項(xiàng)洪濤,李 琬,鄭殿峰,王詩(shī)雅,何 寧,王曼力,王彤彤,楊純杰,李 博
(1.黑龍江省農(nóng)業(yè)科學(xué)院耕作栽培研究所,黑龍江 哈爾濱 150086;2. 廣東海洋大學(xué)濱海農(nóng)業(yè)學(xué)院,廣東 湛江 524088;3.黑龍江八一農(nóng)墾大學(xué)農(nóng)學(xué)院,黑龍江 大慶 163319)
小豆(Vignaangularis),又名紅豆、赤小豆、紅小豆等,是豆科豇豆屬一年生草本植物,屬藥食兼用作物。小豆對(duì)環(huán)境的適應(yīng)性很強(qiáng),在瘠薄地、鹽堿地、干旱地均可生長(zhǎng),是喜溫喜光不耐冷、短日照作物,在東亞地區(qū)有較長(zhǎng)的栽培歷史[1]。溫度是作物生長(zhǎng)的重要環(huán)境條件,每種植物都有其獨(dú)特的最佳生育溫度,小豆對(duì)溫度條件較為敏感,最適生育溫度是20℃~24℃,低于該溫度即發(fā)生低溫脅迫甚至產(chǎn)生冷害[2]。低溫在植物生長(zhǎng)的不同時(shí)期均可能發(fā)生,并對(duì)農(nóng)業(yè)可持續(xù)發(fā)展造成嚴(yán)重威脅[3]。小豆因其遺傳特性,子葉不出土,所以在種子萌發(fā)和幼苗建植期活力較弱,對(duì)低溫的抵御和適應(yīng)能力差,更容易受到低溫傷害。低溫影響植物生長(zhǎng)和代謝,使植株體內(nèi)活性氧(reactive oxygen species,ROS)自由基大量積累,植物通過(guò)體內(nèi)的防御機(jī)制能夠清除一部分ROS,但未被及時(shí)清除的ROS積累在植物體內(nèi),加劇植物細(xì)胞膜脂過(guò)氧化傷害,并對(duì)細(xì)胞膜系統(tǒng)產(chǎn)生損害[4],破壞作物正常的理化代謝功能和途徑,最終造成作物減產(chǎn)。
植物內(nèi)源激素調(diào)控植物的生長(zhǎng)及對(duì)逆境的應(yīng)答[5]。ABA是20世紀(jì)60年代發(fā)現(xiàn)和鑒定出的一種植物內(nèi)源激素,在植物對(duì)脅迫耐受性和抗性中發(fā)揮著重要作用。外源激素通過(guò)改變內(nèi)源激素水平調(diào)節(jié)植物生理代謝,低溫脅迫下外源ABA能夠促進(jìn)植物體內(nèi)ABA的合成和運(yùn)輸[6],進(jìn)而調(diào)控植物的抗逆性。項(xiàng)洪濤等[7]研究得出,外源ABA能夠提高低溫脅迫下植物體內(nèi)SOD、POD以及CAT的活性,并可同時(shí)提高脯氨酸、可溶性糖等可溶類物質(zhì)的含量,抵御低溫傷害。李平等[8]研究得出低溫條件下外源ABA能夠降低黃瓜葉片內(nèi)MDA的積累,緩解脅迫。方彥等[9]研究得出,外源ABA能提高油菜種子的抗氧化酶活性,同時(shí)減緩膜質(zhì)過(guò)氧化物MDA的積累,具有提高作物抗寒性的誘導(dǎo)效應(yīng)。Xiang等[10]研究表明,低溫條件下外源ABA能提高水稻葉片內(nèi)脯氨酸、可溶性糖和可溶性蛋白含量,有效提高SOD、POD和CAT活性,增強(qiáng)水稻的抗冷性。蒲高斌等[11]研究得出低溫脅迫下外源ABA能有效提高西瓜幼苗葉片中SOD和CAT活性、降低MDA的積累,維持膜的完整性,同時(shí)促進(jìn)滲透保護(hù)物質(zhì)脯氨酸和可溶性糖的增加,增強(qiáng)植株的抗寒性,同時(shí)也表明這是外源ABA有效提高西瓜幼苗抗冷性、減輕低溫對(duì)西瓜苗傷害的主要生理基礎(chǔ)。