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胞質(zhì)Ca2+參與外源H2S促進(jìn)鹽堿脅迫下裸燕麥種子萌發(fā)

2020-03-10 06:37:18劉建新歐曉彬王金成
植物研究 2020年1期
關(guān)鍵詞:影響

劉建新 歐曉彬 王金成

(甘肅省高校隴東生物資源保護(hù)與利用省級重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室/隴東學(xué)院生命科學(xué)與技術(shù)學(xué)院,慶陽 745000)

種子萌發(fā)是作物生活周期的開始,也是抵御環(huán)境脅迫最為脆弱的階段。裸燕麥(Avenanuda)禾本科(Gramineae)燕麥屬(Avena)一年生雜糧作物,在我國北方廣泛種植,土壤較高的鹽堿含量成為其種子萌發(fā)和成苗的重要脅迫因素[1]。硫化氫(Hydrogen sulfide,H2S)是近幾年在植物體內(nèi)發(fā)現(xiàn)的一種新型氣體信號分子,它參與植物生長發(fā)育和逆境響應(yīng)調(diào)節(jié)。如H2S作為下游信號與生長素共同誘導(dǎo)番茄(Lycopersiconesculentum)側(cè)根的形成[2],維持鹽脅迫下紫花苜蓿(Medicagosativa)胞內(nèi)K+/Na+平衡[3],通過減輕光抑制增強(qiáng)黃瓜(Cucumissativus)幼苗的耐冷性[4]等。外源H2S在植物種子萌發(fā)過程中發(fā)揮著重要的調(diào)控作用。研究表明,外源H2S通過提高β-淀粉酶活性促進(jìn)小麥(Triticumaestivum)種子萌發(fā)[5]并提高干旱脅迫下小麥萌發(fā)苗存活率[6];外源H2S還通過促進(jìn)種子吸脹和提高活性氧清除能力緩解干旱對水稻(Oryzasativa)種子萌發(fā)的抑制[7~8];并促進(jìn)銅脅迫小麥萌發(fā)種子淀粉酶和酯酶活性[9];激活鹽脅迫下苜蓿種子萌發(fā)過程中抗氧化酶同工酶活性和提高相應(yīng)轉(zhuǎn)錄物水平[10]。然而,H2S調(diào)控植物種子萌發(fā)對逆境響應(yīng)的信號傳導(dǎo)機(jī)制目前尚不十分清楚。

鈣離子(Ca2+)作為第二信使,參與植物對逆境響應(yīng)的調(diào)節(jié)。植物遭受鹽脅迫時(shí)質(zhì)膜Ca2+/H+反向轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白表達(dá)增強(qiáng)[11],導(dǎo)致細(xì)胞溶質(zhì)Ca2+濃度改變[12],并通過鈣調(diào)蛋白級聯(lián)傳導(dǎo)調(diào)控細(xì)胞的分裂和伸長[13]。有研究表明,Ca2+和H2S通過調(diào)控重金屬離子轉(zhuǎn)運(yùn)蛋白增強(qiáng)谷子(Setariaitalica)對鉻脅迫的耐受性[14];Ca2+還參與H2S調(diào)控的煙草(Nicotianatabacum)耐熱過程[15]及鹽堿脅迫下NO和H2O2對植物種子萌發(fā)的促進(jìn)[16~17]。H2S在調(diào)控植物逆境響應(yīng)過程中與NO、H2O2、Ca2+等信號存在相互作用,如H2S作為H2O2的上游信號促進(jìn)綠豆(Vignaradiata)種子的萌發(fā)[18]等。那么,鹽堿脅迫下H2S能否緩解對作物種子萌發(fā)的抑制,胞質(zhì)Ca2+是否參與這一過程,目前尚未見報(bào)道。本研究以裸燕麥為材料,模擬其在甘肅栽培地的鹽堿環(huán)境,探討胞質(zhì)Ca2+對H2S調(diào)控鹽堿脅迫下種子萌發(fā)的影響,旨為揭示H2S調(diào)控種子萌發(fā)機(jī)制提供理論依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 供試材料

