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活絡止痛丸對風濕痹癥模型大鼠的治療作用及機制研究

2020-06-05 00:46:18王寶成姜文月王美慧楊明爽蘇小紅李芯茹
亞太傳統醫藥 2020年3期
關鍵詞:劑量模型

徐 杰,王寶成,姜文月*,王美慧,楊明爽,蘇小紅,李芯茹

(1.吉林省現代中藥工程研究中心有限公司,吉林 長春 130012;2.通藥制藥集團股份有限公司,吉林 通化 134001)

目前類風濕關節炎(RA)動物模型有很多,如佐劑誘導的關節炎、卵蛋白誘導的關節炎、Ⅱ型膠原誘導的關節炎、多聚糖蛋白誘導的關節炎模型等。其中,佐劑性關節炎模型與人RA在發病機制、臨床表現、病理、免疫等方面有著相似或相近的特點,且弗氏完全佐劑的操作簡便易行,造模周期較短,重復性好,可同時獲得大量模型動物,對RA的基礎研究十分適宜。

本研究采用佐劑性關節炎模型作為實驗動物模型,通過外界施以“風寒濕”和“風濕熱”的致病因素制備風寒濕痹與風濕熱痹兩類病證結合動物模型,觀察活絡止痛丸對風寒濕痹與風濕熱痹模型大鼠的治療作用,并探討其治療風濕痹癥的作用機制。

1 材料與儀器

1.1 動物

Wistar大鼠,雄性,體重180~220 g,由長春市億斯實驗動物技術有限責任公司提供,實驗動物生產許可證為SCXK(吉)-2018-0007。

1.2 藥物與試劑

活絡止痛丸(批號:180501)由通藥制藥集團股份有限公司提供;萬通筋骨片(批號:02171213K)購自通化萬通藥業股份有限公司;弗氏完全佐劑(批號:SLBR3897V)購自Sigma公司;大鼠白細胞介素-1β(IL-1β)酶聯免疫檢測試劑盒(批號:20190301)、大鼠腫瘤壞死因子-α(TNF-α)酶聯免疫檢測試劑盒(批號:20190301)、大鼠前列腺素E2(PGE2)酶聯免疫檢測試劑盒(批號:20190301)、超氧化物歧化酶(SOD)測定試劑盒(批號:20190301)、丙二醛(MDA)測試盒(批號:20190227)均購自南京建成生物工程研究所;氯化鈉注射液(批號:1805090401)購自吉林省都邦藥業股份有限公司。

1.3 儀器

FS40-8B1電風扇(美的環境電器制造有限公司);FS40-301電風扇(佛山市順德區晟亞電器有限公司);DK-98-ⅡA水浴鍋(天津市泰斯特儀器有限公司);DHG-9245A鼓風干燥箱(上海一恒科學儀器有限公司);Spectra Max Plus 384型酶標儀(美國美谷分子儀器有限公司);JY2003電子天平(上海舜宇恒平科學儀器有限公司);TDZ5-WS臺式低速多管自動平衡離心機(長沙維爾康湘鷹離心機有限公司)。

2 方法

2.1 給藥劑量

按照活絡止痛丸產品說明書用法與用量要求,口服,一次4 g,一日3次。每人按平均60 kg計算為0.2 g/kg/d/人,折算大鼠給藥劑量為1.25 g/kg,故設立低劑量(1.25 g/kg)和高劑量(2.5 g/kg)。

按照萬通筋骨片(陽性藥)產品說明書用法與用量要求,口服,每片0.28 g,一次2片,一日2~3次。每人按平均60 kg計,每天口服6片算為0.028 g/kg/d/人,折算大鼠給藥劑量為0.175 g/kg。

2.2 建立風濕痹證模型[1-7]

