碳酸銨對意大利青霉的作用機制及對不同柑橘果實品質的影響

許金娟，楊書珍，張美紅，李笑影，彭麗桃

碳酸銨對意大利青霉的作用機制及對不同柑橘果實品質的影響

許金娟，楊書珍，張美紅，李笑影，彭麗桃※

（華中農業大學食品科技學院，武漢 430070）

為了尋求一種安全有效的方法防治由意大利青霉（）引起的柑橘青霉病，該研究分析了碳酸銨抑制意大利青霉生長的可能作用機制及對臍橙、皇帝柑、沃柑3種不同類型柑橘貯藏品質的影響。結果表明，碳酸銨能抑制意大利青霉孢子萌發和菌絲生長，且呈現劑量依賴效應，在質量濃度分別為0.4和0.8 g/L時可完全抑制孢子萌發和菌絲生長。結構觀察表明，碳酸銨引起菌絲生長節點稀疏和分支減少；超微結構觀察發現菌絲嚴重皺縮，菌絲線粒體結構異常。生理生化分析表明，碳酸銨處理引起線粒體的鈉/鉀離子ATP酶（Na+/ K+-ATPase）、鈣離子ATP酶（Ca2+-ATPase）和鎂離子ATP酶（Mg2+-ATPase）活性下降，導致還原型谷胱甘肽（Reduced Glutathione，GSH）含量及谷胱甘肽還原酶（Glutathione Reductase，GR）活性降低，活性氧清除體系超氧化物歧化酶（Superoxide Dismutase，SOD）、過氧化氫酶（Catalase，CAT）、過氧化物酶（Peroxidase，POD）活性紊亂，促進H2O2積累。添加活性氧清除劑半胱氨酸（Cysteine，Cys）能部分恢復碳酸銨處理的病菌孢子萌發。活體接種表明，16 g/L碳酸銨處理顯著減小了柑橘果實接種意大利青霉的病斑直徑（<0.05），減輕果實發病。碳酸銨處理能降低3種類型柑橘果實自然發病率，且對果實失重率、色澤、可溶性固形物、可滴定酸、維生素C、還原糖含量無不良影響。結果表明，碳酸銨通過損傷意大利青霉菌絲線粒體結構和功能，促進活性氧積累來發揮抗真菌活性，可以作為殺菌劑的綠色有效替代品，研究結果可為碳酸銨防治柑橘果實采后腐爛提供參考。

貯藏；品質控制；意大利青霉；線粒體；碳酸銨；活性氧；作用機理；柑橘

0 引 言

柑橘是世界上主要的水果之一，橙、柑、橘、柚、檸檬等是商業上重要的柑橘類型[1]。柑橘在采后貯藏運輸環節易受多種病原菌侵染，造成嚴重的經濟損失[2]。由意大利青霉引起的青霉病柑橘占果實腐爛柑橘的30%～50%[3]。目前在生產實踐中，主要采用咪鮮胺、抑霉唑等化學殺菌劑進行防治，雖有良好的防治作用，但對人體和環境存在安全隱患[4]。因此，尋找安全有效的方法替代或減少合成殺菌劑的使用至關重要[5]。

一些無機鹽或有機鹽如碳酸鹽、山梨酸鹽、硅酸鹽、苯甲酸鹽等，通常被認為是安全（Generally Recognized As Safe，GRAS）的藥劑，由于其可接受性、低成本和高溶解度而在商業用途中有顯著優勢[4]。目前研究表明，碳酸鹽中的碳酸鈉和碳酸鉀，可以顯著抑制果實采后病原菌如意大利青霉（）、炭疽菌（）、指狀青霉（）和葡萄座腔菌（）的菌絲生長和孢子萌發[6-8]。活體試驗研究結果顯示碳酸鈉、碳酸鉀、碳酸氫鉀等鹽類，可有效控制檸檬、橙子、葡萄等果實采后真菌侵染，降低果實的發病率[8-11]。碳酸銨是一種常見的無機鹽，化學式為(NH4)2CO2，具有強烈的氨臭味，易溶于水，且水溶液呈堿性。有研究發現，碳酸銨具有較強的抗真菌能力，能顯著降低夏橙由酸腐菌（）引起的腐爛，主要是通過抑制酸腐菌菌絲呼吸，改變膜通透性，加劇核酸和蛋白的丟失來發揮其抗真菌活性[12]。碳酸銨與可食用涂膜如羥丙基甲基纖維素、蜂蠟等復配使用，有一定的防治果實采后病原菌侵染的效果，如可有效抑制櫻桃番茄接種灰葡萄孢菌（）后灰霉病的侵染，延長果實貯藏期[13]；可降低柑橘接種焦腐病菌（）的發病率，且能保持果實品質[14]；顯著抑制李子褐腐病菌（）的菌絲生長，降低李子采后褐腐病發生率[15]。