但鮮有關(guān)于外源ABA提高小豆幼苗抗性的報(bào)道。葉片是小豆重要的光合器官,起到合成并供給同化產(chǎn)物的重要作用,當(dāng)小豆受到低溫脅迫時(shí),葉片的光合能力首先會(huì)遭受影響,對(duì)養(yǎng)分供給、生理代謝都會(huì)產(chǎn)生阻礙并影響幼苗建植,最終導(dǎo)致產(chǎn)量下降。本試驗(yàn)于幼苗期對(duì)小豆進(jìn)行低溫處理,開(kāi)展低溫脅迫下ABA對(duì)小豆葉片抗逆生理及產(chǎn)量的影響研究,旨在分析外源ABA抵御小豆苗期低溫的作用,豐富東北地區(qū)小豆抗冷技術(shù)工程體系,為小豆耐冷栽培、高產(chǎn)優(yōu)質(zhì)生產(chǎn)提供理論支持。
小豆試驗(yàn)品種選用龍小豆4號(hào)和天津紅。龍小豆4號(hào)為耐冷品種,天津紅為冷敏品種。供試材料由國(guó)家食用豆產(chǎn)業(yè)技術(shù)體系蕓豆育種崗位專家魏淑紅研究員饋贈(zèng)。
供試植物外源激素為ABA,由國(guó)家食用豆產(chǎn)業(yè)技術(shù)體系栽培生理崗位實(shí)驗(yàn)室提供。
試驗(yàn)于2019年4月30日和5月25日在黑龍江省農(nóng)業(yè)科學(xué)院耕作栽培研究所盆栽場(chǎng)及人工氣候室內(nèi)進(jìn)行接種,開(kāi)展2次重復(fù)性試驗(yàn),由于2次試驗(yàn)規(guī)律一致,本研究選用4月30日播種試驗(yàn)所測(cè)數(shù)據(jù)。采用盆栽方式,試驗(yàn)用盆高30 cm、直徑25 cm,每盆裝自然風(fēng)干壤土7.0 kg,播種后覆土200 g,每盆保苗15株(5穴×3株)。試驗(yàn)用土取自哈爾濱市道外區(qū)民主鄉(xiāng),土壤類型為草甸黑土。供試土壤的理化性質(zhì):土壤容重約為1.72 g·cm-3,最大田間持水量約為25.65%,有機(jī)質(zhì)含量26.3 g·kg-1、全氮1.46 mg·g-1、全磷0.66 mg·g-1、緩效鉀325.7 mg·kg-1、堿解氮0.165 g·kg-1、速效磷41.25 mg·kg-1、速效鉀156.7 mg·kg-1、土壤pH 6.69。4月18日播種(陽(yáng)光型人工氣候室內(nèi)播種,哈爾濱地區(qū)4月中旬室外溫度相對(duì)偏低,不利出苗),每品種分別播種75桶,選取長(zhǎng)勢(shì)均勻的樣本進(jìn)行試驗(yàn),試驗(yàn)共設(shè)6個(gè)處理,每個(gè)處理設(shè)3次重復(fù),具體設(shè)計(jì)見(jiàn)表1。待植株生長(zhǎng)至幼苗期時(shí)(4月30日,此時(shí)真葉完全展開(kāi),第一片復(fù)葉露頭)進(jìn)行低溫處理,處理溫度為恒定4℃。進(jìn)行低溫處理當(dāng)天上午10∶00,采取葉面噴施方式施用外源ABA,使用濃度為20 mg·L-1(該濃度系課題組前期濃度比較試驗(yàn)所得),折合用液量為22.5 mL·m-2。噴施完畢后,于當(dāng)晚20∶30進(jìn)入事先預(yù)冷的人工氣候室冷房?jī)?nèi)進(jìn)行低溫處理,持續(xù)時(shí)間為12 h,CK處理溫度為人工氣候室內(nèi)自然溫度(當(dāng)日夜間溫度為17℃),次日上午8∶30停止低溫處理。并進(jìn)行第一次取樣,之后每天上午8∶30取樣,共取樣5次,記為取樣第1~5天。