風寒濕痹模型:Wistar大鼠隨機分為空白組、風寒濕痹模型組、萬通筋骨片、活絡止痛丸高劑量與低劑量組,共5組,每組10只。除空白組外,其余各組大鼠在造模的第1天,每只大鼠注射弗氏完全佐劑0.1 mL于左后足跖皮內1次,造模7 d后再注射0.1 mL加強免疫,建立佐劑性關節炎大鼠模型,并將大鼠置于5~7 ℃冷水中,水深2 cm,伴以3檔風力,每日1次,每次20 min,連續14 d。自造模第15天起,各給藥組大鼠灌胃給藥,空白組和模型組給予等量生理鹽水灌胃,每日1次,連續21 d。

風濕熱痹模型:Wistar大鼠隨機分為空白組、風濕熱痹模型組、萬通筋骨片、活絡止痛丸高劑量與低劑量組,共5組,每組10只。除空白組外,其余各組大鼠在造模的第1天,每只大鼠注射弗氏完全佐劑0.1 mL于左后足跖皮內1次,造模7 d后再注射0.1 mL加強免疫,建立佐劑性關節炎大鼠模型,并將大鼠置于36~38 ℃熱水中,水深2 cm,伴以3檔風力,同時給予37 ℃水浴恒溫熱蒸汽熏蒸,每日1次,每次20 min,連續14 d。自造模第15天起,各給藥組大鼠灌胃給藥,空白組和模型組給予等量生理鹽水灌胃,每日1次,連續21 d。

2.3 檢測指標及方法

2.3.1 一般狀況觀察 觀察各組大鼠體質量、毛色、活動等情況。

2.3.2 足腫脹度 第35天末次給藥后測定各組大鼠致炎足的足跖容積。

2.3.3 關節炎指數 關節炎評分標準如下:后足無關節炎表現計0分;后足1~2個關節發紅,軟組織腫脹計1分;后足3~4個關節發紅,軟組織腫脹計2分;后足5個或更多關節發紅,軟組織腫脹計3分;后足嚴重關節炎計4分。

2.3.4 大鼠血清TNF-α、IL-1β、PGE2及SOD、MDA水平 第35天末次給藥后1 h,腹主動脈取血,靜置30 min后,3 000 r/min離心10 min,分離血清。用試劑盒測定大鼠血清 TNF-α、IL-1β、PGE2、SOD、MDA的水平,具體操作按說明書步驟進行。

2.4 統計學處理

本研究利用SPSS17.0軟件進行數據統計分析,組間比較采用雙側獨立樣本t檢驗。

3 結果

3.1 一般狀況觀察

在整個實驗過程中,空白組大鼠精神狀態良好,毛發光滑有光澤,活動自如,體重增加較快;風寒濕痹和風濕熱痹模型組大鼠右后足跖致炎后腫脹明顯,毛色泛黃而無光澤,活動減少,精神不振,個別大鼠右后肢足跖及踝關節出現潰爛、脫毛現象,體重增長緩慢;給予萬通筋骨片及活絡止痛丸干預后,上述癥狀均明顯緩解,但模型組基本無變化。

3.2 足腫脹度

與空白組相比,風寒濕痹模型組致炎后足跖容積顯著升高(P<0.001);與風寒濕痹模型相比,活絡止痛丸高劑量組與萬通筋骨片組顯著降低足跖容積(P<0.01,P<0.05),活絡止痛丸低劑量組無顯著性差異(P>0.05)。實驗結果見表1。

與空白組相比,風濕熱痹模型組致炎后足跖容積顯著升高(P<0.001);與風濕熱痹組模型相比,活絡止痛丸高劑量組與萬通筋骨片組顯著降低足跖容積(P<0.05,P<0.05),活絡止痛丸低劑量組無顯著性差異(P>0.05)。實驗結果見表1。

組別給藥劑量(g/kg)足腫脹度(mm)風寒濕痹模型風濕熱痹模型空白組-4.578±0.3084.578±0.308模型組-6.467±0.562???6.471±0.430???萬通筋骨片組0.185.887±0.382#???5.865±0.338#???活絡止痛丸低劑量組1.256.567±0.356???6.691±0.539???活絡止痛丸高劑量組2.505.854±0.256##???5.838±0.293#???