課題組前期研究發現，碳酸銨能抑制柑橘意大利青霉活性[16]，但對意大利青霉的作用機制及對不同柑橘種類果實品質的影響尚不明確。因此，本研究主要分析碳酸銨對柑橘意大利青霉抑制的可能作用機制，并評價了碳酸銨對臍橙、皇帝柑、沃柑采后腐爛和貯藏品質的影響，為碳酸銨作為有機、安全有效的柑橘防腐保鮮劑應用提供理論依據。

1 材料與方法

1.1 材料與主要試劑

意大利青霉從具有典型青霉病癥狀的柑橘上分離而來，并接種果實，由形態學和分子手段鑒定為意大利青霉。

用無菌接種環刮取在馬鈴薯葡萄糖瓊脂（Potato Dextrose Agar，PDA）培養基中培養3 d的意大利青霉孢子，并將其懸浮于含有0.05%（體積分數）Tween 80的蒸餾水中。臍橙、皇帝柑、沃柑均購自華中農業大學當地市場，挑選大小相似、無機械損傷的果實，在26 ℃、相對濕度為90%～95%下貯存。碳酸銨、蔗糖、Tween等試劑均購自國藥集團化學制劑有限公司。

1.2 儀器與設備

顯微鏡（寧波舜宇儀器有限公司，EX20Thermo Fisher）；UV-1000紫外分光光度計（上海美普達儀器有限公司，UV-1000）；掃描電鏡（日本NTC儀器公司，JSM-6390LV）；透射電鏡（日本HITACHI公司，H-7650）；超聲波細胞粉碎機（寧波新芝生物科技股份有限公司，SCIENTZ-ⅡD）。

1.3 試驗方法

1.3.1 意大利青霉孢子萌發的測定

參考熊琪等[17]的方法，分別將0.025、0.050、0.100、0.200、0.400 g/L的碳酸銨溶液與PDA培養基混勻，然后將培養基均勻涂于載玻片上，培養基凝固后，在載玻片兩端滴加10L孢子懸浮液（5×106個/mL），置于滅菌培養皿中并封口后，在26 ℃生化培養箱內恒溫培養，8 h后在光學顯微鏡下觀察萌發情況，使用照相機軟件（TS-View 6.2.3.2）統計孢子萌發率。按照公式（1）計算萌發率。

1.3.2 意大利青霉菌絲生長量的測定

參考Yang等[18]方法，用涂布棒將200L 意大利青霉孢子懸浮液（1×106個/mL）均勻涂布于PDA培養基上，于26℃培養箱中培養24 h。打孔器（7 mm）取菌餅并將其反貼于含不同濃度碳酸銨的PDA培養基上，于26 ℃條件下培養，每24 h采用十字交叉法測定菌落直徑。

