鞣花酸對皮膚基底細胞癌A431和HSC-2細胞增殖、凋亡、侵襲能力的影響

王丹，王悅欣，汪熠，李連保

1昆明醫科大學附屬甘美醫院/昆明市第一人民醫院生物醫學實驗中心，昆明 650000

2昆明醫科大學第一附屬醫院胃腸外科，昆明 650000

基底細胞癌又稱基底細胞上皮瘤，具有較大的破壞性，其發病與日光照曬有密切關系，多見于老年人，好發于面部較突出的部位，目前學者們普遍認為它是來自表皮多潛能細胞的腫瘤。鞣花酸是一種多酚二內酯，是沒食子酸的二聚體衍生物，廣泛存在于各種軟果、堅果等植物組織中。鞣花酸具有多種生物活性功能，如抗氧化、抗肝毒性、抗脂肪變性、抗膽汁淤積、抗纖維化、抗肝癌和抗病毒，可改善肝臟結構和病理狀態[1]。鞣花酸通過核因子紅細胞2相關因子2的轉錄激活增加抗氧化反應，并具有清除多種活性氧物質的活性。鞣花酸的應用有效地降低了循環中的脂質水平，防止了脂質過氧化[2-3]。段婧和黃衛東[4]認為鞣花酸具有廣泛的抗腫瘤活性。有研究發現，鞣花酸可明顯抑制雌激素誘導的乳腺癌細胞MCF-7的增殖，并抑制p-胞外信號調節激酶（extracellular signal-regulated kinase，ERK）1/2的表達，且呈劑量依賴性[5-6]。另有研究表明，鞣花酸能夠明顯抑制4T1細胞增殖并誘導其凋亡，還可明顯提高荷瘤小鼠的特異性抗腫瘤免疫反應[7]。多種植物化學物質已被廣泛用于應對生物系統中的各種氧化應激。鞣花酸是廣泛研究的酚類抗氧化劑之一，已用于抵抗由不同化學物質或應激物誘導的氧化應激[4-5]。本研究以表皮癌細胞系A431和皮膚鱗狀細胞癌細胞HSC-2為研究對象，觀察鞣花酸對其增殖、凋亡、侵襲能力的影響，現報道如下。

1 材料與方法

1.1 細胞、試劑及儀器

表皮癌細胞系A431和皮膚鱗狀細胞癌細胞HSC-2均購自武漢普諾賽生命科技有限公司。鞣花酸購自美國Sigma公司，DMEM高糖培養基、青鏈霉素、胎牛血清和胰蛋白酶均購自美國Gibco公司，Transwell小室購自美國Corning公司，噻唑藍（methylthiazolyldiphenyl- tetrazolium bromide，MTT）試劑、吉姆薩染色試劑盒均購自北京索萊寶科技有限公司，膜連蛋白Ⅴ（AnnexinⅤ）-異硫氰酸熒光素（fluorescein isothiocyanate，FITC）/碘化丙啶（propidium iodide，PI）細胞凋亡檢測試劑盒購自美國ThermoFisher Scientific公司，Matrigel膠購自美國Beckman公司。多功能酶標儀購自美國Bio-Rad公司，倒置光學顯微鏡購自日本Olympus公司，流式細胞儀購自美國Beckman公司。

1.2 方法

1.2.1 細胞培養及藥物干預 使用含10%胎牛血清和1%青鏈霉素的DMEM高糖培養基培養A431和HSC-2細胞，使其貼壁生長，置于37℃、5% CO2的細胞培養箱中。本研究選擇10 μg/ml的鞣花酸干預A431和HSC-2對數期細胞。

1.2.2 MTT 檢測細胞增殖 為評估細胞增殖情況，將對數期細胞以每孔1×104個接種于96孔平板中，加入200 μl新鮮培養基和20 μl MTT溶液，然后37 ℃溫育4 h。除去孔中的培養基和MTT溶液，加入二甲基亞砜（dimethyl sulfoxide，DMSO）溶液。分別在0、3、6、12、24、48 h時測量595 nm處的吸光度（optical density，OD）。抑制率=[1-（實驗組OD值-空白組OD值）（/對照組OD值-空白組OD值）]×100%。

1.2.3 流式細胞術檢測細胞凋亡 將單細胞懸液用預冷的磷酸鹽緩沖液（phosphate buffered saline，PBS）洗2次，然后加入1×結合緩沖液1 ml重懸細胞。取 100 μl加入到 5 ml的培養管中，加入 5 μl FITC標記的AnnexinⅤ和5 μl PI，混勻后室溫下避光孵育15 min，然后再加入400 μl的1×結合緩沖液。整個操作過程動作要盡量輕柔，勿用力吹打細胞。反應完畢后盡快在1 h內上機檢測，用FL1通道檢測FITC-AnnexinⅤ熒光，FL2通道檢測PI熒光。同時以不加FITC-AnnexinⅤ及PI的樣本管作為陰性對照。結果判斷：中晚期凋亡細胞和壞死細胞的細胞膜有損傷，PI能夠穿透細胞膜而使DNA被PI染色產生紅色熒光。而細胞膜保持完好的早期凋亡細胞對PI有抗染性，不會產生紅色熒光，正常活細胞與之相似。在雙變量流式細胞儀的散點圖上，左下象限（FITC-/PI-）顯示活細胞，右下象限（FITC+/PI-）為早期凋亡細胞，右上象限（FITC+/PI+）為晚期凋亡細胞。