供試裸燕麥品種為“定莜9號”(種子購自甘肅省定西市農(nóng)業(yè)科學(xué)研究院)。H2S供體硫氫化鈉(sodium hydrosulfide,NaHS)、胞外Ca2+螯合劑乙二醇雙(2-氨基乙基醚)四乙酸[ethylene glycol-bis-(2-aminoethylether)-N,N,N′,N′-tetraacetic acid,EGTA]、質(zhì)膜Ca2+通道阻斷劑氯化鑭(lanthanum chloride,LaCl3)、液泡Ca2+釋放抑制劑釕紅(ruthenium red,RR)和內(nèi)質(zhì)網(wǎng)鈣泵阻斷劑毒胡蘿卜素(thapsigargin,Thaps)均為美國Sigma公司產(chǎn)品。參考文獻(xiàn)[16~17,19]及預(yù)實(shí)驗(yàn)篩選,所用EGTA、LaCl3、RR和Thaps濃度分別為5 mmol·L-1、10 μmol·L-1、0.2 mmol·L-1和15 μmol·L-1。模擬甘肅省中部裸燕麥種植地鹽堿組成,按NaCl∶Na2SO4∶Na2CO3∶NaHCO3摩爾比為12∶8∶1∶9配制不同濃度的鹽堿混合溶液。

1.2 種子發(fā)芽試驗(yàn)

1.2.1 鹽堿脅迫濃度和NaHS濃度篩選

挑選100粒裸燕麥健康種子,均勻擺放在直徑120 mm的培養(yǎng)皿中,濾紙作萌發(fā)床,分別加入6 mL濃度為15、30、45、60、75 mmol·L-1的鹽堿混合溶液或100、200、400、600、800、1 000 μmol·L-1的NaHS溶液,以加等量蒸餾水作對照,在培養(yǎng)箱中20℃培養(yǎng),3次重復(fù)。以胚芽突破種皮2 mm為發(fā)芽標(biāo)準(zhǔn),每隔12 h統(tǒng)計(jì)發(fā)芽數(shù),共統(tǒng)計(jì)7 d。篩選適宜的鹽堿脅迫濃度和促進(jìn)種子萌發(fā)的NaHS濃度。

1.2.2 鹽堿脅迫、NaHS和胞質(zhì)Ca2+抑制劑交叉試驗(yàn)

以篩選的鹽堿脅迫濃度溶液、NaHS濃度溶液與LaCl3、EGTA、RR、Thaps進(jìn)行單一或交叉處理,蒸餾水作對照,用1.2.1發(fā)芽方法觀察對裸燕麥種子萌發(fā)的影響,重復(fù)3次。

發(fā)芽試驗(yàn)7 d結(jié)束后測量胚根、胚芽長度和各自干重,方法見文獻(xiàn)[17]。然后分別計(jì)算發(fā)芽勢、發(fā)芽率、發(fā)芽指數(shù)、活力指數(shù)、平均發(fā)芽速率。

發(fā)芽勢(%)=發(fā)芽前3 d種子發(fā)芽數(shù)/供試種子數(shù)×100

(1)

發(fā)芽率(%)=發(fā)芽7 d后種子發(fā)芽數(shù)/供試種子數(shù)×100

(2)

發(fā)芽指數(shù)(GI)=∑Gt/Dt

(3)

式中:Gt為t天的種子發(fā)芽數(shù);Dt為相應(yīng)發(fā)芽天數(shù)。

活力指數(shù)(VI)=GI×S

(4)

式中:S為胚根和胚芽干重之和。

平均發(fā)芽速率(GV)=∑(D·n)/∑n

(5)

