營養脅迫植物乳桿菌KLDS 1.0328的生理特性及其冷凍干燥菌粉貯存穩定性分析

馬佳歌，姜瞻梅，姜 瑞，侯俊財，于 微

（東北農業大學 乳品科學教育部重點實驗室，黑龍江 哈爾濱 150030）

益生菌被定義為“施予一定數量能夠對宿主健康產生有益作用的活的微生物”[1]。益生菌已被證實存在多種益生性能，包括抑制致病菌生長、降膽固醇、調節機體免疫、改善胃腸道菌群、促進營養物質的吸收及抗氧化等[2]。植物乳桿菌（Lactobacillus plantarum）是一種被認為安全的一類革蘭氏陽性乳酸菌，也是發酵食品和人類健康的重要“參與者”，其作為重要的發酵劑一直被廣泛用于發酵乳、肉和植物食品，如酸奶、奶酪、香腸、醬油、谷物飲料、泡菜等[3]。然而，益生菌在其生存環境中常面臨非生物性和生物性脅迫，其中，非生物脅迫主要發生在生產、加工、運輸及貯存等過程中，如酸、堿、溫度、滲透壓、氧和乙醇等脅迫；生物脅迫則發生在宿主和復雜的生態系統中，如胃酸、酶和膽鹽等脅迫[4]。為增強益生菌對不利環境的抵抗性和貯藏穩定性，常采用微膠囊包埋技術提高菌體的活力。其中，冷凍干燥技術是目前被廣泛應用的保護益生菌活性最為有效的方式之一。盡管與其他技術相比其成本較高，但冷凍干燥技術能夠提高菌體應對脅迫環境的抵抗力，并且兼具易于貯存和應用的優點[5]。凍干過程可能會引起菌體一定程度上的損傷，這些因素會嚴重影響益生菌的數量、活力和代謝穩定性，繼而影響發酵食品的品質及其益生功效的發揮。

隨著益生菌與腸道微生態健康關系的研究日益深入，人們也逐漸認識到益生菌所需營養物質也具有菌株特異性，許多益生菌對其生存環境的營養物質和生長條件均具有特殊的要求[6]。因此，益生菌生態位中由于營養物質缺乏帶來的營養脅迫作為一種特定的限制性因素也受到了學者們的重視[7]。眾所周知，葡萄糖是益生菌碳源和能源的最常見來源[8]。在葡萄糖耗盡的情況下，菌體遭受葡萄糖營養饑餓脅迫，益生菌則開始分解氨基酸作為替代性的碳/能源并產生芳香化合物；一個典型的例子是一些乳品相關的乳酸菌可能會將支鏈氨基酸轉化為揮發性的支鏈脂肪酸以合成ATP[9]。聚氧乙烯脫水山梨醇單油酸酯，商品名稱吐溫80（Tween 80），其作為一種非離子表面活性劑和乳化劑，被廣泛地應用于食品、藥品和化妝品等領域[10]。由于Tween 80的結構中包含親油基團——油酸基團，因而也被廣泛用作微生物生長培養基中的添加劑，為細菌（如乳酸菌屬）提供外源的油酸[11]。此外，Tween 80可通過影響菌體的細胞膜特性，保護菌體并減少不利環境帶來的影響[12]。

目前關于環境脅迫對乳酸菌影響的科學研究多集中在單一脅迫的條件下，然而在實際應用中，多種脅迫往往同時發生，且不同脅迫之間可能具有復雜的交叉關聯性[13]。由一種脅迫應激所誘導的對另一種環境脅迫的保護作用被稱為交叉保護。研究發現，馬乳酒樣乳桿菌的熱、冷、酸和膽鹽的脅迫預適應誘導了同源脅迫的耐受性和異源脅迫的交叉保護，蛋白質組學顯示在脅迫預適應處理的菌體中發生了27 個蛋白的差異性表達，其中包含參與碳水化合物代謝、平衡pH值、翻譯相關和脅迫應激蛋白，這些應激蛋白表達水平的上調可能在菌體抵御之后的脅迫方面發揮關鍵的作用[14]。近年來，眾多研究學者利用交叉保護作用成功改善了食品微生物在冷凍干燥及其貯藏過程中的存活率。甄妮等[15]報道了熱休克處理誘發的交叉保護能夠使嗜酸乳桿菌在凍干過程的存活率顯著增加，并且增強了菌體在不同貯存溫度下的抵御能力。Gasaluck等[16]采用冷和滲透交叉保護作為控制性措施，提高貯存期間凍干菌體的穩定性和延長保質期。

