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A549肺癌細胞條件培養(yǎng)液促進人骨髓間充質(zhì)干細胞的增殖和遷移*

2021-03-02 01:41:00王璐璐金海峰姚立杰劉丹陽李永濤張善強
解剖學雜志 2021年1期
關(guān)鍵詞:肺癌實驗檢測

姜 楊 王璐璐 金海峰 姚立杰 張 嵩 劉丹陽 李永濤 張善強 沈 雷△

(齊齊哈爾醫(yī)學院,1 解剖學教研室,2 細胞生物學教研室,3組織學胚胎學教研室,齊齊哈爾 161006)

間充質(zhì)干細胞(mesenchymal stem cells,MSC)是促成肺癌發(fā)生的因素之一[1]。趨化因子濃度增高能夠誘使細胞歸巢[2]。趨化因子-8(C-X-C motif chemokine ligand-8,CXCL-8)除了促進MSC運動[3],還在結(jié)腸癌、膀胱癌等腫瘤組織高表達[4-5],并是預測宮頸癌發(fā)生的重要指示[6],再次證實CXCL-8 對腫瘤細胞遷移具有關(guān)鍵作用。Akt 通路調(diào)節(jié)的肌動蛋白收縮導致細胞運動[7],CXCL-8可活化血管內(nèi)皮細胞Akt-STAT3 通路[8],促進血管新生[9]。CXCL8 為促進腫瘤生長轉(zhuǎn)移提供了新血管形成、細胞運動等基礎條件[10]。雖然非小細胞肺癌高表達的CXCL-8 促進了肺癌發(fā)展[11],但是肺癌細胞通過CXCL8 招募MSC 歸巢的作用和機制仍不清楚。本實驗在細胞水平觀察A549細胞表達的CXCL-8 通過Akt 通路對人骨髓間充質(zhì)干細胞(human bone marrow mesenchymal stem cells,hBMSCs)增殖或運動產(chǎn)生的影響,研究結(jié)果將為抑制肺癌提供實驗依據(jù)。

1 材料和方法

1.1 材料

hBMSCs 購于武漢普諾賽生命科技有限公司。A549細胞和BEAS-2B 細胞均購于美國菌種保存中心(American Type Culture Collection,ATCC)。人CXCL-8 重組蛋白和triciribine(美國Selleck 公司);DMEM/F12 培養(yǎng)基、α-MEM 培養(yǎng)基、DMEM培養(yǎng)基、胎牛血清(美國Gibco 公司);RIPA 細胞裂解液、BCA 蛋白定量檢測試劑盒等試劑(上海碧云天生物科技公司);人CXCL-8、Akt、P-Akt蛋白ELISA 試劑盒(美國Antibodies 公司);MTT、L-谷氨酰胺、二甲基亞砜(美國Sigma 公司);Annexin V-PI 細胞凋亡試劑盒(美國Hyclone 公司)。

1.2 細胞培養(yǎng)

A549細胞、BEAS-2B 細胞分別用含10%胎牛血清的DMEM/F12 培養(yǎng)基或DMEM 培養(yǎng)基培養(yǎng)。含10% 胎牛血清,2 mmol/L L-谷氨酰胺的α-MEM培養(yǎng)基培養(yǎng)hBMSCs。4.5×106個/mL A549細胞或BEAS-2B細胞在37℃、5%CO2培養(yǎng)12 h,800 r/min 離心5 min,分別提取A549細胞和BEAS-2B細胞上清液,0.22 μm 濾器抽濾,液氮保存。正常條件下,無任何刺激的hBMSCs 為對照組。以體積比1∶4 稀釋A549細胞或BEAS-2B 細胞上清液為條件培養(yǎng)基[12],條件培養(yǎng)基培養(yǎng)的hBMSCs 為A549組 或BEAS-2B組;3組均添加50 nmol/L CXCL-8則為A549 C組和BEAS-2B C組;若同時添加100 nmol/L triciribine則分別為A549 CT組 和BEAS-2B CT組。A549組加入100 nmol/L triciribine 則為A549 T組。

1.3 ELISA 檢測CXCL-8、Akt 或P-Akt蛋白含量

人ELISA試劑盒檢測A549細胞和BEAS-2B細胞上清液中CXCL-8蛋白含量。4℃,以RIPA細胞裂解緩沖液裂解密度為4.5×106個/mL各組hBMSCs,10 000 r/min離心5 min;BCA蛋白定量檢測試劑盒檢測總蛋白濃度后,再以人ELISA試劑盒檢測各組hBMSCs中Akt或P-Akt蛋白的含量[8]。