1.3.3 菌絲形態和超微結構的觀察

在培養24 h菌絲的培養基中，加入碳酸銨溶液使其終濃度為0.8 g/L，對照組加等量無菌水，繼續培養24 h，收集菌絲，在光學顯微鏡下觀察。掃描電鏡觀察參考Yang[18]等的方法，菌絲用2.5%（體積分數）戊二醛固定48 h，磷酸鹽緩沖液（Phosphate Buffered Saline，PBS，pH值7.2）洗滌3次，隨后將蓋玻片在梯度乙醇（30%、50%、70%、95%和100%，體積分數）中脫水20 min，并在液態CO2中干燥至臨界點。離子濺射儀鍍膜，然后在掃描電鏡下觀察樣品。對于透射電鏡，菌絲在3%戊二醛溶液中固定過夜，用0.1 mol/L PBS清洗3次，在2%鋨酸中固定，脫水，并包埋在SPI-812環氧樹脂中。用Leica UC6超薄切片后，用乙酸鈾酰和檸檬酸鉛染色，在透射電鏡下觀察切片。

1.3.4 線粒體ATPase活性測定

培養2 d的菌絲用0.4、0.8、1.6 g/L碳酸銨（該濃度分別為碳酸銨對意大利青霉的0.5、1、2倍的最小抑菌值（Minimal Inhibitory Concentration，MIC））處理不同時間，無菌水做對照。參考Li等[19]方法提取線粒體，用超聲波細胞粉碎機破碎線粒體，用購買自南京建成生物科技公司的ATP酶活力測試盒檢測Na+/K+-ATPase、Ca2+-ATPase和Mg2+-ATPase活力。

1.3.5 菌絲H2O2含量的測定

參考Sagisaka[20]的方法，稱取1 g菌絲于玻璃勻漿器中，并加入4 mL PBS（pH值 7.5）于冰浴中進行研磨，然后加入2.8 mL 5%（體積分數）的三氯乙酸，混勻后于10 000 r/min離心10 min。取1.6 mL上清液于試管中，加入0.2 mL的硫氰酸鉀（2.5 mol/L）、0.4 mL的硫酸亞鐵銨（10 mmol/L）、0.4 mL 50%（體積分數）的三氯乙酸，混勻，于480 nm 波長下測定吸光度。

1.3.6 H2O2清除劑對病原菌保護作用的評價

參考張美紅等[21]方法，并作適當修改。將碳酸銨溶液加入到滅菌PDA培養基中，使其終質量濃度為0.2 g/L，并在培養基加入半胱氨酸，使其終濃度分別為0、5、10、20 mmol/L，將PDA培養基平鋪在載玻片上，置于培養皿中，培養基凝固后，在兩端各滴加10L孢子懸浮液（5×106個/mL），用封口膠密封后置于26 ℃培養箱中，培養10 h時用顯微鏡觀察孢子萌發。

1.3.7 還原型谷胱甘肽含量的測定

培養2 d的菌絲體過濾后稱取0.5 g左右加入10 mL 的生理鹽水，用組織勻漿器研磨均勻。在4 ℃、4 000×下離心 10 min，取上清，用購買自南京建成生物科技公司的谷胱甘肽試劑盒進行測定。

1.3.8 抗氧化酶活性的測定

酶活測定參考包斯琴等[22]的方法，并稍作修改。取1 g培養24 h的菌絲加入3 mL的PBS（0.05 mol/L，pH值7.2）在冰浴中研磨，于10 000 r/min、4 ℃離心20 min，上清即為提取的粗酶液。過氧化氫酶（Catalase，CAT）活性采用H2O2分解法測定；超氧化物歧化酶（Superoxide Dismutase，SOD）活性測定采用核黃素-NBT法；過氧化物酶（Peroxidase，POD）活性測定采用愈創木酚法，酶活單位均用U/mg表示。

1.3.9 碳酸銨對接種病菌果實腐爛的影響

參考Ji等[23]方法，略有修改。將柑橘果實在0.2%（體積分數）次氯酸鈉溶液中浸泡2 min，用蒸餾水清洗兩次，自然晾干后，在果實赤道部位造傷傷口，分別接種20L質量濃度為4、8、16 g/L的碳酸銨溶液（碳酸銨濃度根據活體試驗的預試驗結果確定），無菌水為對照。在室溫下自然晾干后，在造傷處繼續接種20L 1×106個/mL孢子懸浮液，將果實密封于保鮮盒中，置于26 ℃培養箱中，每日觀察病斑變化并測定病斑直徑。