由于食品工業中的環境脅迫會導致乳酸菌細胞存活率大幅下降，因此，提高乳酸菌存活率和穩定性的方法和策略越來越受到食品工業的關注。分析乳酸菌在營養脅迫下的應激反應能夠更為有效地對其生長及發酵條件進行針對性設計和開發，具有十分重要的意義。然而，通過營養脅迫處理提高冷凍干燥乳酸菌在貯存過程中活力的效果目前研究較少。基于上述原因，本研究采用前期篩選出的具有益生特性的L.plantarumKLDS 1.0328為研究對象，測定葡萄糖脅迫、Tween 80脅迫以及葡萄糖和Tween 80復合脅迫對其活力、產酸、細菌素抑菌活性及形態的影響。并在此基礎上，分析經不同營養脅迫處理后冷凍干燥的L.plantarumKLDS 1.0328活力差異，以期為提高益生菌發酵劑貯存穩定性提供參考。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

L.plantarumKLDS 1.0328為東北農業大學乳品科學教育部重點實驗室分離篩選自東北傳統發酵泡菜并保藏；金黃色葡萄球菌（Staphylococcus aureusATCC 25923）和大腸桿菌（Escherichia coliATCC 25922）美國典型培養物保藏中心；MRS培養基、MRS瓊脂培養基 北京奧博星生物技術有限責任公司；脫脂乳粉黑龍江完達山乳業股份有限公司；海藻糖 阿拉丁試劑（上海）有限公司；其余試劑均采用國產分析純。

1.2 儀器與設備

VD-1320超凈工作臺 蘇州安泰空氣技術有限公司；DH4000A電熱恒溫培養箱 天津泰斯特儀器有限公司；ULT1386-3-V30超低溫冰箱 日本Sanyo公司；Allegra X-30R臺式高速冷凍離心機 美國Beckman Coulter公司；PHS-3C精密pH計 上海雷磁儀器廠；UV-2600型紫外-可見分光光度計 日本Shimadzu公司；ES-2030真空冷凍干燥儀、SU8010掃描電鏡 日本Hitachi公司；6590N-5973N氣相色譜儀 美國Agilent公司；HC103/02水分測定儀 瑞士Mettler Toledo公司；LabMaster-aw水分活度儀 瑞士Novasina公司。

1.3 方法

1.3.1 菌種的活化

將保存在-80 ℃及40%（V/V）甘油凍存管中的L.plantarumKLDS 1.0328以2%（V/V，下同）的接種量（約107CFU/mL）接種于已滅菌的MRS液體培養基中，并于37 ℃恒溫條件下培養24 h，連續活化2 代以恢復菌種活力。將該菌種接入至MRS固體平板培養基中于37 ℃培養24 h，接種環挑取單菌落移入MRS液體培養基中進行分離純化，37 ℃培養18 h作為供試菌液備用。

1.3.2 營養脅迫

采用4 種不同的生長培養基（基礎MRS、葡萄糖脅迫、Tween 80脅迫、葡萄糖和Tween 80脅迫液體培養基），以探究多種營養脅迫對L.plantarumKLDS 1.0328生理參數，如菌體生長、產酸能力、細菌素生產和菌體形態等的影響。培養基配方如表1所示。將上述培養基的pH值調整至6.2±0.1，于121 ℃高壓滅菌15 min。將L.plantarumKLDS 1.0328菌懸液以2%接種量（約107CFU/mL）接種在上述4 種營養脅迫培養基中37 ℃培養24 h，菌液于4 ℃、5 000×g離心10 min，棄上清液，采用0.85 g/100 mL生理鹽水洗滌菌泥3 次。

表1 L.plantarumKLDS 1.0328營養脅迫培養基配方Table 1 Nutrient-stress medium formulations of L.plantarum KLDS 1.0328

1.3.3 pH值和菌體生長情況的測定

使用PHS-3C精密pH計測定培養液的pH值；UV-2600型紫外-可見分光光度計用于測定菌液在600 nm波長處的OD值；通過梯度稀釋及平板菌落計數法測定活菌數[17]。

1.3.4 抑菌活性的測定

以S.aureusATCC 25923和E.coliATCC 25922為指示菌，根據牛津杯瓊脂擴散法[18]稍作改動，每隔3 h對多種營養脅迫L.plantarumKLDS 1.0328的抑菌活性進行測定。以抑菌圈的直徑（mm）表示L.plantarumKLDS 1.0328的抑菌活性強弱。