1.4 Transwell 細胞遷移實驗檢測hBMSCs遷移數(shù)目

1.5×104個/mL hBMSCs置于Transwell細胞小室內(nèi),下層腔室加入按實驗分組設置而添加的試劑或條件培養(yǎng)基,37℃,5%CO2培養(yǎng)12 h,擦除transwell細胞小室內(nèi)hBMSCs,0.01 mmol/L PBS 清洗3次,每次1 min;4%多聚甲醛溶液固定transwell細胞小室60 min,0.01 mmol/L PBS清洗3次,每次1 min;1%結(jié)晶紫染色30 min。Image-Pro Plus 6.0.1(IPP 6.0.1)軟件計算單位面積下被結(jié)晶紫染色的hBMSCs遷移數(shù)目。

1.5 MTT 檢測細胞增殖吸光度

0.6×104個/mL hBMSCs加入96孔細胞培養(yǎng)板,37℃,5%CO2培養(yǎng)12 h;按照實驗分組分別加入各組條件培養(yǎng)基或試劑。37℃,5%CO2培養(yǎng)12 h;加入5 g/L MTT 溶液,37℃,5%CO2繼續(xù)培養(yǎng)4 h,再添加二甲基亞砜,Emax Plus 酶標儀在490 nm 波長檢測細胞增殖吸光度(absorbance value,A490值)。

1.6 流式細胞儀檢測細胞凋亡

用1.25% Annexin V-FITC溶液重懸2×105個/mL各組hBMSCs,孵育20 min;10 000 r/min離心5 min;0.01 mmol/L PBS清 洗3次,每次1 min;加 入2%PI溶液,冰上孵育2 min,10 000 r/min離心5 min,0.01 mmol/L PBS重懸。FACSAria Ⅱ型流式細胞儀檢測細胞凋亡率。

1.7 統(tǒng)計學處理

實驗數(shù)據(jù)采用SPSS 18.0 軟件進行統(tǒng)計分析。計量資料以±s表示,組間比較采用方差分析,計數(shù)資料采用χ2檢驗,P<0.05 為差異具有統(tǒng)計學意義。

2 結(jié)果

2.1 hBMSCs 增殖

對照組、BEAS-2B組、A549組、BEAS-2B C組、A549 C組、A549 T組、A549 CT組 和BEAS-2B CT組的A490值分別為0.91±0.05、0.93±0.06、1.13±0.01、1.35±0.07、1.72±0.09、0.94±0.11、1.39±0.06、1.04±0.03,各組hBMSCs增殖的A490值差異具有統(tǒng)計學意義(P<0.01)。相對于BEAS-2B組和對照組,A549組A490值升高;A549 C組hBMSCs細胞A490值最高;A549 CT組比A549 C組A490值降低。這提示CXCL-8能夠促進hBMSCs增殖;A549細胞上清液含有促進hBMSCs增殖的活性成分。

2.2 hBMSCs 凋亡

對照組(43.1%)、BEAS-2B組(40.9%)、A549組(31.2%)、BEAS-2B C組(26.1%)、A549 C組(10.3%)、A549 CT組(13.4%)、BEAS-2B CT組(29.0%)、A549 T組(37.2%),各組細胞凋亡率相比差異具有統(tǒng)計學意義(P<0.01)(圖1)。A549組hBMSCs 凋亡率比BEAS-2B組和對照組顯著降低;A549 C組hBMSCs 凋亡率最低,添加了Akt抑制劑的各組hBMSCs 凋亡率比相應各組hBMSCs凋亡率均呈升高趨勢。結(jié)合細胞增殖實驗結(jié)果,共同提示A549細胞能夠促進hBMSCs 增殖,抑制hBMSCs 凋亡,說明A549細胞分泌的上清液中含有提高hBMSCs 活性的有效因子(圖1)。