注:與空白組比較:***P<0.001,**P<0.01,*P<0.05;與模型組比較:###P<0.001,##P<0.01,#P<0.05。

3.3 關節炎指數

與空白組相比,風寒濕痹模型組致炎后關節炎指數評分顯著升高(P<0.001);與風寒濕痹模型相比,活絡止痛丸高劑量組與萬通筋骨片組顯著降低關節炎指數評分(P<0.05,P<0.05),活絡止痛丸低劑量組無顯著性差異(P>0.05)。實驗結果見表2。

與空白組相比,風濕熱痹模型組致炎后關節炎指數評分顯著升高(P<0.001);與風濕熱痹模型組相比,活絡止痛丸高劑量組與萬通筋骨片組顯著降低關節炎指數評分(P<0.001,P<0.01),活絡止痛丸低劑量組無顯著性差異(P>0.05)。實驗結果見表2。

組別給藥劑量(g/kg)關節炎指數風寒濕痹模型風濕熱痹模型空白組-00模型組-2.600±0.866???2.900±0.972???萬通筋骨片組0.181.778±0.744#???1.900±0.333##???活絡止痛丸低劑量組1.252.100±0.333???2.500±0.726???活絡止痛丸高劑量組2.501.875±0.000#???1.400±0.500###???

注:與空白組比較:***P<0.001,**P<0.01,*P<0.05;與模型組比較:###P<0.001,##P<0.01,#P<0.05。

3.4 大鼠血清TNF-α、IL-1β、PGE2及SOD、MDA水平

3.4.1 細胞因子TNF-α和IL-1β TNF-α:與空白組相比,風寒濕痹模型組TNF-α水平顯著升高(P<0.05),與風寒濕痹模型組相比,萬通筋骨片、活絡止痛丸低劑量與高劑量組均顯著降低TNF-α水平(P<0.05,P<0.01,P<0.05);與空白組相比,風濕熱痹模型組TNF-α水平顯著升高(P<0.05),與風濕熱痹模型組相比,萬通筋骨片、活絡止痛丸低劑量與高劑量組均顯著降低TNF-α水平(P<0.05,P<0.01,P<0.05)。實驗結果見表3。

IL-1β:與空白組相比,風寒濕痹模型組IL-1β水平顯著升高(P<0.01),與風寒濕痹模型組相比,萬通筋骨片、活絡止痛丸低劑量與高劑量組均顯著降低IL-1β水平(P<0.05,P<0.01,P<0.05);與空白組相比,模型風濕熱痹組IL-1β水平顯著升高(P<0.05),與模型風濕熱痹組相比,萬通筋骨片與活絡止痛丸高劑量組均顯著降低IL-1β水平(P<0.05,P<0.05),活絡止痛丸低劑量組無顯著性差異(P>0.05)。實驗結果見表3。

組別給藥劑量(g/kg)TNF-α(ng/L)風寒濕痹模型風濕熱痹模型IL-1β(ng/L)風寒濕痹模型風濕熱痹模型空白組-155.520±30.806155.520±30.80618.343±5.19818.343±5.198模型組-258.007±102.397?225.613±61.889?25.861±5.357??26.162±7.680?萬通筋骨片組0.18159.766±44.005#162.709±34.756#18.397±5.953#18.367±3.312#活絡止痛丸低劑量組1.25147.470±38.960##125.621±56.151##18.073±4.329##21.610±7.101活絡止痛丸高劑量組2.50158.906±35.065#145.788±45.081#19.736±4.987#18.762±3.452#

