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甜橙來源法尼烯合成酶的異源表達及酶學(xué)性質(zhì)研究

2021-11-17 09:25:02付聞文王均華李由然石貴陽
食品與發(fā)酵工業(yè) 2021年21期
關(guān)鍵詞:檢測

付聞文,王均華,李由然,石貴陽*

1(糧食發(fā)酵工藝與技術(shù)國家工程實驗室(江南大學(xué)),江蘇 無錫,214122) 2(江南大學(xué) 生物工程學(xué)院,江蘇 無錫,214122)

法尼烯是倍半萜化合物,存在于多種植物的葉片和果實中,是重要的信息素[1],在植物防御中發(fā)揮重要作用[2-3],也是柴油和噴氣燃料的高效替代物[4]。法尼烯合成酶(farnesene synthase,F(xiàn)S)是法尼烯合成途徑中的關(guān)鍵酶,催化前體法尼基焦磷酸(farnesyl diphosphate,F(xiàn)PP)生成法尼烯。

法尼烯在植物中含量極低,提取困難,利用合成生物學(xué)方法有望高效獲得這一高值化學(xué)品[5]。FS是法尼烯合成途徑中的關(guān)鍵酶,對法尼烯的生成具有重要調(diào)控作用[6-7]。目前已有多種植物來源的FS通過微生物異源表達被鑒定了功能,但僅對蘋果、青蒿等來源的FS進行了詳盡的酶學(xué)性質(zhì)研究[8-11],對FS酶學(xué)性質(zhì)認(rèn)識的不足限制了其在合成生物學(xué)中的應(yīng)用。法尼烯作為揮發(fā)性物質(zhì)在柑橘中存在廣泛[12],本研究擬通過基因挖掘及異源表達對一種甜橙來源的萜類合成酶(farnesene synthase fromCitrussinensis,F(xiàn)SCS)進行功能表征,并對酶學(xué)性質(zhì)進行研究,以期將其應(yīng)用于重組釀酒酵母合成法尼烯。

1 材料與方法

1.1 實驗材料

1.1.1 菌株與質(zhì)粒

本研究所用菌株和質(zhì)粒見表1。

表1 本研究所用菌株和質(zhì)粒Table 1 Strains and plasmids used in this study

1.1.2 儀器和試劑

限制性核酸內(nèi)切酶(SalⅠ,BamH Ⅰ,NcoⅠ,DpnⅠ,XbaⅠ)、T4DNA連接酶,美國Thermo Fisher;2×TaqPCR Master Mix、2×Phanta Max Master Mix,南京諾唯贊生物科技有限公司;質(zhì)粒DNA 提取試劑盒、DNA 純化試劑盒、DNA 凝膠回收試劑盒,康寧生命科學(xué)有限公司(上海);卡那霉素、氨芐青霉素、遺傳霉素(geneticin,G418)、法尼烯標(biāo)準(zhǔn)品,美國Sigma;乙二胺四乙酸(ethylene diamine tetraacetic acid,EDTA)、二硫蘇糖醇(dithiothreitol,DTT)、異丙基硫代半乳糖苷(isopropyl β-D-thiogalactoside,IPTG),北京索萊寶科技有限公司;蛋白胨和酵母粉,OXOID;其余試劑均為國產(chǎn)或進口分析純。

GCMS-QP 2020氣質(zhì)色譜-質(zhì)譜聯(lián)用儀,日本島津公司;UltiMate 3000高效液相色譜儀,Thermo Scientific。

1.1.3 培養(yǎng)基及培養(yǎng)條件

酵母浸出粉胨葡萄糖(yeast extract peptone dextrose, YPD)培養(yǎng)基(g/L):酵母提取物10.0,胰蛋白胨20.0,無水葡萄糖20.0。