圖1 流式細胞儀檢測各組hBMSCs 細胞凋亡

2.3 hBMSCs遷移

Transwell細胞遷移實驗結(jié)果顯示(圖2),對照組、BEAS-2B組、A549組、BEAS-2B C組、A549 C組、A549 T組、A549 CT組 和BEAS-2B CT組 穿過transwell 細胞小室基膜的hBMSCs 數(shù)目分別為40.53±1.13、42.72±1.55、59.64±1.95、53.67±2.04、75.05±1.37、43.83±2.16、61.32±2.13、35.94±1.81,各組hBMSCs遷移數(shù)目差異具有統(tǒng)計學意義(P<0.01)。相對于BEAS-2B組和對照組,A549組hBMSCs遷移數(shù)目升高;A549 C組hBMSCs遷移數(shù)目最高;A549 CT組 比A549 C組遷移數(shù)目降低。提示CXCL-8 促進hBMSCs遷移的作用可被Akt 抑制劑所抑制。

圖2 Transwell 細胞遷移實驗檢測各組hBMSCs 的12 h 細胞遷移,標尺=100 μm

2.4 A549細胞和BEAS-2B細胞上清液中CXCL-8蛋白的含量

ELISA 驗證A549細胞上清液中含有的活性因子顯示,A549上清液中CXCL-8含量是(13.108±0.120)ng/L,BEAS-2B上清液CXCL-8含量為(6.053±0.340)ng/L,2組數(shù)據(jù)相比,差異具有統(tǒng)計學意義(P<0.01)。

2.5 hBMSCs 的Akt、P-Akt蛋白含量情況

ELISA結(jié)果顯示各組hBMSCs的Akt和P-Akt蛋白含量分別為:對照組(7.54±1.04)mg/L和(6.93±1.13)mg/L ;BEAS-2B組(7.60±1.69)mg/L和(6.82±1.07)mg/L;A549組(14.27±1.53)mg/L 和(11.92±1.18)mg/L ;BEAS-2B C組(19.03±1.45)mg/L和(16.69±1.02)mg/L;A549 C組(31.52±1.78)mg/L和(29.08±1.93)mg/L;A549 T組(26.31±1.59)mg/L 和(18.42±1.63)mg/L ;A549 CT組(13.23±1.31)mg/L 和(12.90±1.77)mg/L和BEAS-2B CT組(9.24±1.55)mg/L和(6.22±1.43)mg/L。各組hBMSCs的Akt蛋白含量差異具有統(tǒng)計學意義(P<0.01),P-Akt蛋白含量差異也具有統(tǒng)計學意義(P<0.01)。相對于BEAS-2B組和對照組,A549組Akt 和P-Akt蛋白含量明顯升高;A549 C組Akt和P-Akt蛋白含量明顯最高;添加了Akt 抑制劑的各組細胞Akt 和P-Akt蛋白含量比相應各組呈降低趨勢。以上結(jié)果證明:A549細胞上清液含有的CXCL-8 通過激活hBMSCs 內(nèi)Akt信號通路,促進hBMSCs 增殖和運動。

3 討論

3.1 A549細胞表達CXCL-8提高hBMSCs增殖或遷移能力

轉(zhuǎn)移性癌細胞通常不能用傳統(tǒng)的外科或放化療策略根除,治療后疾病復發(fā)極為常見,清除腫瘤干細胞是抑制腫瘤發(fā)生發(fā)展的關(guān)鍵[13]。干細胞治療方法在癌癥治療中顯示出越來越大的希望。干細胞通過歸巢能到達原發(fā)性或轉(zhuǎn)移性腫瘤病灶,并以載體的形式穩(wěn)定表達靶向抗腫瘤藥物,可減小腫瘤體積,延長存活時間,減輕治療副作用[14]。闡明MSC等干細胞歸巢到惡性腫瘤微環(huán)境的機制,提高MSC歸巢率是開展MSC在惡性腫瘤治療的前提。

MSC 廣泛分布在骨髓、脂肪、臍帶血等多種組織,容易分離和體外培養(yǎng)。MSC 可多向分化為骨、軟骨、脂肪、血管等組織,還能分泌SDF-1α、VEGF、EGF 等大量趨化因子、生長因子等生物活性分子,對維持MSC 干性起著至關(guān)重要的調(diào)節(jié)作用[15]。研究表明,與腫瘤細胞活性相類似,MSC也具有易遷移、向組織歸巢運動能力[16]。肺癌細胞與MSC 相互影響,相互促進,MSC 在肺癌等惡性腫瘤的發(fā)展和轉(zhuǎn)移中扮演關(guān)鍵作用[17]。目前發(fā)現(xiàn)MSC 具有定向遷移到腫瘤組織,促進腫瘤轉(zhuǎn)移的能力,與胃癌、乳腺癌等多種癌癥進展有關(guān),表現(xiàn)出較好地維持腫瘤生長的能力[18]。但是從趨化因子角度闡明肺癌組織招募MSC 的機制還不清楚。