1.3.5 掃描電鏡觀察營養脅迫菌體

將1.3.2節中所獲得的營養脅迫菌體與戊二醛（2.5%，pH 6.8）混合并于4 ℃固定12 h。用0.1 mol/L的磷酸緩沖液（pH 6.8）沖洗3 次（每次10 min）。分別使用體積分數50%、70%和90%的乙醇溶液脫水15 min，再用無水乙醇脫水2 次（每次10 min）。采用無水乙醇∶叔丁醇=1∶1（V/V）和100%叔丁醇分別置換15 min。樣品于-20 ℃預凍12 h后進行冷凍干燥。將干燥的菌體粘貼在導電膠帶上并鍍金，噴金時間120 s，電流強度20 mA，采用掃描電鏡觀察營養脅迫菌體的形態。從掃描電鏡圖像中隨機選取30 個菌體，通過ImageJ軟件測量每個菌體的長度（l）和直徑（d），每次測量重復3 次。參照Parlindungan等[19]的方法定義了乳桿菌桿的半徑（r=d/2）和高度（h=l-2r），并得到平均菌體體積計算如式（1）所示：

式中：V為平均菌體體積/μm3；r為乳酸菌桿的半徑/μm；h為桿的高度/μm。

1.3.6 細胞膜脂肪酸的測定

細胞膜脂肪酸樣品制備參照Gandhi等[20]的方法進行。利用配有HP-5彈性石英毛細管柱（30 m×0.25 mm，0.25 μm）的氣相色譜儀對L.plantarumKLDS 1.0328菌體的細胞膜脂肪酸進行分離鑒定，進樣口溫度250 ℃，高純氦氣作為載氣，柱流速1 mL/min，柱前壓73.0 kPa，起始溫度70 ℃運行2 min，5 ℃/min升至230 ℃，保持20 min，5 ℃/min升至280 ℃，保持15 min，分流進樣1 μL，分流比20∶1。質譜分析：電子電離源，電子能量70 eV，離子源溫度200 ℃，接口溫度250 ℃。脂肪酸含量表示為相對物質的量百分比（%）。

1.3.7 冷凍干燥

將10 g脫脂乳粉和5 g海藻糖分散在85 mL已滅菌的去離子水中，于室溫下600 r/min磁力攪拌30 min以充分溶解，并于121 ℃滅菌15 min。將1.3.2節中所獲得的營養脅迫菌體與上述凍干保護劑混合均勻。將分散在保護劑中的菌懸液置于-20 ℃冰箱內預凍12 h。將預凍好的菌液冷凍干燥處理12 h，將凍干菌粉取出后備用。稱取1.5 g左右L.plantarumKLDS 1.0328凍干菌粉，將其疏松分散在水分測定儀托盤中央干燥以便水分迅速蒸發，直到樣品小于1 mg的質量變化達到90 s，利用干燥過程中樣品質量變化計算水分含量。凍干菌粉的水分活度于室溫下使用水分活度儀進行測定。

1.3.8 冷凍干燥存活率的測定

將各脅迫處理的L.plantarumKLDS 1.0328凍干菌粉樣品于0.85 g/100 mL生理鹽水中復水，而后進行梯度稀釋并采用平板菌落計數法測定活菌數。冷凍干燥后細胞存活率的計算如式（2）所示：

式中：S1凍干后的細胞存活率/%；N為凍干后的活菌數/（CFU/g）；N0為凍干前的活菌數/（CFU/g）。

1.3.9 營養脅迫凍干菌粉在貯存期存活率的測定

將經營養脅迫處理的L.plantarumKLDS 1.0328按1.3.6節方法進行冷凍干燥。將獲得的凍干菌粉置于Eppendorf管中并用封口膜密封，將菌粉樣品分別于-18、4、25 ℃和37 ℃貯存42 d。每隔7 d檢測其在貯存期間的細胞存活率，其計算如式（3）所示：

