周雅雯, 白瑩瑩, 闞澤宇, 王 珍, 張 艷, 倪永清
(1.石河子大學生命科學學院,新疆 石河子 832000; 2.石河子大學食品學院,新疆 石河子 832000)
地球表面近80%的生境被永久或定期暴露于低于5 ℃的寒冷生境中[1],包括深海、極地、冰蓋、寒冷沙漠和高山冰川。其中冰川覆蓋了地球陸地表面約10%[2],分布極為廣泛,因其長期低溫、寡營養、凍融循環、強輻射、低水活度等環境特點形成了獨有的生境特征并成為制約其中微生物生存的重要限制因素[3]。全球范圍下包括極地和非極地的山岳冰川在內的寒冷生境是低溫微生物的重要來源,最適生長溫度小于等于15 ℃、最高生長溫度小于20 ℃,能夠在0 ℃甚至更低溫度生長的稱為嗜冷微生物(psychrophiles);能夠在0 ℃生長,但最適生長溫度在20~30 ℃左右,最高生長溫度在30~37 ℃的稱為耐冷微生物(psychrotolerants)[4]。嗜冷菌和耐冷菌以高山冰川作為定植的棲息地,成為該生境中生物多樣性重要組成部分,并在營養循環和有機物質礦化方面發揮著重要的作用[5]。然而,目前對于高山冰川的微生物研究主要在細菌多樣性及細菌群落組成影響因素等方面,而對于冰川生態系統中酵母菌的多樣性及分布格局報道較少[6]。
目前發現,冰川是以微生物為主導的低溫生態系統,棲息著豐富多樣的微生物類群,是低溫極端微生物的良好棲息地[7]。冰川生境也是陸地生態系統中對于溫度變化最為敏感的生態系統,常作為氣候變化的敏感晴雨表[8]。全球變暖加速了高海拔的冰川退縮[9],因此生存于其中的低溫微生物可被視為生物指示器來預測全球變暖趨勢及規律。酵母菌作為低溫真核生物的重要代表,發揮著極為重要的生態功能,尤其對寡營養生境冰川難降解有機物質的礦化作用和物質循環極為重要[10]。在積雪、冰芯、融水、冰塵、沉積物等不同生境中均有分布,是研究冰川生態系統微生物空間分布的良好對象。
研究表明,冰川表面的微生物主要來自于空氣氣溶膠,以及來自于陸地的塵埃,火山灰燼,以及粘附在雪粒、降雨、礦物質或有機物顆粒上的微生物,通過大氣輸送以及大氣生物學過程沉降在冰川表面,此后隨著冰川消融各種外源微生物進入冰川生態系統,發揮不同的生態功能[11]。因此,冰川表面空氣中的微生物,影響著冰川各生境微生物群落和特殊種群的空間分布格局,為了解冰川微生物生物地理學分布提供重要的信息。但研究也發現,冰川表面生境空間異質性明顯,包括積雪、融水、冰塵、冰層,對來自外源的微生物具有明顯的生態選擇作用[12]。
天山山脈橫亙于亞洲中部,作為中亞地區最大的山脈,是全球水熱循環的重要組成部分,深刻影響著亞洲以至全球的氣候變化[13]。前期我們對天山烏魯木齊河源1 號冰川(簡稱烏源1 號冰川)生境的真菌群落[14],冰川融水、積雪、冰心、沉積物的酵母菌的多樣性及分布特征已做了相關報道[15]。本研究旨在揭示冰川空氣源可培養酵母菌的多樣性,并比較了烏源1號冰川表面不同海拔的位點之間酵母菌類群的異同,以了解冰川空氣源酵母菌與其他生境之間的聯系,為闡明冰川表面、底部低溫酵母菌種群的原位棲息地及可能的生境擴散理論提供理論參考。同時揭示在冰川局域范圍內,小幅度海拔梯度變化對空氣酵母菌多樣性的影響很小。研究將為了解冰川微生物來源,促進天山冰川微生物資源的開發和利用奠定基礎提供數據支撐。
1.1.1 樣品采集
于2017年7月在烏源1號冰川西支尾部及表面分3個位點進行采樣:低海拔位點(LA,43°07′125″N、86°48′707″E,海拔3 750 m,氣溫7.23 ℃)、中海拔位點(MA,43°06′54.09″N、86°48′40.07″E,海拔3 857 m,氣 溫6.18 ℃)、高 海 拔 位 點(HA,43°06′26.63″N、86°48′22.99″E,海拔4 013 m,氣溫4.67 ℃)。使用JH-6120 型綜合大氣采樣器,TSP切割器標定流量:100 L·min-1,氣體入口流速:0.3 m·s-1。微孔濾膜采用玻璃纖維素濾膜,直徑90 mm,孔徑0.22 μm,每張濾膜都累計8 小時的采樣時間,空氣樣品采集完成后立即用酒精灼燒滅菌的鑷子將濾膜裝入已滅菌的無酶采樣管,置于-4 ℃的車載冰箱中于6 小時內運回實驗室,于24 小時內取樣處理分菌。
