吳 琪,吳鴻飛,周敏舒,徐倩霞,楊麗媛,趙宏波,董 彬
(浙江農林大學 風景園林與建筑學院,浙江 杭州311300)
開花是植物生命周期中的重要發育階段,受自身遺傳和外界環境因素的影響[1]。FCA(FLOWERING LOCUS CA)參與擬南芥Arabidopsis thaliana開花調控,通過多腺苷酸化(polyadenylation)和介導FLC(FLOWERING LOCUS C)染色質的組蛋白去甲基化(demethylation)調控開花[2-4]。擬南芥的fca突變后會抑制開花促進因子 FT(FLOWERING LOCUS T)和SOC1(SUPPRESSOR OF OVEREXPRESSION OF CONSTANS)的表達,fca突變體在不同光周期下均表現出晚花表型[5]。另外,FCA可以激活LFY(LEAFY)和AP1(APETALA1)的活性促進擬南芥開花[6]。將水稻 Oryza sativa和巴西橡膠樹 Hevea brasiliensis的FCA基因轉入擬南芥fca突變體,會導致晚花性狀出現逆轉和恢復[7-8]。由此可見,FCA在植物花期調控方面發揮著重要作用。環境溫度影響植物開花時間。植物FCA基因是溫敏途徑(thermosensory pathway)中的重要基因,可響應溫度變化調控植物的花芽分化[9]。與16℃相比,23℃可促進擬南芥FCA的轉錄,使FCA蛋白水平升高,fca突變體對溫度不敏感[10]。FCA通過誘導FT表達在高溫下促進擬南芥開花[11]。與1年生擬南芥相比,一些多年生植物對溫度變化的反應及其對開花的影響表現出多樣性。例如,在多年生擬南芥的1個祖先近源種Boechera stricta中,與18℃相比,25℃處理下開花延遲[12];同樣,在菊花Chrysanthemum morifolium中,也發現夏季溫度升高能延遲菊花開花[13]。目前,對環境溫度調控其開花的機理主要集中于模式植物中,木本植物種類繁多,且開花差異很大,關于木本植物中如何響應環境溫度變化調控開花的機理仍不清楚。本研究通過對桂花Osmanthus fragrans OfFCA基因的同源克隆和定量聚合酶鏈式反應(PCR),分析OfFCA在不同溫度下桂花不同花芽分化時期不同組織中的表達情況,初步探究OfFCA參與桂花花芽分化的調控作用,為桂花的花期調控、遺傳改良以及新品種培育提供一定理論基礎。
從浙江農林大學桂花種質資源圃中,選取株齡相同且生長一致的桂花‘堰虹桂’O.fragtans‘Yanhonggui’,分別于19和25℃處理。當處理0、10、20、30、40、50和60 d時,分別采集‘堰虹桂’的葉和花芽,一部分進行顯微解剖結構觀察;另一部分液氮處理后-80℃凍存,用于基因克隆和定量PCR分析。
1.2.1 石蠟切片制作 石蠟切片制作參照劉濤等[14]的方法。主要步驟包括:①固定。采用體積比為18∶1∶1的700 mL·L-1乙醇、冰乙酸和甲醛將不同時期桂花的樣品固定24 h以上。②切片。將經過脫水、透明、滲蠟、包埋等處理材料進行切片,厚度約12 μm。③染色及觀察。固綠染色后用中性樹脂封片,風干后,于顯微鏡(Axio Imager 2,日本)下觀察。
1.2.2 RNA提取及反轉錄 取花芽分化時期約0.5 g的花芽或葉片,按照RNAprep pure Plant Kit試劑盒說明書提取RNA,RNase-free DNaseⅠ(Takara)去除DNA。cDNA反轉錄參照Reverse Transcriptase MMLV(Takara,大連)說明書,產物儲存于-20℃備用。