兩相萃取發(fā)酵培養(yǎng)基(g/L):葡萄糖30.0,酵母粉10.0,蛋白胨20.0,十二烷(體積分?jǐn)?shù)10%)。

TB(terrific broth)培養(yǎng)基(g/L):甘油5.0,蛋白胨12.0,酵母粉24.0,K2HPO412.5,KH2PO42.3。

大腸桿菌發(fā)酵培養(yǎng)條件:將種子液按體積分?jǐn)?shù)3%接種量轉(zhuǎn)接至50 mL發(fā)酵培養(yǎng)基,添加終質(zhì)量濃度為30 μg/mL卡那霉素,于37 ℃、200 r/min搖床培養(yǎng)至OD600為0.6~0.8,加入終濃度為0.5 mmol/L IPTG誘導(dǎo),于18 ℃、200 r/min搖床培養(yǎng)22 h。

釀酒酵母發(fā)酵培養(yǎng)條件:將種子液按體積分?jǐn)?shù)2%接種量轉(zhuǎn)接至30 mL發(fā)酵培養(yǎng)基,添加終質(zhì)量濃度為30 g/L葡萄糖溶液,體積分?jǐn)?shù)10%的十二烷,于30 ℃、200 r/min搖床培養(yǎng)72 h。

1.2 實驗方法

1.2.1 氨基酸序列分析

將NCBI數(shù)據(jù)庫中大豆來源FS(登錄號:NM_001353335.1)氨基酸序列用BLAST比對,選擇序列相似度為53%的Fscs,借助DNAMAN進行關(guān)鍵位點分析。

1.2.2 重組表達質(zhì)粒構(gòu)建

1.2.2.1 原核表達質(zhì)粒pET28a-Fscs構(gòu)建

根據(jù)E.coli密碼子偏好優(yōu)化并基因合成pUC57-Fscs,在兩端分別加入酶切位點BamH Ⅰ、SalⅠ。提取質(zhì)粒,用SalⅠ、BamH Ⅰ雙酶切并膠回收,將載體pET28a用SalⅠ、BamH Ⅰ雙酶切并線性化。將基因片段與載體于16 ℃條件下連接,連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)入DE3感受態(tài),涂布卡那抗性平板,于37 ℃恒溫烘箱中培養(yǎng)10~12 h,挑取轉(zhuǎn)化子,提取質(zhì)粒雙酶切驗證并測序。構(gòu)建表達質(zhì)粒pET28a-Fscs所需引物見表2。

表2 構(gòu)建pET28a-Fscs表達質(zhì)粒所用引物Table 2 Primers for the construction of plasmid carrying Fscs

1.2.2.2 真核表達質(zhì)粒Ts gal80-xtpfscs的構(gòu)建

質(zhì)粒Ts-xtpfscs的構(gòu)建:將針對Saccharomycescerevisiae密碼子優(yōu)化合成的pUC57-Fscs提取質(zhì)粒,用SalⅠ、BamH Ⅰ雙酶切并膠回收;提取質(zhì)粒Ts-XTP,反向PCR準(zhǔn)備載體,PCR產(chǎn)物用DpnⅠ消化并用SalⅠ、BamH Ⅰ雙酶切;將目的片段與載體于16 ℃條件下連接,轉(zhuǎn)化JM109感受態(tài),篩選正確轉(zhuǎn)化子,酶切驗證后保藏菌株。

質(zhì)粒Ts gal80-xtpfscs的構(gòu)建:提取質(zhì)粒Ts-xtpfscs,用XbaⅠ酶切后膠回收;提取質(zhì)粒Ts-GAL80,反向PCR準(zhǔn)備載體并用XbaⅠ酶切;后續(xù)實驗步驟同質(zhì)粒Ts-xtpfscs的構(gòu)建。構(gòu)建質(zhì)粒所需引物見表3。

Ts gal80-xtpfscs醋酸鋰轉(zhuǎn)化釀酒酵母WH4:活化釀酒酵母WH4菌株,培養(yǎng)至OD600=0.6;將Ts gal80-xtpfscs用NcoⅠ酶切并純化,進行釀酒酵母醋酸鋰轉(zhuǎn)化實驗。涂布G418抗性培養(yǎng)基,篩選轉(zhuǎn)化子進行菌落PCR及基因組驗證。