式中:D為種子置床起的天數(shù),n為相應(yīng)各天發(fā)芽的種子數(shù)。

1.3 數(shù)據(jù)計(jì)算與統(tǒng)計(jì)分析

為綜合評價(jià)不同處理對種子萌發(fā)的影響,用公式U(Xi)=(Xi-Xmin)/(Xmax-Xmin)計(jì)算發(fā)芽勢、發(fā)芽率、發(fā)芽指數(shù)、活力指數(shù)、平均發(fā)芽速率、胚根長和胚芽長的隸屬函數(shù)值:

U(Xi),i=1,2,3,…,n

(6)

式中:Xi為發(fā)芽指標(biāo)值;Xmin和Xmax為不同處理下相應(yīng)發(fā)芽指標(biāo)的最小值和最大值。

每一發(fā)芽指標(biāo)的權(quán)重應(yīng)用客觀賦權(quán)法進(jìn)行計(jì)算:

Ij=Sj/Cj

(7)

式中:Ij是一個(gè)無量綱數(shù);Sj是不同處理某一發(fā)芽指標(biāo)的隸屬函數(shù)值U(Xi);Cj是對照組某一發(fā)芽指標(biāo)隸屬函數(shù)值U(Xi)的均值。

最后通過歸一化計(jì)算出每個(gè)發(fā)芽指標(biāo)的權(quán)重Wj=Ij/∑Ij,隸屬函數(shù)綜合評價(jià)值D=[U(Xi)×Wj]。百分率數(shù)據(jù)均經(jīng)反正弦平方根轉(zhuǎn)換(y=arc sin[sqrt(x/100)]),采用SPSS 20.0軟件對所有數(shù)值進(jìn)行單因素方差分析,SSR法差異顯著性檢驗(yàn)(顯著性水平α=0.05)。所有數(shù)據(jù)結(jié)果以平均值±標(biāo)準(zhǔn)誤表示。

2 結(jié)果與分析

2.1 不同濃度鹽堿脅迫對裸燕麥種子萌發(fā)的影響

隨著鹽堿脅迫濃度增大,裸燕麥種子萌發(fā)受到明顯抑制,其發(fā)芽勢、發(fā)芽率、發(fā)芽指數(shù)、活力指數(shù)、平均發(fā)芽速率、胚根長和胚芽長顯著下降(表1)。與0 mmol·L-1對照相比,15 mmol·L-1鹽堿脅迫除平均發(fā)芽速率外即引起其他發(fā)芽指標(biāo)的顯著下降,當(dāng)鹽堿濃度為75 mmol·L-1時(shí)發(fā)芽勢、發(fā)芽率、發(fā)芽指數(shù)、活力指數(shù)、平均發(fā)芽速率、胚根長和胚芽長分別下降了87.4%、77.0%、89.3%、95.4%、83.0%、78.4%和44.2%。

表1 不同濃度鹽堿脅迫對裸燕麥種子萌發(fā)的影響

注:同列不同字母表示處理間差異顯著(P<0.05),下同。

Note:Different letters in the same column indicate significant difference between treatments atP<0.05,the same as below.

圖1 鹽堿脅迫下裸燕麥種子萌發(fā)的隸屬函數(shù)綜合評價(jià)值 不同字母表示處理間差異顯著(P<0.05),下同。Fig.1 The comprehensive evaluation value of membership function for seed germination of naked oat under saline-alkali stress Different letters indicate significant difference at P<0.05,the same as below.

不同發(fā)芽指標(biāo)對鹽堿脅迫濃度的響應(yīng)存在差異,為綜合反映鹽堿濃度對裸燕麥種子萌發(fā)的影響,采用隸屬函數(shù)方法計(jì)算的上述發(fā)芽指標(biāo)綜合評價(jià)值D隨鹽堿濃度的變化如圖1。從圖1可知,與0 mmol·L-1對照相比,15 mmol·L-1鹽堿脅迫引起D值顯著降低38.5%; 30 mmol·L-1處理D值降幅達(dá)73.1%,且與15 mmol·L-1處理的D值差異顯著;45~75 mmol·L-1處理的D值降幅為89.9%~97.9%。因此,選用30 mmol·L-1作為進(jìn)一步實(shí)驗(yàn)的鹽堿脅迫濃度。