1.2.3 桂花OfFCA基因的克隆 通過前期轉錄組獲得的FCA基因Unigene片段設計特異性引物(FCA-F:GCTATTCGTTGGAGGAGTT;FCA-R:GTTGTCTTGCGTAGTTGTC),以反轉錄的cDNA為模板進行PCR擴增, PCR 反應體系如下: 上下游定量引物(10 μmol·L-1)各 1 μL, cDNA 1 μL, 2×SYBR Premix Ex TaqⅡ(Tli RNaseH Plus)10 μL和雙蒸水7 μL。PCR反應條件為:95℃預變性5 min;95℃變性30 s,60℃退火30 s,72℃延伸1 min;35次循環;72℃延伸10 min;4℃保存備用。PCR反應產物經10 mg·g-1瓊脂糖凝膠電泳檢測后回收,純化,連接到pMD18-T載體,轉化大腸埃希菌Escherichia coli DH5α感受態細胞,藍白斑篩選陽性克隆,經PCR鑒定后送上海生工生物科技公司測序。
1.2.4 桂花OfFCA基因及其編碼蛋白的生物信息學分析 將克隆得到的OfFCA基因用DNAMAN軟件進行多重比對序列,使用MEGA 7.0軟件Neighbor-Joining法構建系統發育樹;利用MultiLoc 2軟件(http://abi.inf.uni-tuebingen.de/Services/MultiLoc2)進行亞細胞定位預測;在線工具TMHMM(http://www.cbs.dtu.dk/services/TMHMM/)和 SignalP 5.0(http://www.cbs.dtu.dk/services/SignalP/)分析 OfFCA 蛋白跨膜結構域、信號肽預測;利用ExPASy工具中的SOPMA軟件預測蛋白質二級結構,用SWISS-MODEL(https://swissmodel.expasy.org/)對三級結構進行預測。
1.2.5 實時熒光定量PCR 設計OfFCA熒光定量引物,送上海生工生物科技公司合成。熒光定量PCR反應體系為:SYBR Premix Ex TaqⅡ 10.0 μL,上下游定量引物(OfFCA-F:AGCATGTGTGTCCTGATGGA; OfFCA-R: GCTTATGATGCACCGGTTGT)各 0.8 μL(10 μmol·L-1), cDNA 2.0 μL, 雙蒸水補齊至20.0 μL。反應程序如下:95℃預變性30 s,95℃ 5 s,60℃ 30 s,40個循環;95℃ 15 s,60℃ 1 min,95℃ 30 s,60℃ 15 s。3次生物學重復。采用2-△△CT法[15]計算OfFCA的相對表達量。
同源克隆獲得桂花OfFCA基因cDNA序列,長度為1 319 bp(圖1),開放閱讀框為864 bp,編碼287個氨基酸,基因登錄號為MK737873。通過DNAMAN軟件比對發現:OfFCA與旋花科Convolvulaceae矮牽牛Ipomoea nil的IpFCA-like、茄科Solanaceae馬鈴薯Solanum tuberosum的SoFCA-like、胡麻科Pedaliaceae芝麻Sesamum indicum的SeFCA-like及玄參科Scrophulariaceae溝酸漿Erythranthe guttata的EryFCA和煙草Nicotiana attenuata的NiFCA-like較為相似,其氨基酸序相似度分別為76%、69%、68%、68%和68%(圖2)。
ExPASy軟件結構域預測發現:OfFCA蛋白具有典型的RRM基序和WW結構域(圖2),其相對分子質量為70.6 kD,理論等電點值為5.12。OfFCA蛋白不存在信號肽,亞細胞定位預測顯示:OfFCA蛋白定位于細胞質。蛋白結構三級如圖3所示。親水性指數(GRAVY)為-0.565,表明OfFCA具有較好的親水性。