表3 構(gòu)建Ts-xtpfscs及Ts gal80-xtpfscs表達質(zhì)粒所用引物Table 3 Primers for the construction of plasmids Ts-xtpfscs and Ts gal80-xtpfscs

1.2.3 重組pET28a-Fscs的誘導(dǎo)表達及蛋白純化

以0.5 mmol/L IPTG為誘導(dǎo)劑,18 ℃、200 r/min發(fā)酵22 h使蛋白表達。收集發(fā)酵液于4 ℃、8 000 r/min離心10 min,收集菌體,用20 mmol/L磷酸鈉緩沖液(pH 7.4)振蕩重懸洗滌細(xì)胞2次,超聲破碎菌體8~10 min,于4 ℃、12 000 r/min離心10 min,上清液即為粗酶液。用鎳柱對FSCS粗酶液進行純化,并將純酶液進行超濾濃縮,4 ℃、12 000 r/min離心20 min,重復(fù)3次。

1.2.4 酶學(xué)性質(zhì)研究方法

用純酶液進行酶學(xué)性質(zhì)檢測,以FPP為底物,20 mmol/L,pH 7.4的磷酸鈉溶液作為緩沖液,加入終濃度為5 mmol/L DTT,體積分?jǐn)?shù)10%甘油。反應(yīng)體系上方覆蓋十二烷萃取產(chǎn)物,反應(yīng)結(jié)束后取上層有機相,10 000 r/min離心10~15 min, 進行產(chǎn)物檢測。

FSCS產(chǎn)物特異性:向500 μL反應(yīng)體系中加入15 mmol/L MgCl2,100 μg純酶,30 μmol/L FPP, 覆蓋300 μL十二烷,密封,于30 ℃、150 r/min反應(yīng)1 h,相同反應(yīng)條件下以空載為對照,進行產(chǎn)物檢測。

FSCS最適金屬離子條件:分別向反應(yīng)體系中添加終濃度為10.0~80.0 mmol/L Mg2+,10.0~50.0 mmol/L K+,2.0~10.0 mmol/L Mn2+,并以添加50 mmol/L EDTA作為對照組,其余反應(yīng)條件同F(xiàn)SCS產(chǎn)物特異性。

FSCS最適溫度條件:500 μL反應(yīng)體系中加入100 μg純酶,30 μmol/L FPP,覆蓋300 μL十二烷,密封,分別在15~45 ℃條件下反應(yīng)1 h,進行產(chǎn)物檢測。

1.2.5 產(chǎn)物檢測方法

以GC-MS及HPLC對產(chǎn)物進行檢測。

GC-MS條件:色譜柱SH-Rtx-5MS(30 m×0.32 mm,0.25 μm),流速1 mL/min, 電離方式EI。進樣口溫度260 ℃,起始溫度80 ℃,以5 ℃/min升至180 ℃,再以25 ℃/min升至280 ℃。掃描質(zhì)量范圍35~800 amu。配制不同濃度法尼烯標(biāo)準(zhǔn)品,確定出峰時間并制作豐度-濃度標(biāo)準(zhǔn)曲線。y=894 139x+436 156,R2=0.999。其中y:豐度,x:質(zhì)量濃度,mg/L。

HPLC條件:色譜柱(Diamonsil Plus C18,250 mm×4.6 mm, 5 μm),體積分?jǐn)?shù)70%的甲醇,體積分?jǐn)?shù)30%的乙腈為流動相,流速1 mL/min,檢測波長210 nm,柱溫40 ℃。配制不同濃度法尼烯標(biāo)準(zhǔn)品,確定出峰時間并制作峰面積-濃度標(biāo)準(zhǔn)曲線。y=1.801 2x+1.553 1,R2=0.999。其中y:峰面積,mAU·min;x:質(zhì)量濃度,mg/L。