1.3.10 柑橘果實貯藏品質的測定

將大小均勻的健康果實用蒸餾水清洗干凈后，再將果實分別在質量濃度為4、8、16 g/L的碳酸銨溶液中浸泡處理10 min，蒸餾水作對照。自然晾干后，將柑橘儲存于保鮮袋中，并置于26 ℃培養箱中，定期取樣，分析失重率、腐爛率和品質指標。

果實的失重率采用稱重法測定，腐爛率采用統計方法分析，色澤采用3nh分光測色計測定果實色澤變化；采用WYT-J手持糖度計測定柑橘果汁中可溶性固形物含量；2，6-二氯酚靛酚法測定柑橘維生素C含量；可滴定酸含量的測定參考Vilaplana等[24]所用的酸堿滴定法。

1.4 數據處理與分析

所有試驗進行3次平行，3次重復。數據用Excel繪圖并用SPSS18.0軟件進行單因素方差分析。

2 結果與分析

2.1 碳酸銨對孢子萌發及菌絲生長的影響

碳酸銨處理對意大利青霉孢子萌發有顯著影響，如圖1a所示，隨著處理濃度的增加，孢子萌發率降低，質量濃度為0.200 g/L時，抑制效果顯著（<0.05），孢子萌發率為36.6%，而在0.400 g/L時，未見孢子萌發。碳酸銨對意大利青霉的菌絲生長速率的影響如圖1b所示，隨著碳酸銨濃度的增加，意大利青霉生長速率逐漸降低，菌落直徑逐漸減小，碳酸銨質量濃度達到0.8 g/L時，在培養5 d內，未觀察到意大利青霉菌絲的生長。

2.2 碳酸銨對菌絲形態和超微結構的影響

碳酸銨對意大利青霉菌絲形態的影響如圖2所示，在光學顯微鏡下觀察到，對照組的菌絲生長繁盛，分支較多，碳酸銨處理后，菌絲生長節點較少，幾乎無分支；進一步通過掃描電鏡觀察發現，未處理的菌絲表面光滑且大小均勻，而處理后的菌絲干癟彎曲且有明顯的褶皺。這說明碳酸銨處理導致意大利青霉菌絲形態被破壞。通過透射電鏡觀察菌絲的超微結構發現，碳酸銨對菌絲線粒體影響較明顯，對照組菌絲內部線粒體結構完整，且分布均勻，有膨大的嵴，排列整齊，而0.8 g/L碳酸銨導致線粒體嚴重變形，外膜斷裂，線粒體基質透明化且有部分線粒體已經溶解，這表明碳酸銨處理嚴重破壞了意大利青霉線粒體的結構。

2.3 碳酸銨對線粒體ATPase活性的影響

碳酸銨處理后，3種ATP酶活性變化如圖3所示，在處理12 h內，0.4 g/L碳酸銨處理組的Na+/K+-ATPase、Mg2+-ATPase活力都有上升趨勢，而Ca2+-ATPase活性整體呈現下降趨勢，處理12 h后，3種ATP酶活都顯著降低（<0.05），并表現出濃度劑量效應，1.6 g/L碳酸銨處理組3種ATP酶活分別下降至0.073、0.109和0.146 U/mg。這表明碳酸銨處理破壞了線粒體ATPase活性，從而引起線粒體能量代謝障礙。

2.4 碳酸銨對H2O2含量的影響

H2O2被認為是活性氧（Reactive Oxygen Species，ROS）的主要化合物之一，主要在線粒體中產生。碳酸銨對意大利青霉H2O2的影響如圖4所示，碳酸銨處理組的H2O2含量明顯高于對照組，在處理6 h時，0.8 g/L碳酸銨處理組的H2O2含量為對照的1.85倍。結果表明，碳酸銨處理導致H2O2積累，進一步可能會導致線粒體損傷。