式中：S2為貯存期間的細胞存活率/%；NA為凍干后貯存第n周（1～6 周）的活菌數/（CFU/g）；NB為凍干后貯存第0周的活菌數/（CFU/g）。

1.4 數據處理

2 結果與分析

2.1 營養脅迫對L.plantarum KLDS 1.0328產酸和生長的影響

如圖1所示，由葡萄糖、Tween 80或兩種營養缺失帶來的脅迫環境對L.plantarumKLDS 1.0328的產酸性能和活力均有不同程度的影響。在培養24 h時，未經脅迫對照組菌液pH值為3.78±0.20，Tween 80脅迫組菌體的產酸能力與對照組相比未產生顯著差異，而葡萄糖脅迫及葡萄糖和Tween 80復合脅迫組菌體培養液的pH值至仍保持在6.14±0.20和6.06±0.28。這些結果與文獻中報道的葡萄糖是乳酸菌（如嗜酸乳桿菌、保加利亞乳桿菌、干酪乳桿菌、乳酸乳球菌和L.plantarum等）的首選碳水化合物來源一致[21]。對于生長活力而言，經葡萄糖脅迫和復合脅迫處理的L.plantarumKLDS 1.0328菌體的OD600nm和活菌數相較于對照組均顯著下降（P＜0.05），且復合脅迫組中生長活力降低的趨勢更大。此外，Tween 80脅迫組的生長活力與對照組相比未發生明顯變化，這表示L.plantarumKLDS 1.0328具有一定自我調控及適應Tween 80缺乏環境的能力，乳酸菌在Tween 80脅迫下的存活取可能決于它們利用其他營養物質的能力[22]。以葡萄糖作為碳源的營養脅迫環境下所產生的較高菌液pH值和較低生長活力的現象，取決于其偏愛有效吸收及利用葡萄糖的代謝途徑，因而不存在葡萄糖的培養基的生長及代謝水平與碳水化合物葡萄糖富集的培養基相比較低[23]。Hussian等[24-25]研究營養脅迫下干酪乳桿菌的適應能力時也發現，該菌株在無乳糖所導致的脅迫環境下培養30 d后仍能存活，說明盡管相對于富含碳水化合物培養下的干酪乳桿菌，無乳糖培養的干酪乳桿菌具有較低的生長速率和最終光密度，但該菌株仍具有適應營養脅迫環境的能力。

圖1 營養脅迫處理后L.plantarumKLDS 1.0328的pH值和生長情況分析Fig.1 pH and growth of L.plantarum KLDS 1.0328 under nutrient stress

2.2 營養脅迫對L.plantarum KLDS 1.0328抑菌活性的影響

如圖2所示，在未經營養脅迫處理的基礎MRS培養基中，L.plantarumKLDS 1.0328抑菌活性顯著高于葡萄糖脅迫處理組（P＜0.05），且對S.aureusATCC 25923和E.coliATCC 25922的抑菌圈直徑分別為（18.89±0.29）mm和（17.94±0.38）mm。此外，對照組和營養脅迫組中對S.aureusATCC 25923抑菌活性均顯著高于E.coliATCC 25922。在Tween 80或葡萄糖和Tween 80復合營養脅迫環境下，未檢測到細菌素抑菌活性。這說明Tween 80是L.plantarumKLDS 1.0328細菌素生產中非常關鍵的物質前提。結合圖1，可推測乳酸菌細菌素的抑菌活性和生長活力之間并不一定存在同步關系。此外，對比關于已有Tween 80脅迫下乳酸菌的研究可以發現，乳酸菌細菌素的抑菌活性除了受環境因素影響，還可能具有菌株特異性。Fadahunsi等[26]報道了乳酸菌培養基中Tween 80對乳酸菌生長及細菌素合成具有至關重要的作用。這也與Huot等[27]的結果相似，其分析發現Tween 80的存在使乳酸乳球菌細菌素的產量增加了4 倍。Tween 80造成的影響可以歸因于其與乳酸菌細菌素的解聚和脫吸附有關[28]。

圖2 營養脅迫處理后L.plantarum KLDS 1.0328的抑菌活性分析Fig.2 Antimicrobial activity of L.plantarum KLDS 1.0328 under nutrient stress

2.3 營養脅迫下L.plantarum KLDS 1.0328形態的差異分析

通過掃描電鏡觀察L.plantarumKLDS 1.0328菌體在多種營養脅迫培養基中生長的形態變化。基礎MRS液體培養基中菌體呈現出較為平滑和規則的形態（圖3A）；可直觀發現，與未經脅迫處理組相比，葡萄糖脅迫處理得到的菌體普遍變短，部分呈現卵圓形（圖3B）；Tween 80脅迫下菌體呈現出細長的棒狀，且部分產生了略微褶皺的表面（圖3C）；葡萄糖和Tween 80復合脅迫則導致菌體呈現出短桿乃至卵圓狀的形態（圖3D）。

圖3 營養脅迫處理后L.plantarumKLDS 1.0328的掃描電鏡圖Fig.3 SEM images of L.plantarum KLDS 1.0328 under nutrient stress