2 結(jié)果與討論

2.1 FSCS氨基酸序列分析

將大豆來源法尼烯合成酶基因Fsso的氨基酸序列在BLAST進行同源性比對。序列相似度80%以上的多為豆科來源植物,F(xiàn)scs序列相似度53%,編碼區(qū)全長1 831 bp,編碼573個氨基酸。NCBI參考序列號為:LOC102618658。倍半萜合成酶一般編碼550~580個氨基酸,分子質(zhì)量在50 k~100 kDa[13]。通過DNAMAN對FSCS進行氨基酸序列分析發(fā)現(xiàn),其含有萜類合成酶家族特有的保守結(jié)構(gòu)域DDxxD及NSE/DTE,其中DDxxD為富含天冬氨酸的保守結(jié)構(gòu)域,是底物的結(jié)合位點,對酶的活性有重要作用[14]。序列比對結(jié)果如圖1所示。

“★”、“▲”分別表示DDxxD及NSE/DTE結(jié)構(gòu)域圖1 FSSO及FSCS氨基酸序列比對Fig.1 Comparison of the amino acid sequences of FSSO and FSCS

2.2 pET28a-Fscs表達菌株的構(gòu)建及蛋白純化

按照1.2.2.1的方法構(gòu)建質(zhì)粒pET28a-Fscs,質(zhì)粒片段大小為7 078 bp,將質(zhì)粒用BamH Ⅰ、SalⅠ雙酶切驗證,理論條帶大小為1 722和5 356 bp,結(jié)果如圖2所示。電泳條帶大小與理論值一致,重組質(zhì)粒pET28a-Fscs構(gòu)建成功。

M-DNA marker;1-重組質(zhì)粒雙酶切圖2 重組質(zhì)粒pET28a-Fscs雙酶切驗證Fig.2 Verification of recombinant plasmid pET28a-Fscs through enzyme digestion reactions

將菌株pET28a-Fscs于18 ℃條件下發(fā)酵22 h,加入0.5 mmol/L IPTG誘導(dǎo)目的蛋白表達,以空載為對照,將粗酶及純酶液進行SDS-PAGE檢測,結(jié)果如圖3所示。在70 kDa位置有目的蛋白條帶,與pET28a-Fscs預(yù)測分子質(zhì)量69.5 kDa相符,獲得了純度較高的目的蛋白,用于后續(xù)酶學(xué)性質(zhì)研究。

a-FSCS粗霉SDS-PAGE;b-FSCS粗霉SDS-PAGE M-蛋白質(zhì)marker;a1-FSCS粗酶;a2-pET28a空載;b1-FSCS純酶圖3 重組蛋白FSCS SDS-PAGE檢測結(jié)果Fig.3 SDS-PAGE results of recombinant protein FSCS

2.3 FSCS酶學(xué)性質(zhì)研究

2.3.1 產(chǎn)物特異性探究

按1.2.4配制酶反應(yīng)體系,以FPP為底物與純酶進行反應(yīng),以空載作為對照,探究產(chǎn)物特異性。反應(yīng)后檢測到α-法尼烯生成,GC-MS檢測結(jié)果如圖4所示。FPP與空載反應(yīng)未檢測到產(chǎn)物生成,證明FSCS具有法尼烯合成酶功能。