本實驗采取A549 為研究對象,觀察A549 肺癌細胞上清液對hBMSCs 增殖、凋亡和遷移作用效果和機制。相關(guān)實驗結(jié)果提示A549細胞上清液中可能具有活化hBMSCs 的活性物質(zhì)。袁哲等[19]將A549細胞條件培養(yǎng)基按照體積濃度分為高濃度(100%)和低濃度(50%)2組,使用MTT 和transwell 細胞遷移實驗分別觀察對人臍帶血MSC增殖和遷移的影響,顯示低或高濃度A549 條件培養(yǎng)基均明顯促進人臍帶血MSC 增殖和遷移率,尤以高濃度組實驗結(jié)果為甚。本實驗研究結(jié)果與該研究相符。但是袁哲等[19]并未對A549細胞條件培養(yǎng)基對人臍帶血MSC 凋亡效果或招募人臍帶血MSC歸巢的機制進行分析。本研究深入開展了Annexin V-PI 細胞凋亡實驗,觀察到A549細胞上清液還可以降低hBMSCs 的細胞凋亡率,推測A549 上清液中可能含有某些激活hBMSCs 的活性因子。

張鵬等[20]報道CXCL-8 對人脂肪間充質(zhì)干細胞具有較好的促進運動能力。趨化因子對多種惡性腫瘤發(fā)生發(fā)展具有較好調(diào)控能力。食管癌表達的CXCL-8(又稱IL-8)通過激活STAT3信號通路,抑制NK 細胞定向趨化到癌組織,進而促進食管癌轉(zhuǎn)移和復發(fā)[21]。本研究采用ELISA 實驗顯示A549上清液中CXCL-8表達明顯升高,與CXCL-8 在惡性腫瘤組織較高表達的結(jié)果相一致[21]。為了進一步驗證CXCL-8在A549細胞對hBMSCs的影響,實驗又設立了陽性對照組,即向BEAS-2B組或A549組添加了CXCL-8重組蛋白。結(jié)果顯示,BEAS-2B C組hBMSCs增殖或遷移率明顯比BEAS-2B組升高,A549 C組的增殖或遷移率呈現(xiàn)最高,進一步說明CXCL-8在A549細胞條件培養(yǎng)基誘導hBMSCs增殖和遷移能力方面發(fā)揮了重要作用。

胰腺癌、胃癌等腫瘤表達CXCL-8 會促進血管新生[22-23]。CXCL-8除了對MSC等細胞具有較強招募作用外[8,20],還能夠促進MSC分泌VEGF,促使血管內(nèi)皮細胞黏附,加速血管新生等作用[8,22-23]。本實驗只檢測了CXCL-8一種趨化因子含量,A549細胞分泌的上清液可能還含有其他炎癥因子或趨化因子,這些活性成分的檢測還需要借助高效液相色譜技術(shù)或基因芯片等手段進一步驗證。

3.2 A549細胞表達CXCL-8激活hBMSCs內(nèi)Akt信號通路

添加triciribine 的A549 CT組hBMSCs增殖和細胞遷移率降低,細胞凋亡率升高,更說明A549細胞上清液通過Akt信號通路發(fā)揮作用。A549組hBMSCs 的Akt 和P-Akt蛋白表達均明顯增加;A549 CT組hBMSCs 的Akt 和P-Akt蛋白表達均明顯降低。這說明A549細胞上清液中的CXCL-8與hBMSCs 表面的CXCR1/2 受體結(jié)合[24],能夠激活hBMSCs 內(nèi)Akt信號通路。結(jié)合使用Akt 抑制劑的A549 CT組實驗結(jié)果,再次證明A549 能夠表達CXCL-8 趨化因子,通過Akt信號通路發(fā)揮了招募MSC 歸巢的作用。如果阻斷Akt信號通路或其下游的mTOR等相關(guān)蛋白,CXCL-8會降低MSC歸巢效率,更說明CXCL-8 通過PI3K-Akt-mTOR信號通路使更多的MSC歸巢。

綜上所述,A549細胞微環(huán)境表達的CXCL-8激活hBMSCs 內(nèi)Akt信號通路,促進hBMSCs 增殖或遷移,對闡明腫瘤微環(huán)境與MSC相互作用,揭示肺癌干細胞來源,尋找抑制肺癌發(fā)生發(fā)展的方法具有非常重要的意義。

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