表1 試驗(yàn)設(shè)計(jì)方案
1.3.1 取樣方法 低溫處理后,連續(xù)取樣5次,每天上午8∶30取樣一次,各處理分別進(jìn)行取樣,將小豆植株葉片迅速剪下裝入標(biāo)記好的自封袋內(nèi),并立即放入液氮中,而后置于-80℃冰箱中保存,供測(cè)定生理指標(biāo)使用。
待到5月15日,各處理分別移至室外盆栽場(chǎng)10盆,每日觀察并進(jìn)行間苗、拔草等,最終每桶保苗5株(5穴×1株),根據(jù)實(shí)際氣溫和降雨情況,適時(shí)澆水直至成熟,進(jìn)行產(chǎn)量調(diào)查。
1.3.2 測(cè)定方法 采用氮藍(lán)四唑(NBT)法測(cè)定超氧化物歧化酶(SOD)活性,愈創(chuàng)木酚法測(cè)定過(guò)氧化物酶(POD)活性,采用分解過(guò)氧化氫含量速率法測(cè)定過(guò)氧化氫酶(CAT)活性,采用硫代巴比妥酸(TBA)法測(cè)定丙二醛(MDA)含量,可溶性蛋白含量的測(cè)定采用考馬斯亮藍(lán)G-250染色法;具體操作規(guī)程按照李合生等[12]的方法;可溶性糖含量測(cè)定采用硫酸蒽酮比色法,脯氨酸含量測(cè)定采用茚三酮比色法;具體操作規(guī)程按照張憲政等[13]的方法。
試驗(yàn)所有數(shù)據(jù)利用Excel 2010進(jìn)行處理和作圖,使用DPS軟件進(jìn)行顯著性差異分析。
2.1.1 對(duì)葉片H2O2含量的影響 由圖1可知,幼苗期低溫處理后,隨著取樣時(shí)間的延續(xù)小豆葉片H2O2含量呈下降趨勢(shì)。第1天取樣,龍小豆4號(hào)H2O2含量的高低順序?yàn)門2>T3>T1,其中T2較T1高34.82%,T3較T2低7.63%,方差分析結(jié)果表明各處理間差異極顯著;天津紅H2O2含量的高低順序?yàn)門5>T6>T4,其中T5較T4高27.10%,T6較T5低8.36%,方差分析結(jié)果表明各處理間差異也達(dá)到極顯著水平。第2天取樣,龍小豆4號(hào)H2O2含量的高低順序?yàn)門2>T3>T1,方差分析結(jié)果表明T2極顯著高于T1、顯著高于T3,但T1和T3之間沒(méi)有顯著差異;天津紅H2O2含量的高低順序?yàn)門5>T6>T4,方差分析結(jié)果表明T5極顯著高于T4和T6,而T6顯著高于T4,未達(dá)到極顯著水平,說(shuō)明外源ABA預(yù)噴施能夠相對(duì)降低H2O2含量。從第3天取樣開(kāi)始,不論是龍小豆4號(hào)還是天津紅,方差分析結(jié)果表明各處理H2O2含量之間沒(méi)有顯著差異。

圖1 外源ABA對(duì)低溫脅迫下小豆幼苗葉片H2O2含量的影響
2.1.2 對(duì)葉片MDA含量的影響 由圖2可知,幼苗期低溫處理后,隨著恢復(fù)自然溫度時(shí)間的延長(zhǎng),小豆莖內(nèi)MDA含量呈下降趨勢(shì)。前3次取樣,龍小豆4號(hào)MDA含量的高低順序?yàn)門2>T3>T1;天津紅MDA含量的高低順序?yàn)門5>T6>T4。第1天取樣,龍小豆4號(hào)T2較T1高65.56%,T3較T2低10.18%,經(jīng)方差分析可知各處理間差異極顯著;天津紅T5較T4高83.79%,T6較T5低20.27%,方差分析結(jié)果表明各處理間差異達(dá)到極顯著水平。