2.2 不同濃度NaHS對鹽堿脅迫下裸燕麥種子萌發(fā)的影響

圖2A顯示,與0 μmol·L-1對照相比,100~1 000 μmol·L-1NaHS處理的裸燕麥種子萌發(fā)D值均有不同程度提高,其中200~800 μmol·L-1處理的差異顯著,而1 000 μmol·L-1處理的D值顯著低于200~800 μmol·L-1處理的D值并與100 μmol·L-1處理的D值差異不顯著。因此,用100~800 μmol·L-1NaHS分別與30 mmol·L-1鹽堿溶液共處理觀察對種子萌發(fā)的影響。結(jié)果如圖2B所示:100 μmol·L-1NaHS與鹽堿溶液共處理(C處理)的D值顯著高于單獨(dú)鹽堿溶液處理(B處理),200、400和600 μmol·L-1NaHS與鹽堿溶液共處理(D、E、F)的D值與單獨(dú)鹽堿溶液處理(B)或C處理的D值差異不顯著,而800 μmol·L-1NaHS與鹽堿溶液共處理(G處理)的D值則顯著降低。表明外源H2S可緩解鹽堿脅迫對裸燕麥種子萌發(fā)的抑制,其中100 μmol·L-1NaHS的效果最好。

圖2 不同濃度NaHS(A)及NaHS與30 mmol·L-1鹽堿溶液共處理(B)對裸燕麥種子萌發(fā)的影響 A.對照;B.鹽堿脅迫;C.鹽堿脅迫+100 μmol·L-1 NaHS;D.鹽堿脅迫+200 μmol·L-1 NaHS;E.鹽堿脅迫+400 μmol·L-1 NaHS;F.鹽堿脅迫+600 μmol·L-1 NaHS;G.鹽堿脅迫+800 μmol·L-1 NaHSFig.2 Effects of different concentrations of NaHS and the co-treatment of NaHS and saline-alkali solution(30 mmol·L-1) on seed germination of naked oatA.Control;B.Saline-alkali stress;C.Saline-alkali stress+100 μmol·L-1 NaHS;D.Saline-alkali stress+200 μmol·L-1 NaHS;E.Saline-alkali stress+400 μmol·L-1 NaHS;F.Saline-alkali stress+600 μmol·L-1 NaHS;G.Saline-alkali stress+800 μmol·L-1 NaHS

圖3 EGTA對H2S促進(jìn)鹽堿脅迫下裸燕麥種子萌發(fā)的影響 A.對照Control;B.EGTA;C.NaHS;D.NaHS+EGTA;E.鹽堿脅迫;F.鹽堿脅迫+EGTA;G.鹽堿脅迫+NaHS;H.鹽堿脅迫+NaHS+EGTAFig.3 Effects of EGTA on seed germination of naked oat promoted by H2S under saline-alkali stress A.Control; B.EGTA; C.NaHS; D.NaHS+EGTA; E.Saline-alkali stress; F.Saline-alkali stress+EGTA; G.Saline-alkali stress+NaHS; H.Saline-alkali stress+NaHS+EGTA

2.3 EGTA對H2S促進(jìn)鹽堿脅迫下裸燕麥種子萌發(fā)的影響

與對照(A)相比,EGTA處理(B)使D值顯著下降了22.9%。EGTA與NaHS共處理(D)的D值顯著低于單獨(dú)NaHS處理(C);EGTA與鹽堿脅迫共處理(F)的D值顯著低于單獨(dú)鹽堿脅迫處理(E)。鹽堿脅迫導(dǎo)致D值顯著下降(E與A相比),增添NaHS顯著提高鹽堿脅迫下的D值(G與E相比),EGTA顯著逆轉(zhuǎn)NaHS提高鹽堿脅迫下D值的作用(H與G相比)。EGTA是胞外Ca2+專一性螯合劑(圖3)。上述結(jié)果表明,胞外Ca2+水平下降顯著降低H2S對鹽堿脅迫下裸燕麥種子萌發(fā)的促進(jìn)作用。

