Sporosarcina pasteurii誘導(dǎo)碳酸鹽-鈾共沉淀修復(fù)低濃度鈾廢水的試驗(yàn)研究

胡南，陳雪，張輝，李艾書(shū)，李廣悅，王永東，丁德馨

（南華大學(xué)鈾礦冶生物技術(shù)國(guó)防重點(diǎn)學(xué)科實(shí)驗(yàn)室，湖南衡陽(yáng) 421001）

引 言

鈾礦采冶會(huì)產(chǎn)生大量的低濃度鈾廢水[1]。廢水中的鈾可在動(dòng)植物體內(nèi)積累，進(jìn)而通過(guò)食物鏈進(jìn)入人體，對(duì)人類(lèi)健康造成極大危害[2-3]。因此，修復(fù)低濃度鈾廢水對(duì)于環(huán)境安全和人體健康都至關(guān)重要。

低濃度鈾廢水的修復(fù)技術(shù)主要包括物理修復(fù)、化學(xué)修復(fù)和生物修復(fù)。微生物修復(fù)具有成本低、操作簡(jiǎn)單、對(duì)環(huán)境干擾性小等優(yōu)點(diǎn)，為低濃度鈾廢水修復(fù)提供了更綠色、經(jīng)濟(jì)和穩(wěn)定的手段[4]。微生物固定金屬是通過(guò)氧化還原反應(yīng)、形成難溶復(fù)合物或沉淀等方式改變金屬的化學(xué)狀態(tài)以減少它們的流動(dòng)性和環(huán)境毒性[5-6]。研究表明，微生物能夠與重金屬以生物吸附、生物礦化、生物還原和生物積累的方式相互作用，從而達(dá)到修復(fù)重金屬污染的目的[7]。微生物誘導(dǎo)碳酸鹽沉淀(MICP)是一種高效、經(jīng)濟(jì)的生物地球化學(xué)方法，近些年廣泛應(yīng)用于修復(fù)環(huán)境中的重金屬污染。一類(lèi)具有產(chǎn)脲酶特性的碳酸鹽礦化菌引起了科研人員的關(guān)注，其主要作用是提供脲酶和晶核[8]。碳酸鹽礦化菌分泌的脲酶能夠分解尿素，產(chǎn)生CO2-3和NH+4；利用其生長(zhǎng)過(guò)程中產(chǎn)生的大量胞外聚合物(EPS)作為某些礦化產(chǎn)物成核的附著面[8]。在有足夠Ca2+存在的條件下，發(fā)生碳酸鹽沉淀[9-12]。碳酸鹽在沉淀過(guò)程中，可以捕獲部分重金屬或放射性元素，這些元素一般以類(lèi)質(zhì)同象置換的方式占據(jù)碳酸鈣中的Ca2+或CO2-3位置[8]。已有研究表明，產(chǎn)脲酶菌可誘導(dǎo)碳酸鹽沉淀對(duì)鉻、鎘、銅、鎳和鍶等重金屬進(jìn)行固定[13-17]。但目前為止還沒(méi)有利用微生物誘導(dǎo)碳酸鹽-鈾共沉淀修復(fù)低濃度鈾廢水方面的研究。

本文通過(guò)向低濃度鈾廢水中添加碳酸鹽礦化菌Sporosarcina pasteurii(ATCC 11859)、氯化鈣和尿素，研究S.pasteurii誘導(dǎo)碳酸鈣-鈾共沉淀對(duì)低濃度鈾廢水中鈾的去除效果及其影響因素。本研究的目的是提出一種采用S.pasteurii誘導(dǎo)碳酸鹽-鈾共沉淀修復(fù)低濃度鈾廢水的方法。

1 試驗(yàn)材料和方法

1.1 材料

1.1.1 試驗(yàn)試劑 產(chǎn)脲酶的陽(yáng)性巴氏芽孢桿菌S.pasteurii（BNCC 337394，是ATCC 11859的傳代菌），乙酸雙氧鈾，無(wú)水氯化鈣，硝酸，鹽酸，氫氧化鈉等。

試驗(yàn)用培養(yǎng)基：牛肉膏0.3%，蛋白胨0.5%，用NaOH和HCl調(diào)節(jié)pH至7.0，隨后放入高壓滅菌鍋121℃滅菌30 min。滅菌完畢冷卻后，在超凈工作臺(tái)內(nèi)向其中加入2%經(jīng)無(wú)菌濾頭過(guò)濾除菌后的尿素。