注:與空白組比較:***P<0.001,**P<0.01,*P<0.05;與模型組比較:###P<0.001,##P<0.01,#P<0.05。

3.4.2 PGE2 與空白組相比,風寒濕痹模型組PGE2水平顯著升高(P<0.05);與風寒濕痹模型組相比,萬通筋骨片、活絡止痛丸低劑量與高劑量組均顯著降低PGE2水平(P<0.05,P<0.01,P<0.05)。實驗結果見表4。

與空白組相比,風濕熱痹模型組PGE2水平顯著升高(P<0.05);與風濕熱痹模型組相比,萬通筋骨片、活絡止痛丸低劑量與高劑量組均顯著降低PGE2水平(P<0.05,P<0.01,P<0.01)。實驗結果見表4。

3.4.3 SOD和MDA SOD:與空白組相比,風寒濕痹模型組SOD活力顯著降低(P<0.01),與風寒濕痹模型組相比,萬通筋骨片與活絡止痛丸高劑量組顯著升高SOD活力(P<0.05,P<0.05),低劑量無顯著性差異(P>0.05);與空白組相比,風濕熱痹模型組SOD活力顯著降低(P<0.001),與風濕熱痹模型組相比,萬通筋骨片、活絡止痛丸低劑量與高劑量組均顯著升高SOD活力(P<0.01,P<0.05,P<0.01)。實驗結果見表5。

MDA:與空白組相比,風寒濕痹模型組MDA水平顯著升高(P<0.001),與風寒濕痹模型組相比,萬通筋骨片、活絡止痛丸低劑量與高劑量組均顯著降低MDA水平(P<0.001,P<0.001,P<0.001);與空白組相比,風濕熱痹模型組MDA水平顯著升高(P<0.001),與風濕熱痹模型組相比,萬通筋骨片、活絡止痛丸低劑量與高劑量組均顯著降低MDA水平(P<0.05,P<0.001,P<0.01)。實驗結果見表5。

組別給藥劑量(g/kg)PGE2(ng/L)風寒濕痹模型風濕熱痹模型空白組-193.020±38.369193.020±38.369模型組-240.678±25.144?242.463±32.062?萬通筋骨片組0.18195.801±37.863#200.215±28.561#活絡止痛丸低劑量組1.25190.730±33.718##191.571±22.377##活絡止痛丸高劑量組2.50198.518±32.982#186.495±32.609##

注:與空白組比較:***P<0.001,**P<0.01,*P<0.05;與模型組比較:###P<0.001,##P<0.01,#P<0.05。

組別給藥劑量(g/kg)SOD(U/mL)風寒濕痹模型風濕熱痹模型MDA(nmol/mL)風寒濕痹模型風濕熱痹模型空白組-164.342±6.917164.342±6.9173.689±0.3643.689±0.364模型組-144.450±15.191??141.790±9.245???12.035±0.908???11.371±1.531???萬通筋骨片組0.18158.300±8.309#166.183±13.441##6.768±1.285###???8.851±2.565#???活絡止痛丸低劑量組1.25156.925±13.787153.992±11.665#4.849±1.954###5.540±1.705###??活絡止痛丸高劑量組2.50159.573±8.438#158.140±11.233##6.698±1.966###???7.390±2.261##???

注:與空白組比較:***P<0.001,**P<0.01,*P<0.05;與模型組比較:###P<0.001,##P<0.01,#P<0.05。

4 討論

本研究采用弗氏完全佐劑誘導佐劑性關節炎,通過外界施以“風寒濕”和“風濕熱”的致病因素制備風寒濕痹與風濕熱痹兩類病證結合動物模型,觀察活絡止痛丸對風寒濕痹與風濕熱痹模型大鼠的治療作用,并探討其治療風濕痹證的作用機制。試驗結果表明,與風寒濕痹及風濕熱痹模型組相比,活絡止痛丸可顯著降低足腫脹度、關節炎指數、血清IL-1β、TNF-α、PGE2、MDA水平,升高血清SOD水平,對風濕痹證模型大鼠具有治療作用,為臨床合理使用提供了理論依據。

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