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天然酵素酵母菌分離及理化特性鑒定

2021-09-10 07:22:44彭禹銘劉巳齊李婧婧紀可欣李岑劉艷霞
吉林蔬菜 2021年1期

彭禹銘 劉巳齊 李婧婧 紀可欣 李岑 劉艷霞

摘 要:從復合水果酵素中分離酵母菌,通過形態學特征,生理生化指標進行鑒定,并對其生長特性進行研究,結果表明:分離出的A1、A2、A3為水果酵素中的優勢酵母,其具有耐高糖,耐低pH、耐高滲、耐一定酒精濃度特性,其可在初始糖量400g/L以下,pH為2以上,酒精濃度12%以下的環境中生長。

關鍵詞:酵素;酵母;分離;生理生化特性;

1 前言

酵素食品是指新鮮果蔬、谷物、菌菇或其它食用植物等為原料,經微生物發酵形成的,富含維生素、酶、多酚類化合物等多種生物活性物質的產品[1]。其在維持機體代謝,促消化、修復組織,抗氧化、減肥,凈化血等方面具有不可代替的功效[2-4]。

酵素生產主要是自然發酵過程,在其發酵過程中會產生多種酶類、短鏈脂肪酸、醇、酯等代謝產物。

自然發酵過程中微生物主要來源于原料本身和加工環境,其中部分微生物會快速生長并成為優勢菌,例如乳桿菌、等細菌和畢赤酵母、少見的伊薩酵母和釀酒酵母等。

2 試驗材料與方法

2.1 材料

復合水果酵素原液:發酵3個月,還原糖含量620g/L,pH3.25,硫酸銨、磷酸二氫鉀、七水硫酸鎂、二水氯化鈣、氯化鈉、酵母膏、酵母粉、蛋白胨、葡萄糖;PDA培養基、YEPD培養基、碳源基礎培養基、氮源基礎培養基、無維生素培養基。

2.2 實驗方法

2.2.1 工藝流程

果肉→破碎→調配混合→發酵→成品→酵母培養→酵母分離純化。

2.2.2 酵母菌的分離純化

用梯度稀釋法,將樣品涂布于PDA培養基上進行分離純化,純化后轉接于斜面保存待用。

2.2.3 形態特征鑒定

菌落形態觀察:將純化好的單菌落接種于PDA固體培養基和PDA液體培養基,于28℃恒溫培養72h,記錄菌落大小、形狀、顏色、質地是否有凹凸。

顯微觀察:挑取少許單菌落于載玻片上,用滅菌生理鹽水稀釋,加蓋玻片,于顯微鏡下觀察記錄細胞形態、菌體大小、形狀、 繁殖方式。

2.2.4 生理生化特征鑒定

依據《酵母菌的特征及鑒定手冊》和《微生物學實驗手冊》進行:糖發酵鑒定、碳源同化實驗、氮源同化實驗、無維生素培養基上生長實驗、耐高滲透壓的測試、產生類淀粉化合物測定等試驗。

2.2.5 耐受性實驗

2.2.5.1 生物量-吸光度標準曲線的繪制

將純化好的單菌落接種于YEPD液體培養基,于28℃恒溫培養1d,制成107CFU/mL的菌懸液。

取1mL活化好的菌液,接種于起始葡萄糖濃度為100g/L的YEPD液體培養基,于28℃下恒溫培養2d。

分別取5、10、15、20、25、30、35mL,于50mL的離心管中,5000r/min離心10min,傾去上清液,將得到的2組菌體沉淀中的一組烘干、稱重,另一組用去離子水定容到50mL容量瓶中,測定D600,繪制生物質干重-吸光度的標準曲線。

2.2.5.2 高糖耐受性實驗

按3%的接種量,分別接種于起始葡萄糖濃度為100、200、300、400、500g/L的YEPD液體培養基,pH5.0,于28℃下恒溫培養5d,OD600條件下每12h測定一次,重復3次。

2.2.5.3 低pH耐受性實驗

配置pH為1、2、3、4、5、6的YEPD液體培養基,按3%的接種量接種,于28℃下恒溫培養8d,每24h取一次樣,測定OD600。

2.2.5.4 酒精耐受性實驗

配置乙醇濃度為0、6%、9%、12%、15%、18%的YEPD液體培養基,按3%的接種量接種,于28℃下恒溫培養8d,每24h取一次樣,測定OD600。

3 結果與分析

3.1 分離純化、形態及培養特征觀察

篩選具有典型酵母菌落特征的菌落3株供試菌在固體、液體培養基上的菌落形態見表3-1。

3.2 菌株鑒定結果

菌株生理生化特征見表3-2,初步判斷三株菌株屬于接合酵母屬。

3.3 耐受性考察(選取A1菌株進行耐受性實驗)

3.3.1 生物量-吸光度標準曲線

菌懸液稀釋成0.1g/L,0.15g/L,0.2g/L,0.25g/L,0.3g/L,0.35g/L的濃度,在波長600nm處測吸光度,繪制出生物量—吸光度標準曲線如下:

3.3.2 高糖耐受性考察

每隔12h,吸取一次菌懸液,在600nm處測其吸光度,根據標準曲線得出其每個時間段菌懸液的濃度。實驗結果見圖3-2。

由圖3-2可知,在初始葡萄糖含量100~500g/L時,隨著初始葡萄糖含量的增加,菌株生長延緩期增長,當初始糖濃度為600g/L時,菌株延緩期84h,且生長極其緩慢。

3.3.3 低pH耐受性考察

每隔12h,吸一次菌懸液,600nm處測吸光度,結果見圖3-3。

由圖3-3可知,當初始pH為1和2時,菌株不生長,當初始pH為3-6時,菌株的延緩期逐漸縮短。

3.3.4 酒精耐受性考察

每隔12h取一次菌懸液,在600nm處測其吸光度,結果見圖3-4。

由圖3-4可知,初始乙醇濃度為15%和18%時,菌株不生長,而在0%~12%區間時,菌株的延緩期逐漸延長。

4 結論

從發酵3個月的復合水果酵素原液中分離出A1、A2、A3等三株菌株,均被鑒定為接合酵母,該菌種在初始葡萄糖含量100~400g/L時,均可生長,隨著初始葡萄糖含量增加,菌種的延緩期增長。在初始pH為3~6時,隨著初始pH的增加,菌株生長的延緩期變短。在初始乙醇濃度為0%~12%時,隨著初始乙醇濃度的增加,菌株生長的延緩期增長。

參考文獻

[1] 中國生物發酵產業協會.T/CBFIA 08001-2016,酵素產品分類導則[S].北京:中國標準出版社,2016.

[2] 毛建衛,吳元鋒,方晟.微生物酵素研究進展[J].發酵科技通訊,2010,39(3):42-44.

[3] 蔣增良.天然微生物酵素發酵機理、代謝過程及生物活性研究[D].寧波:浙江理工大學,2012:1-6.

[4] 蔣增良,毛建衛,黃俊,等.藍莓酵素在天然發酵過程中抗氧化性能的變化[J].食品工業科技,2013,34(2):194-197.

[5] [英]巴尼特(Barnett,J.A.)著,胡瑞卿 譯.《酵母菌的特征及鑒定手冊》[M].青島海洋大學出版社.2015.

[6] 劉雅婷,王建斌.《微生物學實驗手冊》[M].中國農業出版社,2013.

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