第2天取樣時(shí),方差分析結(jié)果表明:龍小豆4號(hào)T2的MDA含量極顯著高于T1,但T3與T1和T2之間沒(méi)有顯著差異;天津紅T5處理的MDA含量極顯著高于T4和T6,而T6顯著高于T4。第3天取樣,方差分析結(jié)果表明:龍小豆4號(hào)T2的MDA含量顯著高于T1,但T3與T1和T2之間沒(méi)有顯著差異;天津紅T5處理的MDA含量極顯著高于T4、顯著高于T6,而T6和T4之間沒(méi)有顯著性差異。第4天和第5天取樣,分別對(duì)龍小豆4號(hào)和天津紅進(jìn)行方差分析,結(jié)果表明各處理間差異均不顯著。整體看外源ABA預(yù)噴施能夠相對(duì)降低MDA含量,有利于小豆快速恢復(fù)正常生理活動(dòng),緩解低溫脅迫。

圖2 外源ABA對(duì)低溫脅迫下小豆幼苗葉片MDA含量的影響
2.2.1 對(duì)葉片SOD活性的影響 由圖3可知,低溫處理后小豆葉片SOD活性相應(yīng)提高。整體看龍小豆4號(hào)的活性高于天津紅,這與其耐冷性強(qiáng)有關(guān)。第1~5天取樣,龍小豆4號(hào)的T3處理的SOD活性均高于T1和T2。第1天取樣,T2較T1高6.67%,T3較T2提高9.06%;第2天取樣活性達(dá)到最高,T3比T2和T1分別高出22.94%和18.93%;從第2天取樣開(kāi)始,T3活性降低,直到第5天取樣,各處理SOD活性趨于接近。方差分析結(jié)果表明,第1天取樣,T3顯著高于T1,但T3與T2之間差異不顯著;第2天取樣,T3極顯著高于T1和T2;第3天取樣,T3顯著高于T1,但T3與T2之間差異不顯著;第4天取樣,T3顯著高于T1,顯著高于T2,同時(shí)T2顯著高于T1;第5天取樣,各處理間SOD活性無(wú)顯著性差異。各取樣時(shí)期,天津紅的SOD活性均為T6>T5>T4。第1天取樣,T5較T4高18.48%,T6較T5高13.57%,方差分析可知T6極顯著高于T4,顯著高于T5;第2天取樣,T6極顯著高于T4和T5,T5極顯著高于T4;第3天取樣,T6和T5極顯著高于T4,但T6與T5之間差異不顯著;第4天取樣,T6極顯著高于T4和T5,T5極顯著高于T4;第5天取樣,T6顯著高于T4和T5,T5和T4之間無(wú)顯著性差異。

圖3 外源ABA對(duì)低溫脅迫下小豆幼苗葉片SOD活性的影響
2.2.2 對(duì)葉片POD活性的影響 從圖4可以看出,幼苗期低溫處理后小豆葉片POD活性大致呈下降趨勢(shì)。龍小豆4號(hào)在取樣第1天各處理的POD活性最高,其高低順序是T3>T2>T1,其中T2較T1高45.53%,T3較T2提高8.26%,自第2天取樣開(kāi)始,POD活性趨于平穩(wěn)。方差分析結(jié)果表明,第1天取樣,T3和T2極顯著高于T1,但T3與T2之間差異不顯著;第2天取樣,T3極顯著高于T1,顯著高于T2;第3天取樣,T3顯著高于T1,但T3與T2之間差異不顯著;第4天取樣,T3極顯著高于T1,與T2之間差異不顯著;第5天取樣,處理間POD活性無(wú)顯著性差異。噴施外源ABA能夠明顯影響天津紅POD活性,各不同取樣時(shí)間POD活性均為T6>T5>T4。第1天取樣,T5較T4高102.44%,T6較T5提高28.51%。方差分析結(jié)果表明:第1天到第4天取樣,T6均極顯著高于T4和T5,同時(shí)T5也極顯著高于T4;第5天取樣,T6極顯著高于T4和T5,但T5和T4之間無(wú)顯著性差異。