圖4 LaCl3對H2S促進(jìn)鹽堿脅迫下裸燕麥種子萌發(fā)的影響 A.對照;B.LaCl3;C.NaHS;D.NaHS+LaCl3;E.鹽堿脅迫;F.鹽堿脅迫+LaCl3;G.鹽堿脅迫+NaHS;H.鹽堿脅迫+NaHS+LaCl3Fig.4 Effect of LaCl3 on seed germination of naked oat promoted by H2S under saline-alkali stress A.Control; B.LaCl3; C.NaHS; D.NaHS+LaCl3; E.Saline-alkali stress; F.Saline-alkali stress+LaCl3; G.Saline-alkali stress+NaHS; H.Saline-alkali stress+NaHS+LaCl3

圖5 RR對H2S促進(jìn)鹽堿脅迫下裸燕麥種子萌發(fā)的影響 A.對照;B.RR;C.NaHS;D.NaHS+RR;E.鹽堿脅迫;F.鹽堿脅迫+RR;G.鹽堿脅迫+NaHS;H.鹽堿脅迫+NaHS+RRFig.5 Effect of RR on seed germination of naked oat promoted by H2S under saline-alkali stress A.Control; B.RR; C.NaHS; D.NaHS+RR; E.Saline-alkali stress; F.Saline-alkali stress+RR; G.Saline-alkali stress+NaHS; H.Saline-alkali stress+NaHS+RR

2.4 LaCl3對H2S促進(jìn)鹽堿脅迫下裸燕麥種子萌發(fā)的影響

由圖4可知,與對照(A)相比,LaCl3處理(B)顯著降低了D值。LaCl3與鹽堿脅迫共處理(F)的D值顯著低于單獨(dú)鹽堿脅迫處理(E)。LaCl3顯著消減NaHS對鹽堿脅迫下D值的提升作用(H與G相比)。LaCl3阻斷胞外Ca2+的內(nèi)流。說明限制胞外Ca2+向胞內(nèi)的流動將抑制H2S對鹽堿脅迫下裸燕麥種子萌發(fā)的促進(jìn)作用。

2.5 釕紅對H2S促進(jìn)鹽堿脅迫下裸燕麥種子萌發(fā)的影響

由圖5可知,與對照(A)相比,釕紅RR處理(B)使D值顯著下降,NaHS處理下增添RR也使D值顯著降低(D與C相比)。鹽堿脅迫下增添RR導(dǎo)致D值有所下降(F與E相比),且NaHS提高鹽堿脅迫下D值(G與E相比)的作用,在添加RR后被完全逆轉(zhuǎn)(H與G相比)。RR抑制液泡Ca2+向胞質(zhì)的釋放。表明阻斷液泡Ca2+向胞質(zhì)的轉(zhuǎn)移將降低H2S對鹽堿脅迫下裸燕麥種子萌發(fā)的促進(jìn)作用。

2.6 Thaps對H2S促進(jìn)鹽堿脅迫下裸燕麥種子萌發(fā)的影響

毒胡蘿卜素Thaps處理(B)與對照(A)相比,D值顯著下降。NaHS處理下添加Thaps也使D值顯著降低(D與C相比)。但鹽堿脅迫下添加Thaps處理(F)的D值與單獨(dú)鹽堿脅迫處理(E)的D值差異不顯著;NaHS提高鹽堿脅迫下D值(G與E比較)的作用在增添Thaps后也無顯著影響(H與G相比)(圖6)。Thaps是內(nèi)質(zhì)網(wǎng)鈣泵阻斷劑,單向抑制胞質(zhì)Ca2+向內(nèi)質(zhì)網(wǎng)的轉(zhuǎn)運(yùn),從而誘導(dǎo)胞質(zhì)Ca2+濃度的提高。表明阻斷胞質(zhì)Ca2+向內(nèi)質(zhì)網(wǎng)的轉(zhuǎn)運(yùn)對H2S促進(jìn)鹽堿脅迫下裸燕麥種子萌發(fā)的影響不大。

