗體(GB11001)、二抗(GB23303)購自賽維爾;SDS-PAGE凝膠配制試劑盒(購自Beyotime);PVDF膜(孔徑0.45 μm和0.2 μm)購自美國Millipore公司;TUNEL試劑盒購自promega。多功能成像系統(Fusion FX5 Spectra)購自法國Vilber公司;leica顯微鏡拍照系統、正置熒光顯微鏡(DM5000B)均購自德國Leica公司。
2.1 實驗動物分組及給藥方案將大鼠隨機分為假手術組(Sham)、腦缺血/再灌注模型組(Model)、補陽還五湯組(BYHWD)、補陽還五湯+AMPK激動劑Metformin組(BYHWD+Met)。BYHWD和BYHWD+Met組大鼠術后24 h內予以補陽還五湯14.3 g·kg-1灌胃,BYHWD+Met組大鼠于線栓插入后即刻予Metformin 10 mg·kg-1腹腔注射,Sham和Model組大鼠予以等體積蒸餾水灌胃,連續(xù)應用3 d,神經功能評分完成后處死大鼠取材。
2.2 大鼠腦缺血/再灌注模型制作方法采用改良的線栓法制作大鼠大腦中動脈閉塞/再灌注(middle cerebral artery occlusion/reperfusion,MCAO/R)模型。應用1%戊巴比妥鈉對大鼠進行腹腔注射(用量50 mg·kg-1),將麻醉后的大鼠采用仰臥位固定于手術操作臺上。對手術區(qū)域進行常規(guī)消毒,于大鼠頸部正中偏左側行縱向切口,逐層對暴露的組織和血管進行鈍性分離,并將兩側的組織利用拉鉤進行固定擴大手術視野,分離左側頸總動脈、頸外動脈、頸內動脈。動脈夾暫時夾閉頸總動脈和頸內動脈,于頸外動脈遠心端剪一“V”型切口,經此斜口插入線栓沿頸內動脈到達大腦前動脈起始端,入栓長度19 mm左右遇阻力則停止。2 h后拔出線栓,再灌注72 h后處死大鼠取材。Sham組僅分離血管,不插線栓。
2.3 神經功能缺失體征評分缺血/再灌注d 3參照Zea longa評分法對各組大鼠的神經功能缺失情況進行盲評。具體標準為:0分:無神經損傷癥狀;1分:懸尾實驗不能完全伸展對側前爪;2分:向對側轉圈;3分:向對側傾倒;4分:無自主活動或陷入深度昏迷中。得分越高表明神經功能損傷越重。
2.4 TTC染色檢測大鼠腦梗死體積再灌注72 h后,麻醉大鼠進行取腦,將其置于腦槽內并于-20 ℃中凍存15 min,取出后行2 mm厚度的冠狀面切片,將各切片移至培養(yǎng)皿中加入TTC染液,放置在37 ℃恒溫箱中避光孵育20 min,每10 min翻動1次。完成染色后,放入4%多聚甲醛中固定,4 ℃過夜后拍照。用Image Pro Plus 6.01圖像分析軟件進行統計,檢測大鼠腦梗死體積。
2.5 尼氏染色法觀察神經細胞形態(tài)和數量將大鼠灌流取腦后制備石蠟切片,石蠟切片常規(guī)脫蠟(分別二甲苯Ⅰ 15 min、二甲苯Ⅱ 15 min),乙醇脫水(濃度梯度分別100%、95%、90%、80%、70%各5 min);蒸餾水沖洗3次,每次5 min;用甲苯胺藍染液浸染組織,后用蒸餾水洗凈染料,再依次置于70%、80%、95%和100%乙醇中脫水,二甲苯透明,最后中性樹膠封片。正置顯微鏡下觀察拍照,觀察神經細胞形態(tài),計數神經細胞數量。
2.6 TUNEL染色法檢測細胞凋亡將大鼠灌流取腦后制備冰凍切片,冰凍切片置于4%多聚甲醛固定30 min,于PBS(pH 7.4)中清洗5 min,共3次;應用蛋白酶K工作液(原液 ∶PBS=1 ∶9)修復22 min,洗滌、破膜,加入buffer常溫孵育10 min;按照TUNEL試劑盒說明配置反應液覆蓋組織,37 ℃恒溫孵育2 h,后續(xù)進行DAPI復染細胞核、封片,應用熒光顯微鏡觀察并拍照,觀察神經細胞凋亡率。
2.7 Western blot檢測相關蛋白表達取適量大鼠腦組織加入RIPA蛋白裂解液,經過研磨、離心、取上清、蛋白變性等步驟制備蛋白樣。制備SDS-PAGE凝膠進行蛋白電泳分離,用濕法將目的蛋白轉移至PVDF膜上。室溫下用質量分數為5%BSA進行膜封閉2 h,孵育一抗并置于4 ℃過夜。次日洗膜,二抗孵育1 h,再次洗膜,最后顯影成像,Image Lab軟件(Bio-Rad)對結果進行灰度分析。

3.1 補陽還五湯對大鼠神經功能評分的影響Fig 1所示,Sham組大鼠無神經功能損傷,結果為0分。Model組較Sham組評分增加(P<0.05);BYHWD組較Sham組評分下降(P<0.05),BYHWD+Met組則評分較BYHWD組增加(P<0.05)。
3.2 補陽還五湯對腦梗死體積的影響Fig 2A所示為腦梗死情況,左側大腦缺血明顯則可見白色梗死區(qū),無損傷則大腦為鮮紅色。Sham組未見梗死區(qū),對比Sham組,Model組、BYHWD組和BYHWD+Met組左側大腦缺血明顯,可見白色梗死區(qū)。如Fig 2B所示,與Model組相比,BYHWD組大鼠腦梗死體積比率明顯下降,差異具有顯著性(P<0.05)。AMPK激動劑則減弱了補陽還五湯的作用,腦梗死體積有所上升(P<0.05)。