1.1.2 培養基
為盡可能全面揭示空氣中可培養酵母菌的多樣性,本實驗運用稀釋涂平板法來分離培養酵母菌。此外還使用了4 種培養基分離酵母菌,所有培養基成分均采用常規用量的1/5,以此來模擬冰川的寡營養狀態。所用抗生素為氯霉素(100 mg·mL-1)。
RDBC 培養基:Peptone 5 g·L-1,Glucose 10 g·L-1,KH2PO41 g·L-1,MgSO47H2O 0.5 g·L-1,Dichloran 0.002 g·L-1,Rose bengal 0.025 g·L-1,Agar15 g·L-1;DG18培養基:Glycerol 220 g·L-1,Peptone 5 g·L-1,Glucose 10 g·L-1,KH2PO41 g·L-1,Mg-SO4.7H2O 0.5 g·L-1,Dichloran 0.002 g·L-1,Agar 16 g·L-1;MYP 培養基:Malt extract 7 g·L-1,Glucose 1 g·L-1,Yeast extract 5 g·L-1,Soya peptone 2.5 g·L-1,Agar 15 g·L-1;MYP5 培養基:Malt extract 7 g·L-1,Glucose 1 g·L-1,Yeast extract 5 g·L-1,Soya peptone 2.5 g·L-1,Agar 15 g·L-1,Nacl 50 g·L-1。
將采樣空氣濾膜置入100 mL滅菌生理鹽水中,進行均質化。待混合均勻后,吸取定量上述液體于孔徑0.45 μm、直徑47 mm 的無菌硝化纖維膜過濾[10]。待過濾完成后將濾膜分別貼于四種分離培養基表面,RDBC 培養基、DG18 培養基、MYP 培養基、MYP5 培養基。將貼有濾膜的培養基置于16 ℃下培養7 d 后挑取單菌落,連續轉接劃線培養3 次后,記錄菌落大小、顏色、透明度、邊緣特征、濕潤度、菌落凸起等特征,根據表型差異進行初步分離篩選并純化,所得純培養物轉接YEPG(Yeast extract 10g·L-1;Peptone 10g·L-1;Glucose 20 g·L-1)斜面培養基4 ℃保藏備用。液體純培養物離心后,加入新鮮培養液重懸,補充15%的滅菌甘油冷凍保藏在-80 ℃冰箱。
對所有分離到的酵母菌進行DNA 提取,DNA的提取參照文獻[16]的方法進行。DNA 提取后加入100 μL 1×TE 溶解,-20 ℃保存。采用超微量分光光度計定量核酸濃度和純度。PCR 指紋圖譜參照文獻[17]進行。對具有相同DNA 帶型的酵母菌進行分組,并初步認為其屬于同一個種,將不同帶型的代表菌株進行測序。
將擴增后MSP-PCR 條帶對比去重后,挑取同一基因型中的代表菌株以ITS1f(5’-CTTGGTCATTTAGAGGAAGTAA-3’)和ITS4(5’-TCCTCCGCTTATTGATATGC-3’)為 引 物 進 行PCR 擴增。PCR 反應體系為25 μL(2×PCR Master Mix 12.5 μL;DNA模板2 μL;3 μmol·L-1的ITS1f:0.5 μL;0.2μmol·L-1的ITS4:0.5 μL;ddH2O 9.5 μL)。擴增程序:預變性94 ℃3 min;變性95 ℃30 s,退火55 ℃30 s,延伸72 ℃30 s;40 cycles,終延伸72 ℃6 min。將3 μL PCR 產物點樣于2%濃度的凝膠電泳檢測后將剩余的PCR 產物作為樣品送至生物工程(上海)股份有限公司進行測序。
將所測的基因序列在NCBI 核酸序列數據庫進行同源序列比對(BLAST),找出與所測序列相似度最高(97%~100%)的BLAST 庫的親緣標準菌株,CLUSTAL X 2.0 軟件序列聯配。進化距離采用鄰接法neighbor-joining method 計算,在MEGA 7.0 軟件[18]中用p-distances和Kimura-2parameter雙參數法構建系統發育樹,并用bootstrap 檢驗進化樹分支聚類的置信度,重復1 000次[5]。