改良培養(yǎng)液：牛肉膏0.06%，蛋白胨0.1%，用NaOH和HCl調(diào)節(jié)pH至4.5，滅菌完畢冷卻后加入2%經(jīng)無(wú)菌濾頭過(guò)濾除菌后的尿素。

1.1.2 分析測(cè)試儀器PHSJ-3G型pH計(jì)，博訊SW-CJ-1FD型單人單面潔凈工作臺(tái)，GI-54DWS型高壓滅菌鍋，ZQZY-78AV全溫振蕩培養(yǎng)箱，D-7型紫外可見(jiàn)分光光度計(jì)，Eppendrof AG 22331 Hamburg生物分光光度計(jì)，AL104型電子天平，PinAAcle 900E火焰原子吸收分光光度計(jì)，TGL18M高速冷凍離心機(jī)。沉淀的元素組成用掃描電鏡-能譜儀分析(Zeiss,蔡司Sigma300,GER)；沉淀的礦物類(lèi)型用X射線全自動(dòng)衍射儀分析(Rigaku,UltimaⅣ,JPN)。鈾濃度采用5-Br-PADAP分光光度法測(cè)量[18]。

1.2 方法

1.2.1 微生物的生長(zhǎng)過(guò)程監(jiān)測(cè) 取新鮮活化的OD600值為1.0的菌液接種到初始pH為4.5的液體培養(yǎng)基中，接種量為1%（體積分?jǐn)?shù)），置于180 r/min搖床中恒溫30℃培養(yǎng)。利用生物分光光度計(jì)、pH酸度計(jì)監(jiān)測(cè)細(xì)菌的生物量和溶液的pH，以反映細(xì)菌的生長(zhǎng)過(guò)程。利用顯色劑（對(duì)二甲氨基苯甲醛）與尿素反應(yīng)，在紫外可見(jiàn)分光光度計(jì)430 nm處進(jìn)行比色測(cè)定尿素的殘留量[19]，間接反映細(xì)菌產(chǎn)脲酶的能力。

1.2.2S.pasteurii對(duì)鈾的耐受性 配制pH為4.5的液體培養(yǎng)基，滅菌后向錐形瓶中加入一定體積的5 g/L過(guò)濾滅菌的乙酸雙氧鈾母液使鈾濃度分別為10、50、100、300和500 mg/L，以不添加鈾的處理為對(duì)照組，向每個(gè)錐形瓶中接種1%OD600值為1.0的菌液，置于恒溫30℃、180 r/min的搖床中培養(yǎng)。每組試驗(yàn)設(shè)3個(gè)平行樣，分別在培養(yǎng)24 h和72 h后取樣測(cè)OD600值。

1.2.3 鈾的非生物沉淀 為了避免在試驗(yàn)過(guò)程中鈾與微生物以外的因素發(fā)生化學(xué)相互作用而影響微生物修復(fù)低濃度鈾廢水的效果。將改良培養(yǎng)液的pH調(diào)到4.5，設(shè)置鈾濃度為60 mg/L。試驗(yàn)處理分為4組，試驗(yàn)條件分別為：A組只在培養(yǎng)液中添加鈾；B組在培養(yǎng)液中添加鈾和1%OD600值為1.0的菌液；C組在培養(yǎng)液中添加鈾和1 g/L的Ca2+；D組在培養(yǎng)液中添加鈾、1 g/L的Ca2+和1%OD600值為1.0的菌液。置于180 r/min搖床中恒溫30℃培養(yǎng)，每組試驗(yàn)設(shè)3個(gè)平行樣。

1.2.4 Ca2+濃度對(duì)固定鈾的影響 為了探究Ca2+濃度對(duì)微生物誘導(dǎo)碳酸鹽-鈾共沉淀固定鈾效果的影響，配制改良培養(yǎng)液并調(diào)節(jié)pH為4.5、鈾濃度為60 mg/L。設(shè)置不添加Ca2+的對(duì)照組，Ca2+濃度分別為1、2、3、5和10 g/L的試驗(yàn)組，并向每個(gè)錐形瓶中接種1%OD600值為1.0的菌液。置于恒溫30℃、180 r/min的搖床中培養(yǎng)，3 d后取樣測(cè)鈾濃度。同時(shí)考察不同Ca2+濃度條件下，鈾和Ca2+濃度隨時(shí)間的變化，并監(jiān)測(cè)反應(yīng)過(guò)程中pH的變化。