Fig 1 Neurological function score of n=12)
3.3 補陽還五湯對大鼠神經細胞形態(tài)和數量的影響Fig 3所示,Sham組大鼠皮層細胞形態(tài)結構完整,排列緊密,胞質、核仁清晰,有大量的神經細胞存在;與Sham組相比,Model組皮層中細胞數目明顯減少(P<0.05),細胞排列紊亂,輪廓模糊不清;與Model組比較,BYHWD組皮層中細胞排列較整齊,細胞邊界較清晰,完整神經細胞數量較Model組有增加(P<0.05);AMPK激動劑削弱補陽還五湯對神經細胞的保護作用(P<0.05)。
3.4 補陽還五湯對大鼠細胞凋亡情況影響Fig 4所示,對比Sham組,Model組大鼠缺血側腦組織神經細胞凋亡率明顯升高,與Model組相比,BYHWD組大鼠神經細胞凋亡率明顯降低,差異均具有統計學意義(P<0.05);增加AMPK激動劑處理后,補陽還五湯的作用受到拮抗,細胞凋亡率有所增加(P<0.05)。
3.5 補陽還五湯對相關蛋白表達的影響Fig 5A展示了補陽還五湯對自噬蛋白LC3表達的影響。與Sham組相比較,Model組大鼠缺血側腦組織的LC3Ⅱ/Ⅰ升高(P<0.05);與Model組比,BYHWD組LC3Ⅱ/Ⅰ有所下降(P<0.05)。如Fig 5B所示,與Sham組相比,Model組p-AMPK/AMPK比值明顯升高(P<0.05),與Model組比較,BYHWD組p-AMPK/AMPK比值下降(P<0.05)。Fig 5C、D所示與Sham組比較,Model組p-mTOR/mTOR和p-ULK1/ULK1比值降低;與Model組相比,BYHWD組p-mTOR/mTOR和p-ULK1/ULK1比值明顯升高(P<0.05);在AMPK激動劑的作用下,使補陽還五湯對上述各項指標的影響下降,并均具有統計學意義(P<0.05)。

Fig 2 Infarct volume of rats n=4)

Fig 3 Nissl staining of rats (×400) n=4)

Fig 4 Neuron apoptosis of rats (×200) n=4)
缺血性腦卒中病理機制復雜,針對發(fā)病機制的各種神經保護治療效果不夠理想[8],有效的溶栓治療受到嚴格的時間窗限制,探尋中醫(yī)藥的治療可能是一有效手段。補陽還五湯用于腦卒中治療歷史久遠,可發(fā)揮補氣活血,化瘀通絡之功,多項基礎和臨床研究表明補陽還五湯具備抗腦IR損傷的作用[9-10]。我實驗室前期研究也表明補陽還五湯可上調Notch1、Hes1、Hes5的表達,對腦IR損傷大鼠神經干細胞移植后的腦保護功能起到促進作用[11]。趙欣等[5]發(fā)現補陽還五湯可通過調節(jié)自噬、穩(wěn)定線粒體功能發(fā)揮神經保護作用。
自噬是細胞內的“清道夫”,可對內環(huán)境進行監(jiān)視,及時清除老化的細胞器、損傷蛋白質,腦缺血發(fā)生后自噬呈上調趨勢[12]。自噬早期可起到保護性作用,24 h應用自噬抑制劑3-MA進行干預會增加神經元死亡率;但是48和72 h后自噬抑制劑的介入可顯著保護神經元免于死亡[13]。通過側腦室注射3-MA可顯著抑制模型組LC3Ⅱ的升高,抑制缺血半暗帶神經元的遲發(fā)性死亡,縮小腦缺血損傷病變范圍[14]。Wang等[15]發(fā)現葛根素通過AMPK/mTOR/ULK1信號通路抑制自噬,保護腦IR損傷大鼠神經功能。
當細胞能量充足時,AMPK處于失活狀態(tài),mTOR處于活化狀態(tài),活化的mTOR對ULK1的Ser757位點進行磷酸化,并防止ULK1的其他位點被AMPK直接激活,自噬受到抑制。在腦IR損傷能量迅速消耗甚至衰竭的情況下,AMPK催化亞基位點Thr172磷酸化激活,抑制mTOR,使ULK1位點Ser757磷酸化受到抑制;并且AMPK直接對ULK1其他位點磷酸化活化,最終解除mTOR的負性調節(jié)作用,發(fā)揮AMPK的促進作用,啟動自噬[16]。
本研究對補陽還五湯介導AMPK/mTOR/ULK1自噬信號通路抗大鼠腦IR損傷機制進行探討。通過建立大鼠MCAO模型,選擇再灌注72 h進行觀察。在自噬過程中,LC3的羧基末端脂質修飾即LC3Ⅱ的增加是自噬體形成所需的特征性表現,在本實驗中補陽還五湯抑制了LC3Ⅱ的表達,同時AMPK的磷酸化水平降低,活化的mTOR和ULK1 Ser757磷酸化增加,而AMPK激動劑則逆轉了補陽還五湯的上述作用,表明補陽還五湯通過AMPK/mTOR/ULK1信號通路抑制自噬,使大鼠神經功能評分、腦梗死體積、神經細胞凋亡率下降,缺血側腦組織病理損傷程度減輕,發(fā)揮神經功能保護性作用。