利用測序結果和NCBI 數據庫比對篩選出代表菌株,將其活化后按2%的接種量接入5 mL YEPG液體培養基中,分別置于4、10、18、25、30、37 ℃共6個溫度梯度下培養,培養96 h 后,使用紫外分光光度計于420 nm測OD值。
利用4 種瓊脂培養基在3 個空氣采樣位點分離到414 株酵母菌,從各培養基分離的酵母菌數量分別為:RB(219 株);DG18(43 株);MYP(117 株);MYP5(35株)。酵母菌的豐富度程度與海拔并無明顯線性關系,其中135 株來自于低海拔位點(LA),176 株來自于中海拔位點(MA),103 株來自于高海拔位點(HA)。
本研究分離的所有酵母菌,皆為擔子菌門,其中白色與乳白色的菌落分離物被視為無色素酵母菌共有258株,另有156株色素菌株。烏源1號冰川空氣中分離純化后的菌株依據菌落顏色,形態分類,菌落顏色豐富(圖1),有純白色、灰白色、粉白色、奶油色、乳黃色、淺黃色、粉紅色、橘色,淺棕色等。酵母菌菌落直徑約1.5~3.5 mm,小部分菌落直徑小于1 mm,酵母菌的細胞形態通常有球形、近球形、卵圓形、橢圓形、圓柱形、棒形、藕節形、檸檬形等,一般為2~4 μm。

圖1 烏源1號冰川空氣源部分酵母菌代表菌株菌落圖片(A:bca-86,Rhodotorula araucariae;B:bca-321,Naganishia adeliensis;C:bca-248,Filobasidium stepposum;D:bca-32,Filobasidium floriforme;E:bca-502,Dioszegia hungarica;F:bca-175,Rhodotorula glutinis)Fig.1 Morphological characteristics of colony of representative strains of some yeast species in the Urumqi Glaciers No.1,Tianshan Mountains(A:bca-86,Rhodotorula araucariae;B:bca-321,Naganishia adeliensis;C:bca-248,Filobasidium stepposum;D:bca-32,Filobasidium floriforme;E:bca-502,Dioszegia hungarica;F:bca-175,Rhodotorula glutinis)
根據菌落形態和生長特性對所有分離得到酵母菌株進行初步分組,并對形態和生長特征相類似的菌株劃分為一組。擴增已分離純化的低溫酵母菌菌株的ITS 片段并測序,通過使用NCBI(National Center of Biotechnology Information)中的BLAST 比對工具在GenBank數據庫中進行同源性比對。結果顯示,從烏源1號冰川的表面空氣中共分離414株酵母菌(表1),MSP-PCR 指紋分型劃分為53 個基因型,從每個基因型中選出2或3株具有代表性的菌株進行ITS-rRNA 基因序列分析,共測序139 株菌株。測序結果顯示分別隸屬于9屬28種,同時選取28株代表菌株的ITS-rRNA序列構建系統發育樹(圖2)。

表1 烏源1號冰川空氣源酵母菌種的分布及數量Table 1 Distribution of yeast species of airborne in the Urumqi Glaciers No.1,Tianshan Mountains

圖2 基于ITS rRNA基因序列的烏源1號冰川空氣源酵母菌系統發育樹Fig.2 Neighbour-joining tree showing the phylogenetic relationships among yeast strains,taken from the Urumqi Glacier No.1,based on ITS rRNA gene partial sequences and related sequences downloaded from GenBank(The numbers at the nodes indicating the bootstrap values based on neighbor-joining analyses of 1 000 resampled datasets;bar 0.02 at the bottom is the sequence divergence)