圖6 Thaps對H2S促進(jìn)鹽堿脅迫下裸燕麥種子萌發(fā)的影響 A.對照;B.Thaps;C.NaHS;D.NaHS+Thaps;E.鹽堿脅迫;F.鹽堿脅迫+Thaps;G.鹽堿脅迫+NaHS;H.鹽堿脅迫+NaHS+ThapsFig.6 Effect of thapsigargin(Thaps) on seed germination of naked oat promoted by H2S under saline-alkali stress A.Control; B.Thaps; C.NaHS; D.NaHS+Thaps; E.Saline-alkali stress; F.Saline-alkali stress+Thaps; G.Saline-alkali stress+NaHS; H.Saline-alkali stress+NaHS+Thaps

3 討論

種子萌發(fā)是植物完成生活周期的關(guān)鍵,也是對鹽堿脅迫最敏感的時(shí)期。已有的研究多以單一或少數(shù)萌發(fā)指標(biāo)來反映鹽堿脅迫的影響[1,16]。本研究模擬甘肅鹽堿地鹽分組成,以發(fā)芽勢、發(fā)芽率、發(fā)芽指數(shù)、活力指數(shù)、平均發(fā)芽速率、胚根長和胚芽長七項(xiàng)發(fā)芽指標(biāo),采用隸屬函數(shù)綜合評價(jià)鹽堿脅迫對裸燕麥種子萌發(fā)的影響。結(jié)果表明,裸燕麥種子的發(fā)芽勢、發(fā)芽率、發(fā)芽指數(shù)、活力指數(shù)、平均發(fā)芽速率、胚根長和胚芽長隨鹽堿脅迫強(qiáng)度提高明顯下降(表1),隸屬函數(shù)綜合評價(jià)值D顯著降低(圖1),其中30 mmol·L-1鹽堿脅迫的種子發(fā)芽率下降至對照的54.4%,D值降至對照的26.9%,表明鹽堿混合脅迫顯著抑制裸燕麥種子的萌發(fā)。這與前人以單一鹽脅迫抑制燕麥種子萌發(fā)的研究結(jié)果類似[1],但鹽堿混合脅迫對種子萌發(fā)的抑制程度更大。