圖4 外源ABA對(duì)低溫脅迫下小豆幼苗葉片POD活性的影響
2.2.3 對(duì)葉片CAT活性的影響 由圖5可知,幼苗期低溫處理后,小豆葉片內(nèi)CAT活性呈下降的變化趨勢(shì)。經(jīng)過(guò)方差分析可知龍小豆4號(hào)各取樣時(shí)不同處理間的CAT活性沒(méi)有顯著性差異。天津紅在不同取樣時(shí)間均是T6處理CAT活性最高,方差分析結(jié)果表明,第1天取樣,T6和T5均顯著高于T4,但T6和T5之間差異不顯著;第2天取樣,T6極顯著高于T4,但T6與T5之間差異不顯著;第3天到第5天取樣,各處理之間差異不顯著。

圖5 外源ABA對(duì)低溫脅迫下小豆幼苗葉片CAT活性的影響
2.3.1 對(duì)葉片脯氨酸含量的影響 由圖6可知,幼苗期低溫處理后,小豆葉片內(nèi)脯氨酸含量呈先升后降變化規(guī)律。第1天取樣,T2較T1高33.12%,T3較T2提高9.13%;第3天取樣,龍小豆4號(hào)脯氨酸含量T3最高,較T2和T1分別提高74.68%和36.00%,隨后T3開(kāi)始下降,第5天取樣,與T1和T2趨平。對(duì)龍小豆4號(hào)各取樣時(shí)間脯氨酸含量進(jìn)行方差分析可知:第1天取樣,T3極顯著高于T1,但T3與T2之間差異不顯著;第2天和第3天取樣結(jié)果相同,均為T3極顯著高于T1和T2,T2極顯著高于T1;第4天取樣,T3顯著高于T1,但T3與T2之間差異不顯著;第4天取樣,T3極顯著高于T1和T2;第5天取樣,處理間脯氨酸含量無(wú)顯著性差異。葉面噴施外源ABA對(duì)天津紅葉片脯氨酸含量的調(diào)控效應(yīng)更強(qiáng),第1天取樣,T5較T4高24.41%,T6較T5提高19.76%,第3天取樣,天津紅脯氨酸含量T6最高,較T4和T5分別提高54.72%和8.15%。方差分析可知取樣第1天到第4天,T6均極顯著高于T4,其中第1天和第4天,T6顯著高于T5;第5天取樣,處理間脯氨酸含量無(wú)顯著性差異。

圖6 外源ABA對(duì)低溫脅迫下小豆幼苗葉片脯氨酸含量的影響
2.3.2 對(duì)葉片可溶性糖含量的影響 由圖7可知,幼苗期低溫處理后,不同品種小豆葉片可溶性糖含量變化趨勢(shì)不同,龍小豆4號(hào)總體呈先升后降的變化趨勢(shì),而天津紅的變化幅度不大。從整體來(lái)看,龍小豆4號(hào)的可溶性糖含量高于天津紅,這也是其抗冷性強(qiáng)的又一生理因素。噴施外源ABA處理能明顯提高可溶性糖含量,在所有取樣時(shí)間內(nèi),T3均高于T1和T2,T6高于T4和T5。龍小豆4號(hào)第3天和第4天取樣,各處理可溶性糖差異相對(duì)明顯,方差分析結(jié)果表明T3均極顯著高于T1,第3天取樣T3極顯著高于T2,其他取樣時(shí)間內(nèi)處理間無(wú)顯著性差異。低溫及噴施外源ABA對(duì)天津紅的可溶性糖含量調(diào)控明顯,第1天取樣,T6極顯著高于T4和T5,而T5極顯著高于T4;第2天取樣,T6和T5極顯著高于T4,T6和T5之間沒(méi)有顯著性差異;第3天取樣,T6和T5顯著高于T4,但T6與T5之間差異不顯著;第4天取樣,T6極顯著高于T4和T5,T5極顯著高于T4;第5天取樣,T6極顯著高于T4和T5,T5顯著高于T4。

圖7 外源ABA對(duì)低溫脅迫下小豆幼苗葉片可溶性糖含量的影響