對空氣源酵母代表菌株進行ITS 序列分析(圖2),有傘菌亞門24 株,柄銹菌亞門4 株。其中bca-2與Filobasidium wieringae;bca-72 與Vishniacozyma tephrensis;bca-529 與Dioszegia butyrace;bca-502 與D.hungarica;同源性高達99%親緣關系最近。bca-198、bca-222、bca-377、bca-299 分屬于同一個進化支,與Holtermanniella同源性最高,相似度為100%;bca-286、bca-175、bca-86、bca-302 分屬于同一個進化支,與Rhodotorula同源性最高,相似度為100%;bca-106、bca-529、bca-109、bca-502 聚為一類,與Dioszegia親緣關系最近;菌株bca-415 與Papiliotrema laurentiiCBS:5297 相似度為100%。分離自HA 位點的菌株bca-2 與模式菌株CBS11580(GenBank 登錄號KY103449)Filobasidium wieringae有99%的相似性。分離自MA 位點的菌株bca-529 與模式菌株CBS10122(KY103348)Dioszegia butyracea有99%的相似性。而來自MA 位點的菌株bca-84與模式菌株CBS968(AF444345)Naganishia liquefaciens有97%的相似性。種水平的系統發育分析如圖2所示,顯示了我們所分離菌株與GenBank 庫中登記的最接近的CBS 酵母菌菌種庫的模式菌株的親緣關系。
烏源1 號冰川表面空氣中9 個屬酵母菌種群結構顯示,Filobasidium種類最多分離到8 個種,Dioszegia分離到5個種,Holtermanniella分離到4個種,Cystofilobasidium、Naganishia、Vishniacozyma、Rhodotorula、Rhodosporidium均分離到2 個種,Papiliotrema種類最少,僅分離到一個種。本研究依據每種酵母菌占總分離酵母菌數量的比例確定其對應的相對豐度。酵母菌屬水平結果顯示(圖3),Holtermanniella相對豐度最高為33.33%,為最優勢屬,其 次 為Vishniacozyma(23.19%)和Filobasidium(14.98%)。除了Rhodotorula和Naganishia以外,其他屬酵母在3 個海拔位點均有分布。隨海拔升高,Holtermanniella,Vishniacozyma與Dioszegia相對豐度出現先升高再降低趨勢;而Filobasidium,Naganishia與Cystofilobasidium相對豐度呈持續降低趨勢;Rhodotorula相對豐度呈持續升高趨勢。

圖3 不同海撥冰川空氣酵母菌屬水平的群落組成Fig.3 Community composition of airborne yeasts at genus level in different altitude of the Urumqi Glacier No.1
酵母菌種水平結果顯示(圖4),Holtermanniella festucosa的相對豐度最高(22.22%),其次為Vishniacozyma victoriae(16.91%),而Holtermanniella nyarrowii、Vishniacozyma tephrensis和Rhodosporidium kratochvilovae相對豐度也比較高,均超過了5%。Dioszegia crocea、Rhodosporidium kratochvilovae等菌株豐度均低于1%。綜合分析相對豐度與發生率(每個酵母菌種在每個地理位點的出現頻率),烏源1號冰川表面空氣酵母菌優勢種為Holtermanniella festucosa,其占LA 樣品總菌株數的25.93%,占MA 樣品總菌數的24.43%,占HA 樣品總菌數的13.59%。