2.5 碳酸銨對還原型谷胱甘肽含量和谷胱甘肽還原酶活力的影響

碳酸銨處理對細胞中還原型谷胱甘肽（Reduced Glutathione，GSH）含量的影響如圖5a所示，隨著處理時間的增加，GSH水平顯著下降（<0.05），且呈濃度依賴性，在處理6 h時，碳酸銨處理組GSH含量分別下降至1.087、0.472、0.425 mg/g，與對照組8.370 mg/g相比，均顯著降低（<0.05），這意味著谷胱甘肽已不能及時清除機體內過量的活性氧。碳酸銨處理降低了谷胱甘肽還原酶（Glutathione Reductase，GR）活性。如圖5b所示，碳酸銨處理6 h時，對照組和1.6 g/L碳酸銨處理組的GR活力分別為558.86、65.14 U/g，這表明碳酸銨處理導致GR活力降低，GR無法正常催化GSSG還原成GSH，從而導致機體中的活性氧無法及時清除。

2.6 碳酸銨對抗氧化酶活性的影響

碳酸銨對菌絲抗氧化酶的影響如圖6所示，隨著碳酸銨濃度的增加，CAT酶活出現上升趨勢，而POD和SOD酶活則有相反的結果，隨著碳酸銨濃度的增加，POD和SOD酶活逐漸減小。在處理3 h內，0.8和1.6 g/L的碳酸銨處理組的POD酶活分別降低到0.22和0.19 U/mg。結果表明碳酸銨破壞了意大利青霉抗氧化酶系的平衡，機體內活性氧無法及時清除。

2.7 H2O2清除劑對孢子萌發的保護作用

半胱氨酸是有效的H2O2清除劑，對孢子萌發的保護作用如圖7所示，僅添加碳酸銨的孢子萌發率為24.58%，添加一定濃度的半胱氨酸后，孢子萌發率有所提高，培養基添加5 mmol/L半胱氨酸后，孢子的萌發率為31.85%，再次印證碳酸銨至少部分通過導致病原菌活性氧積累來發揮抗真菌活性。

2.8 碳酸銨對接種病菌果實腐爛程度的影響

柑橘接種意大利青霉5 d后，果實腐爛的變化如圖8所示，經過碳酸銨浸泡處理后的臍橙、皇帝柑及沃柑的病斑直徑均小于對照組，在16 g/L的碳酸銨處理下，臍橙、皇帝柑、臍橙的病斑直徑分別為對照組的49.2%、48.1%、62.7%，這表明柑橘果實經過碳酸浸泡處理后，可以顯著抑制意大利青霉病菌在柑橘果實上的擴散（<0.05）。

2.9 碳酸銨處理對柑橘自然腐爛率的影響

碳酸銨處理對柑橘果實自然腐爛的影響如圖9所示，與對照相比，碳酸銨處理有效降低了3種柑橘的腐爛率。貯藏30 d后，16 g/L的碳酸銨處理下，臍橙、皇帝柑及沃柑的果實腐爛率與對照相比，分別降低了48.02%、29.78%、29.17%。試驗表明碳酸銨可有效降低柑橘果實腐爛率，特別是16 g/L的碳酸銨作用效果較好。

2.10 碳酸銨對柑橘貯藏品質的影響

碳酸銨對3種柑橘品質的影響如表1所示，貯藏30 d后，3種品類的柑橘果實質量較貯藏前均有所降低，碳酸銨處理后，臍橙失重率低于對照組，且呈現劑量依賴效應；而對沃柑有相反的趨勢，碳酸銨處理導致沃柑失重率增加；4 g/L碳酸銨使皇帝柑失重率增加，16 g/L碳酸銨處理減小了其失重率。貯藏結束后，對照組與處理組的柑橘果實可溶性固形物含量無明顯變化。柑橘的維生素C含量較貯藏前有所降低，碳酸銨處理組的沃柑和臍橙的維生素C含量較對照組略高，且8 g/L處理組的維生素C含量相對較高，而處理組的皇帝柑的維生素C含量較對照組略低，說明適當濃度的碳酸銨處理可以抑制沃柑、臍橙果實維生素C的降解，且對沃柑的作用效果較好。碳酸銨處理的沃柑可滴定酸含量略低于對照組，而對于臍橙、皇帝柑，碳酸銨處理使其可滴定酸含量略有增加。16 g/L碳酸銨處理使臍橙和皇帝柑的還原糖含量略有降低，而沃柑還原糖含量略有增加。貯藏30 d后，處理組的3種柑橘的*、*、*值與對照組相比，變化較小，這表明碳酸銨處理對柑橘色澤無不利影響。