2.3.3 對(duì)葉片可溶性蛋白含量的影響 由圖8可知,幼苗期低溫處理后,小豆葉片可溶性蛋白質(zhì)含量的變化沒(méi)有明顯的規(guī)律,但可以看出龍小豆4號(hào)高于天津紅,這是品種間遺傳差異所致。對(duì)龍小豆4號(hào)各取樣時(shí)間的可溶性蛋白含量進(jìn)行方差分析可知,第1天和第3天取樣,處理間沒(méi)有顯著性差異;第2天取樣,T3極顯著高于T2;第4天取樣,T3極顯著高于T1,顯著高于T2。此外,第5天取樣時(shí)T3含量驟降,幅度比較異常,筆者認(rèn)為這可能是取樣的偶然誤差所致。對(duì)天津紅的可溶性蛋白含量進(jìn)行方差分析,結(jié)果表明:第1天取樣,T6極顯著高于T4和T5,而T5極顯著高于T4;第2天取樣,T6和T4極顯著高于T5,T6和T4之間沒(méi)有顯著性差異;第3天取樣,處理間差異不顯著;第4天取樣,T6極顯著高于T4,T5顯著高于T4;第5天取樣,T6和T5極顯著高于T4,T6和T5之間差異不顯著。

圖8 外源ABA對(duì)低溫脅迫下小豆幼苗葉片可溶性蛋白含量的影響
由表2可知,幼苗期低溫處理后,小豆產(chǎn)量因子發(fā)生變化。低溫條件下,龍小豆4號(hào)的株莢數(shù)和莢粒數(shù)未發(fā)生顯著性變化,但單株粒重和百粒重發(fā)生較大變化,與T1相比,T2的單株粒重和百粒重分別下降了0.73 g和0.45 g,下降幅度分別是為11.61%和2.58%,達(dá)到了顯著差異水平。天津紅的莢粒數(shù)和單株粒重未發(fā)生顯著變化,T5的株莢數(shù)較T4下降了18.55%,差異達(dá)顯著水平,T5的百粒重較T4下降了1.41 g,降幅為10.61%,差異達(dá)到顯著水平。

表2 外源ABA對(duì)低溫脅迫下小豆產(chǎn)量因子的影響
低溫條件下,噴施外源ABA可調(diào)節(jié)小豆產(chǎn)量因子,龍小豆4號(hào)的百粒重發(fā)生較大變化,與T2相比,T3的百粒重增加了1.37 g,增幅為8.56%,差異達(dá)到顯著水平;噴施外源ABA使天津紅的百粒重也有所提高,T6較T5增加了1.06 g,增幅為8.92%,但方差分析結(jié)果表明差異未達(dá)顯著水平。
低溫對(duì)植物的形態(tài)結(jié)構(gòu)發(fā)展、代謝途徑、生長(zhǎng)發(fā)育進(jìn)程都具有較大影響,植物對(duì)低溫脅迫的適應(yīng)性和抵抗能力既受系統(tǒng)發(fā)育的遺傳基因控制,又受個(gè)體發(fā)育過(guò)程中生理狀態(tài)制約[14],植物遭受低溫脅迫后,會(huì)開(kāi)啟一系列應(yīng)激的自我防護(hù)機(jī)制,這些保護(hù)系統(tǒng)之間相互有機(jī)協(xié)調(diào),以最大程度降低傷害。

H2O2是植物體內(nèi)一類重要的ROS物質(zhì),正常條件下H2O2的產(chǎn)生和清除過(guò)程基本保持一種精細(xì)的平衡狀態(tài),這樣既保證了植物體內(nèi)H2O2具有一定的生理功能,同時(shí)也將其對(duì)植物的傷害效應(yīng)降到最低。如果打破H2O2產(chǎn)生和清除的這種平衡,出現(xiàn)H2O2的積累。由于它具有較高的氧化還原活性,所以能引起細(xì)胞內(nèi)大分子氧化損傷,最終抑制植物體內(nèi)多種生理生化反應(yīng),影響植物體內(nèi)的調(diào)控和代謝[15]。