1.2.5 初始pH及溫度對(duì)固定鈾的影響 向250 ml錐形瓶中加入100 ml培養(yǎng)液，設(shè)置鈾濃度為50 mg/L、Ca2+濃度為10 g/L，使初始pH分別為3.5、4.5、5.5、6.5、7.5和8.5，培養(yǎng)溫度分別為10、20、30和40℃，向錐形瓶中接種1% OD600值為1.0的菌液，置于180 r/min搖床中培養(yǎng)。間隔一定時(shí)間取樣測(cè)鈾濃度，考察不同初始pH和培養(yǎng)溫度對(duì)鈾的固定的影響。

1.2.6S.pasteurii誘導(dǎo)碳酸鹽沉淀對(duì)鈾的固定機(jī)理對(duì)Ca2+濃度為1 g/L的試驗(yàn)組產(chǎn)生的沉淀用超純水洗滌2次，在高速離心機(jī)中以6000 r/min的轉(zhuǎn)速離心10 min后回收，在60℃的干燥箱中干燥48 h，然后充分研磨，再用掃描電鏡-能譜儀(SEM-EDS)和X射線衍射儀(XRD)進(jìn)行分析。

1.3 數(shù)據(jù)處理與分析

用WPS軟件整理試驗(yàn)數(shù)據(jù)，計(jì)算平均值及標(biāo)準(zhǔn)差；用Origin 2019繪圖；用Jade 6.0匹配XRD譜圖；用SPSS 26.0進(jìn)行方差分析，通過(guò)LSD多重比較法檢驗(yàn)處理間的差異顯著性(P<0.05)，用不同英文字母表示差異顯著性（同時(shí)結(jié)合顯著性水平以及均值，用a~d和A~D表示）。

2 結(jié)果與討論

2.1 S.pasteurii生長(zhǎng)過(guò)程

圖1所示為S.pasteurii生長(zhǎng)過(guò)程中培養(yǎng)基內(nèi)的細(xì)菌數(shù)量、尿素含量和pH隨時(shí)間的變化。從圖1(a)可看出，開(kāi)始3 h細(xì)菌的數(shù)量較低，隨著細(xì)菌的大量繁殖，菌液變渾濁，9 h后細(xì)菌數(shù)量趨于穩(wěn)定。S.pasteurii生長(zhǎng)前期培養(yǎng)基中尿素的含量急劇下降，說(shuō)明該菌具有高產(chǎn)脲酶的特性，能在短時(shí)間產(chǎn)生大量脲酶分解尿素。圖1(b)為菌株生長(zhǎng)過(guò)程中菌液的pH變化，pH短期內(nèi)從初始的4.5升至9.5并趨于穩(wěn)定。試驗(yàn)過(guò)程中，菌株在培養(yǎng)基中生長(zhǎng)代謝分泌脲酶，從而分解尿素并產(chǎn)生CO2-3與NH+4，導(dǎo)致溶液的pH升高[20]，更利于菌體的生長(zhǎng)繁殖。此外，pH上升有利于碳酸鹽礦化產(chǎn)物的穩(wěn)定[21]，在修復(fù)低濃度鈾廢水的實(shí)際應(yīng)用方面，避免了低pH條件下鈾的再釋放。

圖1 S.pasteurii生長(zhǎng)過(guò)程監(jiān)測(cè)Fig.1 Monitoring the growth process of S.pasteurii

2.2 S.pasteurii對(duì)鈾的耐受性

細(xì)菌對(duì)高鹽度、高溫和強(qiáng)輻射的惡劣環(huán)境，如放射性廢物處理場(chǎng)等具有很強(qiáng)的適應(yīng)性[22-24]。但是生物體對(duì)重金屬濃度具有一定的耐受范圍，鈾作為一種放射性重金屬元素且具有生物毒性，可能會(huì)對(duì)微生物的生長(zhǎng)產(chǎn)生影響。如圖2所示，24 h內(nèi)低于50 mg/L的鈾濃度對(duì)細(xì)菌生長(zhǎng)產(chǎn)生一定程度的促進(jìn)作用，但隨著濃度升高這種作用逐漸減弱，高濃度的鈾開(kāi)始抑制細(xì)菌生長(zhǎng)。第72 h，細(xì)菌在300和500 mg/L鈾濃度條件下快速生長(zhǎng)，推測(cè)原因是微生物適應(yīng)了高濃度鈾的生物毒性作用并產(chǎn)生抗性，在其脅迫下自身新陳代謝活動(dòng)產(chǎn)生了相應(yīng)的變化，從而適應(yīng)了受鈾污染的環(huán)境[25]。Mugwar等[26]的研究表明，當(dāng)微生物所處環(huán)境的金屬離子濃度高過(guò)其生長(zhǎng)的最低抑制濃度時(shí)，細(xì)菌的活性較低，同時(shí)也會(huì)導(dǎo)致尿素水解速率降低，也有研究證明一定濃度的金屬離子會(huì)刺激細(xì)菌的生長(zhǎng)[27]。