圖4 α-法尼烯GC-MS檢測結(jié)果Fig.4 GC-MS detection results of α-farnesene

2.3.2 金屬離子對產(chǎn)物的影響

多數(shù)萜類合成酶需要在Mg2+或Mn2+的參與下發(fā)揮作用[15]。為探究FSCS所需的金屬離子及最適離子條件,按1.2.4方法檢測產(chǎn)物生成情況。單獨添加Mg2+時,檢測到法尼烯生成,在30 mmol/L Mg2+條件下產(chǎn)物濃度最高。以50 mmol/L EDTA為對照,未檢測到產(chǎn)物生成,如圖5-a所示。部分萜類合成酶存在H-α1結(jié)構(gòu)域,K+的存在能夠增強底物與酶的結(jié)合,從而增強酶的活性[16]。因此在30 mmol/L Mg2+濃度的基礎(chǔ)上,添加不同濃度K+檢測產(chǎn)物生成情況。如圖5-b所示,K+對產(chǎn)物生成有顯著促進作用,40 mmol/L K+條件下產(chǎn)物質(zhì)量濃度達到最高為3.86 mg/L,相較于單獨添加Mg2+提升近6.3倍。隨后在30 mmol/L Mg2+、40 mmol/L K+基礎(chǔ)上加入不同濃度Mn2+,對產(chǎn)物生成無顯著促進作用,且較高濃度的Mn2+對產(chǎn)物生成有輕微抑制作用,如圖5-c所示。單獨添加Mn2+基本未檢測到產(chǎn)物生成,說明FSCS對Mg2+親和度高于Mn2+。上述實驗結(jié)果表明,Mg2+為酶必需的輔因子,且K+對產(chǎn)物生成有顯著促進作用。大豆、梨等來源的法尼烯合成酶需要Mg2+與K+共同作為輔因子參與反應(yīng),而多數(shù)萜類合成酶僅需要Mg2+作為輔因子[17],萜類合成酶對金屬離子的親和性應(yīng)與蛋白特定結(jié)構(gòu)有關(guān)。

圖5 不同金屬離子對法尼烯生成的影響Fig.5 Effects of different metal ions on the formation of farnesene

2.3.3 最適反應(yīng)溫度探究

如圖6所示,在20 ℃條件下,法尼烯濃度最高,45 ℃以上基本檢測不到產(chǎn)物生成。說明FSCS對高溫耐受性差,在較低溫度下能保持一定活力。研究表明,多數(shù)萜類合成酶對高溫耐受性較差,蘋果來源的一種FS最適反應(yīng)溫度為10~20 ℃,且在0 ℃仍保持一半活性[18]。

2.4 釀酒酵母重組表達菌株WH4-Fscs的構(gòu)建及產(chǎn)物檢測

按照1.2.2.2的方法構(gòu)建Ts gal80-xtpfscs表達盒,以GAL80為位點進行釀酒酵母染色體整合。分別以BamH Ⅰ、SalⅠ、XbaⅠ及NcoⅠ進行酶切驗證。BamH Ⅰ、SalⅠ酶切理論條帶大小分別為1 722和6 570 bp;XbaⅠ酶切理論條帶大小分別為4 692和2 700 bp;NcoⅠ酶切理論條帶大小分別為2 692和5 600 bp,均與圖中條帶位置相符。提基因組進行PCR驗證,理論片段大小為2 500 bp,與條帶位置相符,重組表達菌株構(gòu)建成功,結(jié)果如圖7所示。

a-單雙酶切驗證;b-基因組PCR驗證 M-DNA marker;a1-Sal Ⅰ、BamH Ⅰ酶切;a2-Xba Ⅰ酶切; a3-Nco Ⅰ酶切圖7 Ts gal80-xtpfscs單雙酶切及基因組PCR驗證Fig.7 Verification of recombinant plasmid Ts gal80-xtpfscs through enzyme digestion reactions and genome PCR

以WH4原始菌株為對照,HPLC檢測法尼烯生成,結(jié)果如圖8所示。標(biāo)準(zhǔn)品出峰時間約在4.418 min,WH4-Fscsα-法尼烯出峰時間在4.382 min,WH4原始菌株未檢測到法尼烯生成,釀酒酵母重組菌株WH4-Fscs構(gòu)建成功。

a- WH4-Fscs;b-法尼烯標(biāo)準(zhǔn)品;c-WH4原始菌株圖8 法尼烯標(biāo)準(zhǔn)品、WH4-Fscs及WH4原始菌株HPLC檢測結(jié)果Fig.8 HPLC results of farnesene reference standard, recombinant strain WH4-Fscs and original strain WH4