MDA是細(xì)胞膜過(guò)氧化產(chǎn)物,其含量高低是質(zhì)膜受損嚴(yán)重與否的重要指標(biāo)[16],脅迫程度越強(qiáng),MDA積累量越多。低溫可導(dǎo)致植物體內(nèi)H2O2和MDA含量增加,增加質(zhì)膜透性,對(duì)細(xì)胞膜造成損傷。夏軍等[17]研究得出不同低溫脅迫均導(dǎo)致棉花種子內(nèi)H2O2和MDA含量增加;張騰國(guó)等[18]也認(rèn)為油菜受到低溫脅迫后體內(nèi)H2O2含量迅速增加。外源ABA具有減緩逆境條件下ROS類物質(zhì)和MDA含量增加的生理功能。蒲高斌等[11]認(rèn)為低溫脅迫下外源ABA能有效降低西瓜體內(nèi)MDA的積累,維持膜的完整性,增強(qiáng)植株的抗寒能力;阮英慧等[19]研究得出外源ABA能夠顯著降低干旱脅迫下作物體內(nèi)ROS類物質(zhì)的積累,并可顯著提高抗壞血酸含量以清除H2O2,緩解低溫脅迫。這可能與外源ABA具有提高保護(hù)酶活性的生理功能有關(guān),因?yàn)楫?dāng)植物處于逆境時(shí),細(xì)胞內(nèi)自由基產(chǎn)生和清除的平衡系統(tǒng)受到破壞,植物體內(nèi)存在清除自由基的多種途徑,其中最主要的就是抗氧化酶系統(tǒng),植物通過(guò)SOD、POD和CAT三者協(xié)同作用,使體內(nèi)的氧自由基維持在較低水平,可以在一定程度上減緩或防御低溫脅迫[20]。Zhang等[21]也得出ABA通過(guò)調(diào)控抗氧化酶活性,有效緩解冷害條件下黃瓜幼苗的氧化受損程度;黃鳳蓮等[22]得出ABA能夠緩解低溫脅迫下水稻幼苗SOD、POD的活性變化,這都與本文研究結(jié)果類似。低溫處理后,植物自身保護(hù)機(jī)制開(kāi)啟,SOD和POD活性明顯提高,以應(yīng)對(duì)不良環(huán)境帶來(lái)的脅迫,外源ABA能夠進(jìn)一步提高小豆葉片內(nèi)的SOD和POD活性,增強(qiáng)對(duì)ROS的清除能力,保護(hù)細(xì)胞盡量不受傷害。但是本試驗(yàn)結(jié)果表明,不同小豆品種之間CAT活性變化不同,低溫脅迫和外源ABA對(duì)龍小豆4號(hào)的CAT活性均沒(méi)有顯著影響,這可能與其遺傳特性相關(guān),其自身具有較高的可溶性物質(zhì),能夠穩(wěn)定滲透調(diào)節(jié)功能。
植物為了減緩由逆境脅迫造成的生理代謝不平衡,會(huì)大量積累一些小分子有機(jī)化合物,通過(guò)滲透調(diào)節(jié)來(lái)降低水勢(shì),以維持較高的滲透壓,保證細(xì)胞的正常生理功能[23]。低溫脅迫下可溶性糖和可溶性蛋白在植物體內(nèi)會(huì)大量積累,可溶性糖通過(guò)某些糖代謝途徑形成保護(hù)性物質(zhì),提高植物抵抗低溫的能力[24]。脯氨酸通過(guò)參與細(xì)胞內(nèi)的滲透調(diào)節(jié)起到了防凍劑或膜穩(wěn)定劑的作用,對(duì)細(xì)胞起到保護(hù)作用。Xiang等[10]研究表明低溫條件下外源ABA能提高水稻葉片內(nèi)脯氨酸、可溶性糖和可溶性蛋白含量,增強(qiáng)水稻的抗冷性。蒲高斌等[11]得出低溫脅迫下外源ABA能促進(jìn)滲透保護(hù)物質(zhì)脯氨酸和可溶性糖的增加,增強(qiáng)植株的抗寒性,表明這是外源ABA有效提高西瓜幼苗抗冷性、減輕低溫對(duì)西瓜苗傷害的主要生理基礎(chǔ)。