由表2可知，經Tween 80脅迫的菌體具有最大長度2.07 μm；與對照組菌體相比，Tween 80脅迫導致菌體的長度/直徑比顯著增加，且其體積也由0.40 μm3顯著上升至0.48 μm3。研究顯示，乳桿菌在沒有隔膜生長、側壁產生肽聚糖的情況下時，由于細胞不完全分裂或細胞分裂異常，可能導致菌體轉變為細長絲狀桿的形態[19]。葡萄糖脅迫及葡萄糖和Tween 80復合脅迫菌體的長度之間無顯著性差異（P＞0.05），且均顯著低于未受脅迫菌體的長度1.60 μm（P＜0.05）。營養脅迫處理的各組菌體直徑之間無顯著差異（P＞0.05）。此外，葡萄糖脅迫及葡萄糖和Tween 80復合脅迫菌體的平均長度、長度/直徑比和體積與對照組相比均顯著減小（P＜0.05）。這可能是因為菌體的短桿或球形形態可使菌體具有較大的營養攝取表面積，從而在營養缺乏的環境中保持其活性[29]。因此，可進一步推測菌體形態上所發生的變化可作為細菌生存及適應營養脅迫環境的重要方式。

表2 營養脅迫對L.plantarumKLDS 1.0328的平均長度、直徑、長度/直徑比和體積的影響Table 2 Effect of nutrient stress on average cell length, diameter,length/diameter ratio and volume of L.plantarum KLDS 1.0328

2.4 營養脅迫下L.plantarum KLDS 1.0328細胞膜脂肪酸的差異分析

如圖4所示，暴露于不同營養饑餓環境下菌體的細胞膜脂肪酸的含量均有不同程度變化。4 組樣品中共檢測出9 種脂肪酸，其中包含4 種飽和脂肪酸（saturated fatty acid，SFA）和5 種不飽和脂肪酸（unsaturated fatty acid，USFA）。SFA分別包括豆蔻酸C14:0、十五酸C15:0、棕櫚酸C16:0和硬脂酸C18:0；USFA分別包括棕櫚烯酸C16:1n-9、十八碳烯酸C18:1n-7、油酸C18:1n-9、亞油酸C18:2和環丙烷脂肪酸cycC19:0。與對照組相比可以發現，葡萄糖脅迫及Tween 80脅迫菌體的細胞膜脂肪酸中的C14:0和C15:0含量均顯著減少，C18:1n-9和cycC19:0含量顯著升高（P＜0.05）。葡萄糖脅迫組的C16:1n-9顯著高于對照組，而Tween 80脅迫組恰好相反（P＜0.05）。此外，葡萄糖和Tween 80復合脅迫組的C16:1n-9顯著低于對照組，C18:1n-9和cycC19:0含量顯著高于對照組（P＜0.05）。研究表明，cycC19:0是一種經油酸甲基化得到的USFA，其產生對于菌體抵御嚴酷環境的破壞具有重要的價值[30]。值得注意的是，不同營養脅迫處理后菌體的總UFSA和SFA含量比值具有明顯差異性。其中，對照組菌體細胞膜的USFA/SFA值為1.26，而葡萄糖脅迫組中USFA/SFA值在4 組樣品中最高約為1.41，Tween 80脅迫組和復合營養脅迫組的USFA/SFA值分別為1.35和1.32。這種UFSA占比增加的現象和Haddaji等[31]的研究相似，其也提出細菌可通過改變自身細胞膜脂肪酸的組成和含量作為適應脅迫環境的策略，細胞膜流動性受其USFA/SFA值的變化而調控，以降低其營養脅迫下的損傷。

圖4 營養脅迫處理對L.plantarumKLDS 1.0328細胞膜脂肪酸成分及含量的影響Fig.4 Effect of nutritional stress on the fatty acid composition and content of cell membrane of L.plantarum KLDS 1.0328

2.5 營養脅迫對冷凍干燥L.plantarum KLDS 1.0328存活率的影響

如表3所示，未受到營養脅迫L.plantarumKLDS1.0328在冷凍干燥后的存活率為（82.49±3.86）%。與未受營養脅迫菌體相比，葡萄糖脅迫處理菌體在凍干后存活率略低，但兩者間不存在顯著差異（P＞0.05）；葡萄糖和Tween 80復合脅迫菌體在凍干后存活率顯著低于前兩者（P＜0.05）；Tween 80脅迫后菌體在凍干后的存活率也顯著降低，為4 組樣品中的最低（（30.18±4.20）%）。此外，經營養脅迫和未經脅迫處理的各組凍干菌粉的水分質量分數和水分活度之間無顯著差異（P＞0.05）。水分質量分數及水分活度與益生菌粉的貯存穩定性密切相關[32]。已有研究表明乳基質中的水分質量分數一般應低于5%左右的臨界值，水分活度一般為0.1～0.25，以保證微生物菌體的穩定性[33-34]，過高或過低的水分活度和含量都會對菌體造成潛在的傷害。本研究結果表明樣品的水分質量分數和水分活度均在此范圍內。