1.2.4 Transwell小室實驗檢測細胞侵襲 將細胞用無血清培養基重懸，并在鋪有基底膜基質膠的Transwell上室中接種，下室中加入含10%胎牛血清的DMEM培養基。24 h后，用棉簽刮下上室細胞，采用4%多聚甲醛固定下室細胞，用吉姆薩染色試劑染色。將小室翻轉后置于倒置顯微鏡下進行細胞計數。實驗重復3次。

1.3 統計學分析

采用Graphpad 5.0軟件對數據進行統計分析，計量資料以均數±標準差（±s）表示，組間比較采用t檢驗，重復測量數據的比較采用單因素方差分析，以P＜0.05為差異有統計學意義。

2 結果

2.1 鞣花酸干預對A431和HSC-2細胞增殖的影響

MTT檢測結果顯示，與干預前（0 h）比較，鞣花酸干預6、12、24、48 h后，其對A431和HSC-2細胞的抑制率均升高，差異均有統計學意義（P＜0.05）。隨著鞣花酸作用時間的延長，A431和HSC-2細胞抑制率均逐漸增加，但當作用時間超過24 h后，抑制率無明顯變化。因此，后續實驗采用24 h為干預時間。（表1）

表1 鞣花酸干預前和干預后不同時間點A431和HSC-2細胞抑制率的比較（%，±s）

表1 鞣花酸干預前和干預后不同時間點A431和HSC-2細胞抑制率的比較（%，±s）

注：*與同細胞0 h比較，P＜0.05

細胞A 4 3 1 H S C-2 0 0 4.0 1±0.5 8*2.3 3±0.3 3 1 1.6 7±0.8 0*7.7 7±0.5 5*2 1.8 0±0.4 2*1 5.6 1±0.5 5*2 8.4 8±0.4 6*2 1.4 7±1.0 2*2 8.6 7±0.8 2*2 0.7 0±0.8 4*0 h 3 h 6 h 1 2 h 2 4 h 4 8 h

2.2 鞣花酸干預對A431和HSC-2細胞凋亡的影響

細胞凋亡檢測結果表明，鞣花酸干預后A431活細胞比例為（63.21±4.35）%，明顯低于干預前的（90.37±2.35）%，差異有統計學意義（t=41.223，P＜0.01）。鞣花酸干預后HSC-2活細胞比例為（79.21±2.32）%，低于干預前的（85.37±1.55）%，差異有統計學意義（t=29.557，P＜0.05）。（圖1）

圖1 流式細胞術檢測鞣花酸干預前后A431和HSC-2細胞凋亡

2.3 鞣花酸干預對A431和HSC-2細胞侵襲能力的影響

鞣花酸干預后A431侵襲細胞個數為（23.26±7.23）/HP，明顯低于干預前的（58.24±4.23）/HP，差異有統計學意義（t=15.324，P＜0.01）。鞣花酸干預后HSC-2侵襲細胞個數為（22.56±2.23）/HP，明顯低于干預前的（48.44±3.13）/HP，差異有統計學意義（t=27.881，P＜0.01）。（圖2）

3 討論

鞣花酸是一種天然酚類抗氧化劑，存在于眾多水果和蔬菜中。鞣花酸是沒食子酸的二聚體衍生物，很少在飲食作物中自由存在，但通常發生在與糖苷部分（葡萄糖、木糖）結合的食品中或形成鞣花單寧的一部分。這些化合物通常出現在水果（如石榴、柿子、覆盆子、黑莓、草莓、桃子）、堅果（如核桃、杏仁）、蔬菜和葡萄酒中[8-10]。有研究表明，鞣花酸具有與沒食子酸、咖啡酸、原兒茶酸、表兒茶素和山奈酚相似的抗氧化活性，但活性高于阿魏酸[11-13]。鞣花酸具有抗增殖和抗氧化特性，是一種非常有前途的治療慢性疾病的藥物，尤其是潰瘍性結腸炎、阿爾茨海默病和糖尿病[14-17]。鞣花酸的抗糖尿病潛力使其成為傳統降糖藥物的潛在替代品，也是糖尿病藥物研究的有力候選者[18]。鞣花酸也具有保肝和抗癌特性。然而，在應用于人類疾病的治療前，需要進行詳細的毒性評估，驗證其安全性和有效性。

圖2 Transwell 小室實驗檢測鞣花酸干預前后A431和HSC-2細胞侵襲能力（吉姆薩染色，×20）

基底細胞癌是皮膚癌最常見的類型之一，也被稱為基底細胞上皮瘤、基底細胞樣細胞瘤浸潤性潰瘍等。基底細胞癌是由未成熟、非間變的類似基底細胞構成的局部破壞性癌。1902年Krompecher將其與其他上皮性腫瘤進行了明確的區分，其特征是發展緩慢，呈現浸潤性生長，但血液或淋巴結轉移少，惡性程度低[19-20]。基底細胞癌多發生在頭部、面部，開始呈現較硬的斑狀丘疹或呈疣狀突起，逐漸形成潰瘍。早期手術切除是合適的治療方法，骨浸潤時必須輔助全身化療。

本研究的MTT實驗表明，鞣花酸可以抑制A431和HSC-2細胞增殖，24 h為最佳抑制時間。流式細胞儀檢測結果顯示，鞣花酸對A431和HSC-2細胞具有促凋亡作用。Transwell小室實驗表明，鞣花酸可以在一定程度上抑制A431和HSC-2細胞的侵襲能力。

綜上所述，鞣花酸不僅能夠抑制A431和HSC-2細胞增殖，誘導其凋亡，還能夠抑制其侵襲，有望成為治療皮膚基底細胞癌的新藥物，為臨床治療皮膚基底細胞癌提供了新思路。