表1 碳酸銨處理對臍橙、皇帝柑、沃柑果實貯藏30 d后理化指標的影響

注：同種柑橘品質同列間相互比較，具有不同標記字母的為差異性顯著（＜0.05）。

Note: Citrus quality attributors are compared with each other within the same column and those with different labeled letters are considered significant (<0.05).

3 討 論

全世界對合成殺菌劑相關健康風險認識的不斷提高，促使研究人員探索新的、更安全的天然抗菌劑和食品保鮮劑產品[25]。在本項研究中，碳酸銨作為通常認為安全的藥劑，可以有效抑制體外和柑橘上意大利青霉的生長（<0.05），降低柑橘在貯藏期間的腐爛率（<0.05），并且對柑橘品質無不良影響，儲藏結束后，幾乎聞不到氨臭味。結果表明碳酸銨是一種安全有效的柑橘采后病害的控制方法。

目前多數研究表明，鹽類可以抑制病原菌的分生孢子萌發、芽管伸長[7-9]。在本研究中發現，0.4 g/L碳酸銨可以完全抑制意大利青霉的孢子萌發（圖1），通過光學顯微鏡和掃描電鏡觀察發現，碳酸銨處理導致菌絲生長異常，出現褶皺，塌陷且不規則分支（圖2），與NO熏蒸對意大利青霉菌絲形態的影響一致[26]，這些結果均表明意大利青霉在抗真菌藥物的作用下，菌絲形態可能會受到破壞。

線粒體作為細胞進行呼吸的主要細胞器，其結構的完整性與生物的生命活動密切相關。Li等[19]研究發現茶樹油通過影響灰葡萄孢菌的線粒體來抑制病原菌的生長，最直觀的表現為線粒體的結構被破壞，導致外膜破裂，空泡化及囊泡出現。在本研究中有類似的結果，通過透射電鏡觀察發現碳酸銨導致意大利青霉菌絲線粒體結構異常，外膜斷裂，這表明意大利青霉線粒體可能是碳酸銨作用的重要靶點，碳酸銨處理導致線粒體結構破壞，進一步可能影響線粒體功能（圖2）。ATPase是大多數生物膜中普遍存在的質子泵，在能量代謝中起重要作用，可以維持細胞內外滲透壓，為物質的運輸和能量的轉換提供驅動力，還能平衡pH值，維持膜電位[27]。Ju等[28]研究發現在檸檬醛的處理下，婁地青霉（）的Na+/K+-ATPase、Mg2+-ATPase、Ca2+-ATPase活性均顯著下降，進一步導致能量代謝水平降低，表明檸檬醛可以通過破壞婁底青霉的ATPase活性發揮其抗真菌活性。在本研究中發現，1.6 g/L碳酸銨處理導致意大利青霉線粒體的3種ATPase活性顯著降低（<0.05）（圖3），這表示線粒體正常功能被破壞，也將會引起能量代謝失調。

活性氧（Reactive Oxygen Species，ROS）積累會導致脂質，蛋白質，碳水化合物以及核酸的損傷[29]，線粒體是ROS的主要來源，因此線粒體易受到ROS的攻擊而發生氧化損傷，進而導致線粒體結構功能失調。本試驗結果顯示，碳酸銨導致意大利青霉H2O2含量的增加（圖4），H2O2是ROS的主要類型，表明碳酸銨處理引起意大利青霉菌絲活性氧累積，而導致線粒體氧化損傷，與硼酸處理導致芒果炭疽菌（）孢子中ROS積累而導致線粒體功能障礙的結果一致[30]。半胱氨酸是有效的活性氧清除劑，筆者研究發現，添加5 mmol/L半胱氨酸時，可以明顯提高碳酸銨處理的意大利青霉菌孢子萌發率（圖7），再次印證了碳酸銨通過導致菌絲活性氧積累發揮抗真菌活性。