本研究結(jié)果表明外源ABA能夠有效提高小豆葉片可溶性糖的含量,對(duì)可溶性蛋白的影響較為微弱,但是對(duì)脯氨酸含量具有顯著的提高作用,這可能與外源ABA提高了△-二氫吡咯-5-羧酸合成酶(P5C synthetase,P5CS)的合成有關(guān)。P5CS基因在脅迫條件下對(duì)植物中脯氨酸合成水平起著重要作用,轉(zhuǎn)基因P5CS的煙草中產(chǎn)生了大量的P5CS酶蛋白,脯氨酸合成量比正常植株升高10倍。積累的脯氨酸通過(guò)參加細(xì)胞內(nèi)的滲透調(diào)節(jié),起到了防凍劑或膜穩(wěn)定劑的作用,對(duì)細(xì)胞起到保護(hù)作用,進(jìn)而提高了小豆的抗冷性。
相關(guān)報(bào)道表明外源ABA能夠顯著提高逆境脅迫下作物產(chǎn)量因子,促使作物產(chǎn)量有效提高。屈春媛等[25]研究得出,干旱脅迫下外源ABA顯著提高了大豆單株粒數(shù)、百粒重以及產(chǎn)量;謝靜靜等[26]也認(rèn)為外源ABA有效提高了干旱脅迫后小麥的穗粒數(shù)、千粒重和產(chǎn)量。本研究結(jié)果表明,低溫導(dǎo)致小豆百粒重顯著降低,并顯著降低了天津紅品種的單株莢數(shù),進(jìn)而對(duì)產(chǎn)量造成影響;相較于噴施清水,噴施外源ABA能夠顯著提高低溫脅迫后小豆的百粒重,有效緩解低溫對(duì)產(chǎn)量的影響。
幼苗期低溫導(dǎo)致小豆葉片生理指標(biāo)發(fā)生變化,低溫引起龍小豆4號(hào)和天津紅葉片內(nèi)H2O2含量增加34.82%和27.10%(P<0.05)、引起MDA含量增加65.56%和83.79%(P<0.05),同時(shí)促進(jìn)SOD和POD活性提高,兩品種分別提高6.67%和18.48%、45.53%和102.44%。脯氨酸含量也明顯增加,分別為33.12%和24.41%。通過(guò)保護(hù)酶活性和滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)的量變協(xié)同抵抗H2O2和MDA對(duì)細(xì)胞帶來(lái)的傷害。外源ABA具有抵御低溫、降低作物受損的作用,其能有效增強(qiáng)小豆葉片SOD和POD的活性,龍小豆4號(hào)和天津紅分別提高9.06%和13.57%、8.26%和28.51%;外源ABA能增加脯氨酸含量,兩品種分別增加9.13%和19.76%,同時(shí)可降低H2O2和MDA含量,龍小豆4號(hào)和天津紅分別降低7.63%和8.36%、10.18%和20.27%。外源ABA能提高小豆對(duì)低溫脅迫的抗性,維持正常生理活動(dòng)。
幼苗期低溫導(dǎo)致產(chǎn)量因子發(fā)生變化,低溫導(dǎo)致小豆百粒重顯著降低,龍小豆4號(hào)和天津紅分別降低2.58%和10.61%,對(duì)產(chǎn)量造成影響。低溫脅迫后,與噴施清水相比較,外源ABA能夠提高小豆的百粒重,龍小豆4號(hào)和天津紅分別提高8.56%和8.92%,有效緩解低溫對(duì)產(chǎn)量的影響。本試驗(yàn)得出外源ABA能夠緩解低溫對(duì)小豆造成的傷害,對(duì)低溫條件下小豆保產(chǎn)穩(wěn)產(chǎn)起到實(shí)際作用,為進(jìn)一步研究小豆幼苗抵御低溫傷害提供理論基礎(chǔ)。