圖2 S.pasteurii對(duì)鈾的耐受性Fig.2 Tolerance of S.pasteurii to uranium

2.3 鈾的非生物沉淀

分析圖3(a)可知，試驗(yàn)組A和C在不添加S.pasteurii的條件下，培養(yǎng)液與鈾在較短時(shí)間內(nèi)發(fā)生非生物沉降，隨后鈾濃度逐漸上升，過(guò)程中無(wú)明顯沉淀產(chǎn)生，說(shuō)明鈾濃度下降與Ca2+的存在無(wú)顯著相關(guān)性；試驗(yàn)組B中的鈾保持在較為穩(wěn)定的水平，表明S.pasteurii對(duì)鈾無(wú)顯著吸附作用，且微生物的存在很大程度抑制了鈾的非生物沉降;試驗(yàn)組D的鈾濃度在短期內(nèi)迅速下降然后輕微上升并保持穩(wěn)定，過(guò)程伴隨有大量白色沉淀產(chǎn)生，說(shuō)明微生物誘導(dǎo)的碳酸鹽沉淀對(duì)鈾產(chǎn)生了固定作用。

根據(jù)圖3(b)，添加S.pasteurii的兩個(gè)試驗(yàn)組B和D短期內(nèi)pH迅速上升，原因是微生物分解尿素產(chǎn)生大量的NH+4；初期D組pH略低于B組，可能是Ca2+的存在消耗了環(huán)境中的CO23-，促進(jìn)HCO-3+H++2NH+4+2OH-CO23-+2NH+4+2H2O的反應(yīng)，降低了溶液中的OH-濃度，從而導(dǎo)致了低pH。而A和C組pH緩慢上升是由于尿素在溶液中的自然水解。

圖3 鈾的非/生物沉淀過(guò)程中鈾濃度和pH的變化Fig.3 Changes in uranium concentration and pH during abiotic/biological precipitation processes

這些結(jié)果表明，在不存在微生物的條件下，鈾在培養(yǎng)液中會(huì)發(fā)生不穩(wěn)定的非生物沉降，但后期會(huì)逐漸釋放；而在微生物和Ca2+的共同作用下，會(huì)產(chǎn)生較穩(wěn)定的含鈾沉淀。

2.4 Ca2+濃度對(duì)固定鈾的影響

由圖4(a)可知，添加Ca2+能夠顯著降低鈾濃度，且Ca2+濃度越高，鈾濃度下降的程度越大，去除率高達(dá)95.38%。圖4(b)表明當(dāng)初始Ca2+濃度為10 g/L時(shí)，Ca2+和鈾濃度先保持同步下降。隨著反應(yīng)進(jìn)行到第9天，Ca2+完全沉淀，鈾濃度不再繼續(xù)下降并出現(xiàn)輕微上升，說(shuō)明溶液中鈾濃度的下降與Ca2+的存在有直接關(guān)系。

圖4 Ca2+濃度對(duì)固定鈾的影響Fig.4 Effect of calcium concentration on uranium fixation

圖5(a)的結(jié)果與圖4(a)一致，高濃度Ca2+對(duì)鈾的去除率較高，前期鈾濃度下降的速度較快，后期逐漸穩(wěn)定。圖5(b)中高濃度Ca2+的試驗(yàn)組大體上表現(xiàn)出較低的pH，且Ca2+濃度越高pH越低，該現(xiàn)象符合圖3(b)的推測(cè)結(jié)果，同樣的現(xiàn)象也出現(xiàn)在Achal等[28]的研究成果中。對(duì)Ca2+添加量為1、5和10 g/L的試驗(yàn)組產(chǎn)生的生物沉淀用王水消解并檢測(cè)其中的鈾含量，結(jié)果顯示鈾的含量分別為4.50、3.53和2.48 mg/g，說(shuō)明初始Ca2+濃度較低的沉淀中鈾含量較高，推測(cè)原因是S.pasteurii誘導(dǎo)碳酸鹽沉淀過(guò)程中，后期在Ca2+充足的條件下對(duì)鈾的固定效率降低。