抗氧化酶及還原型谷胱甘肽（GSH）是細胞內是重要的抗氧化劑和自由基清除劑，谷胱甘肽還原酶（GR）可以催化氧化型谷胱甘肽（GSSG）還原成GSH。Park[31]研究發現外源性H2O2處理肺癌細胞，可以導致細胞內ROS積累，CAT活性提高，SOD活性降低，且造成GSH含量的下降，表明通過促進細胞ROS積累，導致抗氧化酶系統失衡是H2O2抑制細胞生長的重要途徑。在本研究中有類似的結果，碳酸銨處理降低了菌絲內GSH含量及GR活力（圖5），同時CAT活性提高，SOD、POD活性降低（圖6），這表明細胞中抗氧化系統平衡被打破，無法清除過量的ROS 而出現不可逆的反應，最終也會導致線粒體功能喪失。

在活體試驗中，碳酸銨處理可以降低臍橙、皇帝柑、沃柑上接種病原菌的擴散，皇帝柑經16 g/L碳酸銨的處理后，接種孢子懸浮液5 d后的果實病斑直徑僅為對照的48.1%（圖8）。Zhang等[32]研究發現，梨經過1.22 mmol/L 的2-苯乙基異硫氰酸酯處理后，接種鏈格孢菌（）7 d后的病斑直徑僅為對照的39%，與本試驗結果相似。保鮮劑的保鮮效果還要考慮果蔬的生理生化指標變化。Fagundes等[13]發現丙酸鈉、硼酸鉀、磷酸銨和碳酸銨等鹽類涂膜的使用不會對櫻桃番茄果實的呼吸速率、硬度、顏色、感官風味和外觀產生不利影響，在本研究中同樣發現，碳酸銨處理可以有效降低3種柑橘在貯藏期間的腐爛率（圖9），且對3種柑橘的營養成分無不利影響（表1）。

4 結 論

1）通過孢子萌發試驗和菌餅生長試驗，證實0.4 g/L碳酸銨處理可以完全抑制孢子萌發，0.8 g/L碳酸銨可以完全抑制菌絲生長。

2）碳酸銨處理會破壞意大利青霉菌絲的正常形態及線粒體結構，降低線粒體ATPase活性，造成H2O2積累，還原型谷胱甘肽（Reduced Glutathione，GSH）含量及谷胱甘肽還原酶（Glutathione Reductase，GR）活性降低，抗氧化系統平衡被破壞。

3）16 g/L的碳酸銨處理可以顯著降低柑橘的自然腐爛率，貯藏30 d后，臍橙、皇帝柑、沃柑的自然腐爛率與對照相比分別降低了48.02%、29.78%、29.17%；碳酸銨處理明顯降低3種柑橘品種接種意大利青霉后的腐爛程度，并對其營養品質無不良影響。

研究結果表明，碳酸銨對柑橘采后致病菌意大利青霉有強烈的抑制作用，且碳酸銨處理對柑橘品質無不良影響，因此，碳酸銨處理有望進一步開發為綠色、安全、有效的防治柑橘采后腐爛的技術方法。

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Mechanism of ammonium carbonate onand its effect on the quality of different citrus fruits

Xu Jinjuan, Yang Shuzhen※, Zhang Meihong, Li Xiaoying, Peng Litao※

(430070,)