圖4 不同海撥冰川空氣酵母菌種水平的群落結構組成Fig.4 Community composition of airborne yeasts at species level in different altitude of the Urumqi Glacier No.1
實驗結果表明,30 株測試的代表菌株中,22 株菌最適生長溫度為22~25 ℃,在30~37 ℃緩慢生長;6 株菌生長溫度范圍在4~22 ℃,其中最適生長溫度在16~18 ℃。根據一般定義[4],前者屬于耐冷菌屬,后者屬于嗜冷菌,這說明烏源1 號冰川空氣酵母菌大部分屬于耐冷菌(表2)。
總體而言,烏源1 號冰川表面3 個不同位點的空氣樣品中,酵母菌豐度分布存在小幅度的差異。從3 個海拔分離出Holtermanniella屬酵母菌,占總分離物的33.33%,其次是Vishniacozyma屬酵母菌,在分離物總數中占比23.19%。根據最新的分類系統,本研究在不同海拔位點空氣分離菌株共有7 個屬,除Naganishia出現在2 個海拔和Papiliotrema只在1 個海拔以外,其余各屬在3 個海拔均有分布(圖5)。

圖5 烏源1號冰川空氣源酵母菌種水平生境組合強度Fig.5 Horizontal habitat assemblage intensity of glacial airborne yeast species in the the Urumqi Glacier No.1(HA,LA,and MA representing three sample collection sites,respectively).Note:the bars representing the cumulative relative abundance of each indicator yeast species in all the samples;the size of each circle defining the association strength(indicator value)of a yeast species with the different habitats,such as 0~10:not characteristic;10~20:weakly characteristic;20~30:characteristic;30~40:strongly characteristic
ACE 指 數Chao 指 數 可 反 映 物 種 豐 富 度[19],Chao 指數代表物種豐富度,對稀有物種變化敏感。由表3可知,隨著海拔小幅度增加,各樣點酵母菌群落豐富度指數(ACE 指數)與(Chao 指數)均顯示為MA>HA>LA。在海拔梯度上,ACE 指數和Chao 指數呈先上升后下降的趨勢,在MA位點達到做大值,分別為28.26 和27.67,說明空氣源酵母菌在MA 時物種最為豐富,但統計結果顯示差異不顯著。在海拔上升的過程中,Chao 指數的增加幅度較大,說明稀有菌株出現得更多。Shannon 指數代表了樣本中物種的均勻度,隨海拔梯度上升,各樣點酵母菌群落多樣性指數(Shannon 指數)呈略下降趨勢,但差異仍然不顯著。

表2 烏源1號冰川空氣源酵母菌形態特征及生長特性Table 2 Growth characteristics and morphological characteristics of airborne yeasts in the Urumqi Glaciers No.1,Tianshan Mountains