圖5 鈾濃度(a)和pH(b)隨時(shí)間的變化Fig.5 Changes in uranium concentration(a)and pH(b)with time

2.5 初始pH及溫度對(duì)固定鈾的影響

微生物的生長(zhǎng)代謝以及繁殖受周?chē)h(huán)境pH的影響，且高pH能夠加快脲酶誘導(dǎo)方解石沉淀的速度[29]，因此S.pasteurii在不同初始pH條件下誘導(dǎo)碳酸鹽沉淀固定鈾的能力會(huì)有所差異。如圖6所示，初始pH越高，微生物誘導(dǎo)碳酸鹽沉淀固定鈾的速度越快，高pH有利于S.pasteurii固定水體中的鈾，但是pH為5.5~8.5的試驗(yàn)組對(duì)鈾污染的修復(fù)效果沒(méi)有顯著差異。即使在初始pH為4.5的酸性條件下，微生物誘導(dǎo)碳酸鹽-鈾共沉淀去除鈾的效果仍然保持在較高水平，鈾的最終去除率可達(dá)95%左右，這對(duì)采用該方法修復(fù)酸性含鈾廢水提供了試驗(yàn)依據(jù)。

圖6 初始pH對(duì)固定鈾的影響Fig.6 Effect of initial pH on uranium fixation

溫度也是影響微生物生長(zhǎng)的重要因素，不同微生物具有其最適生長(zhǎng)溫度，因此在不同溫度條件下，微生物誘導(dǎo)碳酸鹽沉淀修復(fù)鈾污染的能力也可能存在差異。由圖7可知，溫度對(duì)固定鈾的影響較為明顯，溫度越高，微生物誘導(dǎo)碳酸鹽沉淀固定鈾的速度越快，在20~40℃的溫度條件下，對(duì)修復(fù)含鈾廢水都具有較好的效果。推測(cè)是由于本文采用的微生物最適生長(zhǎng)溫度在30℃左右，在該溫度條件下，細(xì)菌的生物量大，固定鈾的效果更好。

圖7 溫度對(duì)固定鈾的影響Fig.7 Effect of temperature on uranium immobilization

2.6 S.pasteurii誘導(dǎo)碳酸鹽沉淀固定鈾的機(jī)理

2.6.1 掃描電鏡-能譜分析 低濃度Ca2+產(chǎn)生的沉淀中鈾的占比較高，因此對(duì)Ca2+濃度為1 g/L時(shí)產(chǎn)生的沉淀進(jìn)行掃描電鏡-能譜分析。SEM圖顯示出了清晰的晶面[圖8(a)]和類(lèi)似于方解石的四面體構(gòu)型[圖8(b)][30]，晶體表面存在的微孔結(jié)構(gòu)[圖8(c)]，可能是細(xì)菌被沖刷掉后殘留的孔隙。沉淀的EDS能譜圖中出現(xiàn)了較明顯的C、O、Ca、U元素信號(hào)峰，U的質(zhì)量分?jǐn)?shù)約為0.97%，說(shuō)明S.pasteurii誘導(dǎo)碳酸鹽沉淀過(guò)程中出現(xiàn)了含鈾的沉淀產(chǎn)物。此外，利用逐級(jí)提取法檢測(cè)沉淀中鈾的化學(xué)形態(tài)，結(jié)果表明只存在可交換態(tài)和碳酸鹽結(jié)合態(tài)兩種形態(tài)的鈾，其中可交換態(tài)鈾占比為4.94%，而碳酸鹽結(jié)合態(tài)占比高達(dá)95.06%。結(jié)合EDS結(jié)果分析，鈾很可能與碳酸鈣結(jié)合被固定在沉淀中。

圖8 S.pasteurii誘導(dǎo)碳酸鹽沉淀的SEM-EDS圖Fig.8 SEM-EDS images of carbonate precipitation induced by S.pasteurii