2.5 FSCS酶學(xué)性質(zhì)在釀酒酵母表達菌株WH4-Fscs中的應(yīng)用

2.5.1 最適金屬離子條件在釀酒酵母WH4-Fscs產(chǎn)法尼烯中的應(yīng)用

通過酶學(xué)性質(zhì)實驗,F(xiàn)SCS最適金屬離子條件為30 mmol/L Mg2+, 40 mmol/L K+。將此條件應(yīng)用于釀酒酵母重組菌株中,以不添加外源金屬離子作為對照,在30 ℃條件下發(fā)酵72 h,檢測法尼烯生成情況。如圖9所示,與不添加金屬離子相比,最適離子條件下法尼烯產(chǎn)量有30%的提升,達到43.76 mg/L。相關(guān)研究表明,Mg2+能夠緩解葡萄糖分解代謝物的抑制作用,在培養(yǎng)基中添加Mg2+能夠增強釀酒酵母發(fā)酵過程中對乙酸的耐受性,增加乙醇產(chǎn)量,提高細(xì)胞活力[19-20]。

圖9 金屬離子對WH4-Fscs發(fā)酵產(chǎn)法尼烯的影響Fig.9 Effects of metal ions on production of farnesene by WH4-Fscs fermentation

2.5.2 溫度在釀酒酵母WH4-Fscs產(chǎn)法尼烯中的應(yīng)用

FSCS最適溫度條件為20 ℃,以30 ℃為對照組,實驗組和對照組均在30 ℃發(fā)酵24 h,待葡萄糖基本消耗完畢后調(diào)整溫度。后續(xù)發(fā)酵72 h,發(fā)酵過程中分別于24、48、60、72、96 h取樣,檢測產(chǎn)物生成以及菌體生長情況。由圖10可知,30 ℃條件下,發(fā)酵前60 h 的OD600高于20 ℃條件,最高為7.153。發(fā)酵60 h后,20 ℃條件下菌體OD600更高,最高為7.084。

圖10 不同溫度對WH4-Fscs菌體生長及 法尼烯合成的影響Fig.10 Effects of different temperatures on bacteria growth and farnesene synthesis of WH4-Fscs

從法尼烯產(chǎn)量上看,發(fā)酵前期30 ℃條件下法尼烯產(chǎn)量維持更高水平,發(fā)酵后期20 ℃條件下法尼烯產(chǎn)量更穩(wěn)定。低溫發(fā)酵可促進釀酒酵母中酯類、萜烯類等物質(zhì)的形成并延長保留時間[21-22]。法尼烯揮發(fā)性較強,在發(fā)酵后期可通過降低溫度來維持法尼烯產(chǎn)量。

3 結(jié)論

本研究對一種甜橙來源的FS進行了功能表征,并將其酶學(xué)性質(zhì)應(yīng)用于釀酒酵母表達系統(tǒng)中。以FPP為底物時,F(xiàn)SCS能催化生成法尼烯,而部分萜類合成酶不存在明確的產(chǎn)物或底物特異性,可與不同底物反應(yīng)生成多種萜類化合物。FSCS的催化功能依賴于Mg2+的參與,在K+存在的條件下,對產(chǎn)物生成有顯著促進作用,該特性與蘋果、大豆等來源的FS相似。FSCS對高溫耐受性差,較低溫度下能夠保持活性。將酶學(xué)性質(zhì)應(yīng)用于釀酒酵母表達菌株,最適金屬離子條件下法尼烯產(chǎn)量有30%提升,且最適溫度條件對發(fā)酵后期產(chǎn)物積累及菌體生長有一定促進作用。上述研究結(jié)果有助于進一步了解FS的酶學(xué)性質(zhì),也為FS在釀酒酵母中的高效表達提供了理論指導(dǎo)。在現(xiàn)有研究基礎(chǔ)上,未來對FS的催化機理仍有待進一步解析,其在細(xì)胞內(nèi)與代謝途徑中其他關(guān)鍵酶的調(diào)控關(guān)系也有待探究。

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