表3 冷凍干燥L.plantarum KLDS 1.0328的存活率、水分質量分數和水分活度Table 3 Survival rates, moisture contents and water activity of lyophilized L.plantarum KLDS 1.0328

2.6 營養脅迫處理的凍干L.plantarum KLDS 1.0328在不同貯存溫度下的存活率

如圖5所示，未經脅迫處理和營養脅迫處理的菌體在4 種溫度下的存活率，整體上均隨貯存時間的延長呈現下降的趨勢。與更高的貯存溫度實驗組和其余營養脅迫處理組菌粉相比，在-18 ℃條件下貯存的葡萄糖脅迫凍干菌粉在貯存42 d的存活率最高，為（64.57±2.60）%。各組營養脅迫凍干菌粉于4 ℃貯存42 d期間，其存活率的變化趨勢與-18 ℃貯存環境下的相似。葡萄糖脅迫對于提高L.plantarumKLDS 1.0328凍干發酵劑在42 d貯存期間內的穩定性起到了顯著的積極作用（P＜0.05），尤其是當貯存溫度控制在25 ℃和37 ℃時。當營養脅迫菌粉貯藏于37 ℃時，對照組和3 種營養脅迫實驗組在0～7 d期間內的存活率均明顯降低，未經營養脅迫和Tween 80脅迫的凍干菌粉在37 ℃貯藏42 d存活率僅分別為（7.54±2.40）%和（2.19±0.98）%，而經葡萄糖脅迫處理后存活率可達（33.17±3.19）%，為對照組的4.40 倍。此外，葡萄糖和Tween 80復合脅迫對凍干菌粉在貯存期內活力的保護也具有一定的益處。據報道，葡萄糖缺失帶來的營養脅迫可能導致乳酸菌對其他脅迫條件（如酸、熱、滲透壓及氧脅迫）的耐受性的增強[8]。Chen等[14]通過蛋白質組學分析揭示了脅迫預適應處理可能會誘導相關應激蛋白合成的增加，從而引起對同源脅迫的保護和對異源脅迫的交叉保護作用。此外，如前所述細菌細胞膜脂肪酸的變化可解釋葡萄糖脅迫下L.plantarumKLDS 1.0328凍干菌粉在貯藏期間穩定性和生存能力的提高[35]。

圖5 營養脅迫處理凍干L.plantarumKLDS 1.0328在不同溫度下貯存42 d的存活率Fig.5 Survival rates of freeze-dried L.plantarum KLDS 1.0328 under nutrient stress stored at ?20, 4, 25 or 37 ℃ for up to 42 days

3 結 論

研究發現，與未經脅迫對照組相比，葡萄糖脅迫及葡萄糖和Tween 80復合營養脅迫對L.plantarumKLDS 1.0328的生長、產酸和細菌素抑菌活性方面均有不利影響，并且在復合脅迫培養基中得到的樣品未檢測出細菌素抑菌活性；盡管Tween 80脅迫下的菌體生長較為旺盛、產酸量較高，但也未檢測到細菌素抑菌活性；菌體由短桿狀轉變為長棒狀或卵圓形的形態可作為其暴露于Tween 80脅迫或葡萄糖及復合營養脅迫環境下的生存策略；細胞膜脂肪酸的組成和含量對維持菌體在多種營養脅迫下的存活和形態也具有重要意義；以上指標的檢測對于研究菌株的營養脅迫適應和生存機制提供了理論支持。此外，未脅迫和經葡萄糖脅迫的菌體經冷凍干燥后存活率無顯著差異，且多種營養脅迫菌粉的水分含量和水分活度均在合理范圍內。本研究得出葡萄糖脅迫可顯著提高冷凍干燥L.plantarumKLDS 1.0328在不同溫度下貯存42 d期間的存活率，且于-18 ℃條件下的存活率較高。該結果為開發和針對性設計L.plantarumKLDS 1.0328培養基及提高其貯存穩定性提供了參考。