Citrus is susceptible to infection by a variety of fungi during storage and transportation, leading to severe economic loss.is one of two major postharvest diseases of citrus fruits, causing blue mold. It is crucial to seek a safe and effective way to replace or reduce the use of synthetic fungicides for health and environmental concerns. Since the ammonium carbonate can be expected to inhibitactivity in recent years, it still remains unknown on the specific mechanism and the effect on the fruit quality of different citrus species. Taking the “Navel” orange, “Tribute” citrus, and “Fertile” orange as the research objects, this study aims to investigate the antifungal activity of ammonium carbonate againstcausing blue mold in fruits via interfering reactive oxygen metabolism. A possible mechanism of ammonium carbonate was also clarified to evaluate the storage qualities under the safe and limited growth ofafter treatment. Scanning and Transmission Electron Microscope (SEM/TEM) were utilized to characterize the mycelial morphology and mitochondrial structure. The mitochondrial ATPase activities and H2O2content were also measured to determine the inhibition of substances against the pathogens. Furthermore, the activity of antioxidant enzymes and the content of reduced glutathione were measured to further clarify the effect of ammonium carbonate on the accumulation of Reactive Oxygen Species (ROS). In addition, an in-vivo experiment was carried out to explore the effects of ammonium carbonate on the storage quality, such as soluble solids, vitamin C, titratable acid, reducing sugar, and color of citrus. The results showed that ammonium carbonate greatly inhibited the spore germination and mycelial growth ofin a dose-dependent manner. Specifically, ammonium carbonate at 0.4 and 0.8 g/L completely inhibited the spore germination and mycelial growth, respectively. The morphology observation showed that ammonium carbonate caused the growth of mycelia with sparse nodes and fewer branches. Ultrastructural observation showed that the hypha was seriously shrunk to the abnormal structure of mitochondria. Physiological and biochemical analysis indicated that ammonium carbonate treatment caused the decrease of Na+/K+-ATPase, Ca2+-ATPase, and Mg2+-ATPase activities in the mitochondria of hypha, further resulted in the loss of reduced glutathione content and glutathione reductase activity, concurrently interrupted the balance of Superoxide Dismutase (SOD), Catalase (CAT) and Peroxidase (POD) activities in the scavenging system of ROS, and finally to promote the H2O2accumulation in hypha of. Nevertheless, the addition of Cysteine (Cys), a scavenger of ROS, partially restored the spore germination that inhibited by ammonium carbonate. In vivo test, 16 g/L ammonium carbonate treatment significantly reduced the lesion diameter of citrus fruits inoculated with(<0.05), and then alleviated the disease severity in “Novel” orange, “Tribute” citrus, and “Fertile” orange. Correspondingly, the ammonium carbonate treatment can be expected to reduce the natural disease incidence without adverse effects on fruit weight loss, color, and quality parameters, including soluble solids, titratable acid, vitamin C, and reducing sugar contents. These results demonstrated that ammonium carbonate can be used to damage the mitochondrial structure and function of, thereby promoting the accumulation of ROS for the antifungal activity. The powerful antifungal activity of ammonium carbonate againstcan offer great potential application in control of postharvest decay of citrus fruits.

storage; quality control;; mitochondrion; ammonium carbonate; Reactive Oxygen Species (ROS); action mechanism; citrus

許金娟，楊書珍，張美紅，等. 碳酸銨對意大利青霉的作用機制及對不同柑橘果實品質的影響[J]. 農業工程學報，2021，37(15)：299-307.doi：10.11975/j.issn.1002-6819.2021.15.035 http://www.tcsae.org

Xu Jinjuan, Yang Shuzhen, Zhang Meihong, et al. Mechanism of ammonium carbonate onand its effect on the quality of different citrus fruits[J]. Transactions of the Chinese Society of Agricultural Engineering (Transactions of the CSAE), 2021, 37(15): 299-307. (in Chinese with English abstract) doi：10.11975/j.issn.1002-6819.2021.15.035 http://www.tcsae.org

2021-06-04

2021-08-01

國家自然科學基金項目（31871850）

許金娟，研究方向為果蔬貯藏與保鮮。Email：2498780612@qq.com

彭麗桃，博士，教授，博士生導師，研究方向為果蔬貯藏保鮮。Email：penglt12@mail.hzau.edu.cn

10.11975/j.issn.1002-6819.2021.15.035

TS255.1

A

1002-6819(2021)-15-0299-09