圖1 桂花OfFCA PCR電泳圖Figure 1 Electrophoretogram of OfFCA gene

圖2 OfFCA與其他物種同源蛋白氨基酸序列比對Figure 2 Comparative analysis of OfFCA protein sequence
用MEGA7.0構建‘堰虹桂’與其他物種FCA之間的系統發育樹(圖4)。結果顯示:OfFCA與木犀科Oleaceae油橄欖Olea europaea的OlFCA和胡麻科芝麻的SeFCA具有較近的親緣關系。

圖3 桂花OfFCA蛋白三級結構預測Figure 3 Tertiary structure prediction for OfFCA protein

圖4 桂花OfFCA系統進化樹Figure 4 Phylogenetic tree based on OfFCA gene
通過對不同溫度下‘堰虹桂’不同花芽分化時期的石蠟切片發現:19℃處理約20 d后,‘堰虹桂’進入花序分化期,約30 d后進入小花分化期,40 d左右進入花萼和花瓣分化期,50 d后進入雄蕊分化期和雌蕊退化分化期。但在25℃處理下,‘堰虹桂’在30 d左右進入花序原基分化期且一直處于該時期(圖5),花芽分化進程顯著延遲。以上現象說明低溫19℃能夠顯著促進‘堰虹桂’的花芽分化進程,從而促進開花時間提前。

圖5 不同溫度處理下‘堰虹桂’花芽分化進程Figure 5 Flower bud differentiation period of Osmanthus fragrans‘Yanhonggui’ under different temperature treatments
FCA基因是植物響應溫度變化調控植物開花的重要基因,對桂花OfFCA基因進行定量表達檢測發現:無論是在葉還是花芽組織中,OfFCA基因在19℃的表達均顯著高于25℃(圖6),這說明OfFCA基因可響應相對低溫19℃的變化,參與調控‘堰虹桂’的花芽分化。

圖6 OfFCA基因在‘堰虹桂’葉和花芽中的表達變化Figure 6 Expression pattern of OfFCA in leaf and flower bud at different temperatures
環境溫度不同于春化作用和冷脅迫,一般處于該物種生理學和非脅迫溫度之間,廣泛影響植物的生長發育。不同物種對環境溫度的響應具有很大差異,例如,在低溫條件下,擬南芥和水稻的開花時間均延遲[16-17],但是在朵麗蝶蘭Doritaenopsis hybrid的研究中,低溫能夠誘導其成花轉變,促進生理生化變化及花芽分化[18]。同時在煙草的研究中,低溫也是促使煙草提前進入花期的重要因素之一[19]。本研究發現:與正常生長溫度25℃相比,相對低溫19℃顯著促進‘堰虹桂’花芽分化進程,使開花時間提前(圖5)。目前,FCA同源基因在擬南芥等多個物種中已克隆得到,但是至今仍沒有桂花OfFCA基因的相關報道。本研究從桂花秋桂品種‘堰虹桂’中分離得到1 319 bp的OfFCA基因(圖1),其開放閱讀框為864 bp,編碼287個氨基酸,基因登錄號為MK737873。與其他物種FCA同源基因類似,OfFCA具有典型的RRM基序和WW結構域,與矮牽牛IpFCA-like的同源性最高(76%),且與其他物種包括馬鈴薯、芝麻、溝酸漿以及煙草的同源性均高達68%以上(圖2)。另外,OfFCA基因與木犀科油橄欖OeFCA和胡麻科芝麻SiFCA關系最近(圖4)。
環境溫度對植物的花芽分化和開花具有重要的影響,其調控機制也存在很大的差異。FCA受轉錄和轉錄后調控,在擬南芥中,與16℃相比,23℃時FCA轉錄和蛋白質水平升高,進而促使成花轉變使花期提前[20]。但在木本植物三葉橙Poncirus trifoliata中,與23℃相比,PtFCA1在較高的環境溫度(27℃)顯著下調,且35S::PtFCA1回補擬南芥fca-1突變體花期顯著提前[21]。在桂花中發現,無論在葉和花芽中,19℃條件下OfFCA基因的表達均顯著高于25℃(圖6)。據此可以推測,OfFCA響應環境溫度變化參與桂花的花芽分化并使開花時間提前。在擬南芥等模式植物中,FCA通過抑制FLC以及SVP(SHORT VEGETATIVE PHASE)基因調控FT和SOC1的表達來促進花芽分化和開花時間[22],但是桂花OfFCA基因是否像模式植物一樣,通過直接調控FLC和SVP基因的表達進而使FT和SOC1蛋白積累促進開花,還有待更進一步的驗證。
目前,關于桂花的開花分子機制的報道比較少[23]。本研究通過對桂花的FCA基因克隆和表達分析,初步探究OfFCA影響環境溫度變化調控桂花花芽分化的分子機制,對桂花的花期調控、遺傳改良以及新品種培育提供一些理論基礎。