無論在極地還是高山冰川的生態系統中,低溫酵母菌都代表了冰川微生物群落的一個重要組成部分[20]。目前的報道顯示,在兩極地區,多年凍土、高山冰川、深海以及寒冷沙漠等低溫環境中,可培養酵母菌主要為擔子菌門和子囊菌門兩大類[21],但研究顯示,擔子菌門酵母菌比子囊菌門酵母菌有更好的低溫生態適應性[22]。由于不同地區生態環境的差異,不同生態系統中低溫酵母菌類群差異顯著。本研究結果表明,在門水平上的空氣源酵母菌中的優勢菌門全部為擔子菌門。

表3 烏源1號冰川不同位點空氣酵母菌群落豐富度和多樣性指數Table 3 Abundance and diversity of airborne yeasts communities of different sites in the Urumqi Glaciers No.1,Tianshan Mountains

表4 烏源1號冰川空氣酵母菌與其他4種生境中酵母菌的比較Table 4 Distribution of yeast species of airborne(TA)and other habitats of the Urumqi Glacier No.1,Tianshan Mountains,including supraglacial ice(BB),cryoconite sediment(BC),supraglacial meltwater(BW)and supraglacial snow(SN)
將本研究結果與課題組前期對烏源1號冰川中冰塵、表面融水、積雪和冰芯共五種生境的酵母菌組成進行比較研究(表4),冰川五種生境中擔子菌酵母均占明顯優勢,這是多數冰川生態系統的共同特征[23-24]。很多研究報道顯示,原屬于隱球菌屬(Cryptococcus)的酵母菌Vishniacozyma屬,其中的Vishniacozyma victoriae與V.tephrensis在5 種 冰 川生境均有分布(表4)。然而,文獻報道顯示,在地球其他生境這兩個種也有分布,譬如植被及果蔬表面。我們的研究發現,烏源1號冰川空氣中Vishnia-cozyma victoriae與V.tephrensis為優勢菌,很可能是通過空氣傳播將植物體表的菌株攜帶到了冰川生境。但目前對不同生境種群之間的進化關系沒有進行深入報道,不同菌株之間ITS 基因序列顯示了很高的同源性,因此有可能屬于世界廣布種,也有可能屬于同種的不同生態型。從表4 可知,烏源1號冰川不同生境廣泛分布紅酵母屬(Rhodotorula)菌株,具有很高的分離頻率,表明在低溫生境具有很強的適應性[25]。其原因可能是Rhodotorula屬酵母菌可產生類胡蘿卜素,作為光保護劑能夠有效避免紫外線對細胞的損傷。此外,類胡蘿卜素是一類膜保護的抗氧化色素,可抵抗UV 并增強細胞膜的流動性,能夠有效清除自由基[26]。此外,一般認為該屬還能夠產生胞外多糖,使它們在冰川生境中具有更強的生態脅迫耐受性[27]。實際上,在空氣、葉面和腐爛的植物碎片中均能分離到它們,其中Rhodotorula araucariae在腐敗的植物體表很容易分離到[28]。因此,以Rhodotorula屬酵母菌為模式菌,研究在極端環境條件下,紫外線輻射在對酵母菌菌群結構具有重要的生態學意義。同樣,Rhodotorula屬在烏源1 號冰川空氣中也存在,也可能是通過空氣傳播將植物體表的菌株攜帶到了冰川生境。但目前對紅酵母屬的系統發育和分類做了大的修改,也有可能是隸屬于不同種的酵母在不同生境的分布需要做深入研究[26]。
鑒于以上情況,人們很容易認為冰川生境的酵母菌與空氣酵母菌密切相關。但本研究一個例外的發現是空氣源的優勢酵母屬Holtermanniella,它們在冰川中很少被分離到[13],這說明冰川對外源微生物具有選擇作用,即Holtermanniella屬作為外源種群不適應冰川生境[13]。表4顯示,Holtermanniella屬中H.festucosa、H.takashimae、H.nyarrowii、H.lawattica在冰川的冰塵,融水,雪水,冰芯中均未被分離到,但在空氣中屬于優勢種群。表明冰川生態系統對外源微生物具有顯著的生境過濾作用,只有適應性很強的種群才能進入冰川生態位生殖繁衍,進而通過微進化發生生態生理漸變[29]。因此,我們預期在冰川生境景觀尺度下,極端環境因素(包括紫外線、溫度、寡營養環境等)對微生物的群落構建(群落結構和物種分布格局)和空間分布格局產生顯著的影響[30]。以酵母菌作為范式,研究冰川生境的群落構建過程中,由非生物因素與生物因素的相互作用,及其對微生物群落動態格局貢獻度很有必要。