H2S作為植物內(nèi)源新型氣體信號分子,參與植物種子萌發(fā)過程的調(diào)控[3]。外源H2S供體NaHS處理可緩解干旱脅迫對小麥[6]和水稻[7~8]種子萌發(fā)的抑制。10~130 μmol·L-1NaHS浸種能不同程度緩解100 mmol·L-1NaCl脅迫下小麥種子萌發(fā)指數(shù)和幼苗生長量的下降,其中以50 μmol·L-1NaHS的作用效果最好[20]。本試驗(yàn)表明,100~1 000 μmol·L-1NaHS能不同程度增強(qiáng)裸燕麥種子萌發(fā)的隸屬函數(shù)綜合評價(jià)值D(圖2A),30 mmol·L-1鹽堿脅迫下外施100~800 μmol·L-1NaHS不同程度提高了裸燕麥種子萌發(fā)的D值(圖2B),其中100 μmol·L-1NaHS的效果最好。說明適宜濃度的H2S能夠緩解鹽堿脅迫對裸燕麥種子萌發(fā)的抑制。其原因一方面可能與外源H2S能夠提高脅迫條件下萌發(fā)種子淀粉酶和酯酶活性、增強(qiáng)種子抗氧化能力有關(guān)[21];另一方面可能是H2S能夠抑制鹽誘導(dǎo)的K+外流和增強(qiáng)Na+外排,維持K+/Na+平衡,從而減輕鹽離子毒害所致[22]。有研究表明,H2S通過NO途徑提高紫花苜蓿種子萌發(fā)過程中對鹽脅迫的耐受性[10];NO促進(jìn)干旱脅迫下紫花苜蓿種子萌發(fā)的過程通過Ca2+信號傳導(dǎo)通路[23];鹽脅迫下NO促進(jìn)玉米種子萌發(fā)的過程有Ca2+參與[16];Ca2+也參與H2O2對鹽堿脅迫下裸燕麥種子萌發(fā)的促進(jìn)[17]。而H2S調(diào)控植物種子萌發(fā)對逆境響應(yīng)的過程通常與NO、H2O2及Ca2+等信號存在“交叉對話”[18];H2S和植物激素脫落酸(ABA)在調(diào)節(jié)植物根生長和氣孔運(yùn)動中也相互影響[24]。那么,胞質(zhì)Ca2+濃度改變對H2S促進(jìn)鹽堿脅迫下裸燕麥種子萌發(fā)的作用有無影響,本研究利用藥理學(xué)實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn),在100 μmol·L-1NaHS顯著促進(jìn)30 mmol·L-1鹽堿脅迫下裸燕麥種子萌發(fā)的過程中,當(dāng)分別添加EGTA(胞外Ca2+螯合劑)、氯化鑭(細(xì)胞膜Ca2+通道阻斷劑)和釕紅(液泡Ca2+釋放抑制劑)后均顯著逆轉(zhuǎn)了NaHS的作用(圖3~5),而添加毒胡蘿卜素(內(nèi)質(zhì)網(wǎng)鈣泵阻斷劑)對NaHS的作用無顯著影響(圖6)。說明胞質(zhì)Ca2+參與H2S促進(jìn)鹽堿脅迫下裸燕麥種子萌發(fā)的信號傳導(dǎo)過程,且胞質(zhì)Ca2+主要來源于胞外Ca2+的內(nèi)流和液泡中Ca2+的釋放。

Knight[25]指出,鹽脅迫引發(fā)的細(xì)胞質(zhì)Ca2+增加除來自胞外Ca2+內(nèi)流外還有三磷酸肌醇(inositol 1,4,5-triphosphate,IP3)介導(dǎo)的液泡Ca2+的釋放。李洪旺等[19]研究表明,H2S通過促進(jìn)胞外Ca2+內(nèi)流和胞內(nèi)鈣庫Ca2+釋放提高了保衛(wèi)細(xì)胞胞質(zhì)Ca2+濃度,從而促進(jìn)H2O2產(chǎn)生,誘導(dǎo)擬南芥氣孔關(guān)閉。H2S增強(qiáng)擬南芥根系耐鹽性需要H2O2的參與[26]。液泡膜上Ca2+通道有2種:一種是受IP3調(diào)節(jié)的Ca2+通道;另一種是受電壓門控的Ca2+通道[27]。在谷子響應(yīng)鉻離子(Cr6+)脅迫的過程中,胞內(nèi)H2S的產(chǎn)生受Ca2+調(diào)控,并以H2S依賴方式增強(qiáng)重金屬螯合劑編碼基因的表達(dá),外施H2S促進(jìn)Ca2+感知基因的表達(dá)[14,28]。而H2S緩解鹽堿脅迫對植物種子萌發(fā)抑制的過程中是如何調(diào)控質(zhì)膜Ca2+內(nèi)流以及通過什么方式調(diào)節(jié)液泡膜Ca2+釋放通道,外施H2S是否也通過提高內(nèi)源H2S含量增強(qiáng)Ca2+感知基因表達(dá)以及這些過程中是否有H2O2等信號的介導(dǎo)等問題尚需進(jìn)一步探究。

綜上所述,外源H2S能夠促進(jìn)鹽堿脅迫下裸燕麥種子的萌發(fā);限制胞外Ca2+內(nèi)流和液泡Ca2+向胞質(zhì)釋放將消減H2S對鹽堿脅迫下裸燕麥種子萌發(fā)的促進(jìn)作用。表明胞質(zhì)Ca2+參與外源H2S促進(jìn)鹽堿脅迫下裸燕麥種子萌發(fā)過程的調(diào)控。

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