2.6.2 X射線衍射分析XRD分析結(jié)果（圖9）表明，S.pasteurii誘導(dǎo)形成的產(chǎn)物A主要以方解石晶體的形式存在。結(jié)合前文的分析結(jié)果推斷，在微生物誘導(dǎo)方解石形成的過(guò)程中，鈾與之共沉淀形成一種穩(wěn)定的U-方解石沉淀。同樣的研究結(jié)果也出現(xiàn)在砷(Ⅲ)污染的修復(fù)過(guò)程中[31]。

圖9 S.pasteurii誘導(dǎo)碳酸鹽沉淀的XRD譜圖Fig.9 XRD pattern of carbonate precipitation induced by S.pasteurii

Gabitov等[32]對(duì)氧化條件下收集到的含鈾方解石樣品進(jìn)行XANES表征，結(jié)果表明樣品中的鈾與UO3相似，說(shuō)明鈾處于正六價(jià)的氧化狀態(tài)。此外，X射線吸收光譜(XAS)研究發(fā)現(xiàn)，在方解石結(jié)構(gòu)中存在配合物U，U(Ⅵ)以鈾酰離子(UO2+2)并有可能以三碳酸鈾酰配合物[UO2(CO3)4-3]的形式與方解石結(jié)合，因此方解石中Ca2+和CO2-3都可能被取代[30,33]。在U(Ⅵ)摻入方解石的過(guò)程中發(fā)生了嚴(yán)重的晶格畸變，表明鈾酰離子在方解石中具有無(wú)序復(fù)雜的結(jié)構(gòu)環(huán)境[30,33]。Reeder等[30]用X射線吸收光譜和發(fā)光光譜對(duì)水溶液中鈾(Ⅵ)與方解石共沉淀物的局部結(jié)構(gòu)和配位進(jìn)行了表征，研究表明在鈾與方解石共沉淀過(guò)程中，方解石的表面結(jié)構(gòu)對(duì)吸收U(Ⅵ)的能力發(fā)揮著重要的控制作用，暴露在特定方解石表面的非等效位點(diǎn)的相對(duì)比例強(qiáng)烈地影響著對(duì)鈾的吸收效率。

2.7 低濃度鈾污染修復(fù)

S.pasteurii可以誘導(dǎo)碳酸鹽-鈾共沉淀將高濃度鈾廢水中的鈾固存到方解石中，但是考慮到實(shí)際鈾廢水中的鈾濃度較低，因此有必要探究微生物誘導(dǎo)的碳酸鹽-鈾共沉淀對(duì)低濃度鈾廢水的修復(fù)效果。以1 g/L Ca2+修復(fù)1 mg/L的低濃度鈾廢水為例，7 d后取樣分析，結(jié)果顯示廢水中的鈾濃度降至274.86μg/L，該濃度低于我國(guó)《鈾礦冶輻射防護(hù)和環(huán)境保護(hù)規(guī)定》中的鈾廢水排放口濃度限值0.3 mg/L[34]，并檢測(cè)到大量白色的碳酸鹽-鈾沉淀物。

3 結(jié) 論

S.pasteurii誘導(dǎo)碳酸鹽-鈾共沉淀對(duì)鈾廢水具有顯著的修復(fù)作用，影響這種修復(fù)作用的最重要的因素是Ca2+濃度，充足的鈣源才能保證碳酸鈣-鈾共沉淀所需要的Ca2+；其次是pH和溫度，適宜的pH和溫度有利于微生物的繁殖代謝和提高產(chǎn)酶效率，實(shí)現(xiàn)碳酸鈣-鈾高效共沉淀。S.pasteurii誘導(dǎo)碳酸鹽-鈾共沉淀是一種對(duì)修復(fù)低濃度鈾廢水有潛在應(yīng)用前景的方法。

S.pasteurii誘導(dǎo)的碳酸鈣-鈾共沉淀在短時(shí)間內(nèi)能起到顯著的固定鈾的效果，但是自然環(huán)境條件的變化可能會(huì)影響碳酸鹽結(jié)合態(tài)的鈾的長(zhǎng)期穩(wěn)定性，導(dǎo)致沉淀中鈾的再釋放。因此，為保證S.pasteurii誘導(dǎo)碳酸鈣-鈾共沉淀的方法修復(fù)含鈾廢水的效果，需要進(jìn)一步開(kāi)展構(gòu)建功能混合菌群或者采用化學(xué)穩(wěn)定劑以提高碳酸鹽-鈾共沉淀產(chǎn)物穩(wěn)定性的研究。