眾所周知,冰川區域在空間地理上環境多變,尤其在垂直尺度上環境因子相差較大,形成了不同的小生境,蘊含了豐富的微生物類群。烏源1 號冰川表面空氣微生物可能來源于內部和外部環境,其中來自周邊生境的冰川低溫酵母屬于原位棲息的本地種(endemic species),由于大氣環流隨機遷移的屬于陸源性外來種(exotic species)。研究發現Naganishia adeliensis在不僅在空氣中分離到,在冰川多個生境均有發現,表明該屬種類大多為本地菌[13]。Cystofilobasidium infirmominiatum、Filobasid-ium chernovii、Filobasidium elegans、Filobasidium wieringae主要在空氣與冰川表面的積雪生境所分離到,很有可能是從積雪表層傳遞到空氣。第二類是近距離外來菌(Local exotic species),這些菌株很可能主要來自于冰川前沿退縮地的植物花蜜和植物源附生酵母菌。如Rhodotorula屬,在空氣、葉面和腐爛的植物碎片中均能分離到它們,R.araucariae、R.glutinis、R.kratochvilovae、R.toruloides是空氣與冰川表面冰所共有的菌種[27]。第三類是遠距離外來菌(Distant exotic species),通過大氣環流運動,通過降水(雨、雪),水凝華(云、霧、冰雹)和灰塵沉降等被攜帶[31-32],這些種類可能來自空間地理差異較大的生態系統,如沙漠[33]、森林[34]等。有報道發現冰川的冰芯中分離出了來自于溫帶和熱帶地區的微生物[35]。Holtermanniella屬的菌株大多分離自植物體表,在本研究中從冰川生境沒有分離到它們,很可能來自溫帶森林。此外Vishniacozyma victoriae是極地環境的優勢種類,也是本研究中的優勢菌株,但在非極地環境中普遍分離出該種親緣關系相近的菌株,表明是全球的廣布酵母菌種類[36]。
本研究位點LA 選取在冰川前沿高山草甸處,以高山墊狀植被為主,此處植物群系開始多元化且動物出沒頻繁,受動植物及人為干擾因素大。位點MA 選取在冰川前沿退縮處,此處均為裸露及風化的巖石,有動物活動。位點HA 選取在冰川冰舌中部,此處周圍即冰川腹地,下方為冰雪及冰塵洞,受外界因素干擾較小。在冰川表面成功定植的微生物需要耐受大范圍幅度劇烈的溫度波動,以及抵御太陽輻射,并耐受寡營養等脅迫條件[37-38],在大幅度海拔梯度上呈現出了不同的生態位分布格局[39]。但基于本研究的結果,3 個梯度海拔的可培養酵母菌多樣性存在差異,很可能是每個位點采集空氣樣本時,部分環境因素(如風速和顆粒物質量濃度)導致空氣采集有一定程度的差異。對于空氣源酵母菌來說,由于空氣的空間異質性相對較小,在小梯度的海拔梯度下以連續的狀態處于動態變化,可培養酵母菌差異并不顯著。冰川生境受大氣環流及周邊人類和動物活動影響,內源、外源酵母菌分辨需要更精確的方法甄別[13],因此,對冰川表面和空氣微生物關系需要深入研究。
基于烏源1 號冰川表面3 個海拔高度的空氣酵母菌群落結構分析及其與冰川表面生境酵母菌的比較,得到結論如下:
(1)分類特征:烏源1號冰川表面空氣分離到的酵母菌全部隸屬于擔子菌門(Basidiomycota),包括9屬28種,傘菌亞門(Agariomycotina)成員占絕對優勢。Holtermanniella festucosa與Vishniacozyma victoriae為冰川空氣廣布的優勢酵母菌種。酵母菌大多為來自周邊生境的耐冷酵母菌。
(2)分布特征:在小幅度的海拔梯度上,空氣酵母菌群落結構有所不同,但多樣性指數沒有顯著差異。基于空氣酵母菌和冰川酵母菌種群的比較,冰川生境酵母菌與空氣酵母菌密切相關,但冰川生境對外源酵母菌具有明顯的生境過濾與選擇作用。