制油工藝對花生油品質的影響

2019-11-20 05:45:46王屋梁楊曉宇曹培讓劉元法

中國油脂 2019年9期

王屋梁，李凱，楊曉宇，曹培讓，劉元法

(1.江南大學食品科學與技術國家重點實驗室，江蘇無錫214122； 2.江南大學糧食發酵工藝與技術國家工程實驗室，江蘇無錫214122； 3.江南大學食品學院，江蘇無錫214122； 4.無錫德合食品科技有限公司，江蘇無錫 214122)

花生是四大油料作物之一，種植面積居油料作物第二位，脂肪含量為47%～50%[1]。花生油中脂肪酸主要為不飽和脂肪酸，其中油酸和亞油酸含量豐富。花生油因滋味可口、氣味芬芳，深受我國居民喜愛。研究表明花生油對人體健康大有益處，可以降低患心腦血管疾病風險[2-4]。

隨著生活水平和健康意識的不斷提高，人們對食用油脂的品質提出了更高的要求。目前，工業上花生油的制取工藝主要為溶劑浸出法和高溫壓榨法，其中溶劑浸出法是最常用的一種制油工藝，但存在生產安全隱患、溶劑殘留等問題[5]。高溫壓榨法雖可以增強花生油的香味，但會使其色澤加深、雜質含量增加，并且高溫壓榨使花生蛋白嚴重變性，所得花生餅只能作為廉價的飼料[6]。低溫冷榨法避免了高溫處理而導致的油脂中營養成分流失，所得的油脂色澤淺、雜質少、風味純正，同時冷榨較大程度上避免和減少餅蛋白質的變性[7]，可以提高油料的綜合利用率。水酶法是在水代法的基礎上利用酶對油料細胞結構進一步破壞，促使油脂釋放，反應條件溫和，所得油脂品質高，同時也能有效回收油料中蛋白質[8]。

本研究采用低溫壓榨法、高溫壓榨法和水酶法制取花生油，分別對其色澤、酸價、過氧化值及氧化穩定指數進行測定，采用氣相色譜測定脂肪酸組成及角鯊烯含量，利用高效液相色譜測定生育酚含量，使用分光光度計測定多酚含量，同時測定DPPH自由基和ABTS自由基的清除能力，借此對所得花生油的營養和品質進行綜合評價，以期為花生油生產及其開發利用提供理論依據和數據支撐。

1 材料與方法

1.1 實驗材料

1.1.1 原料與試劑

花生仁，購自山東；甲醇、無水乙醇、乙酸乙酯、正己烷、氫氧化鈉、氫氧化鉀、三氟化硼、乙醚、酚酞、冰乙酸、碘化鉀、可溶性淀粉、碳酸鈉、DPPH(二苯代苦味酰基自由基)試劑、抗氧化標準物質Trolox、ABTS(2,2′-聯氮-雙-3-乙基苯并噻唑啉-6-磺酸)、過硫酸鉀，均購自J & K公司；甲醇(色譜純)、正己烷(色譜純)、異丙醇(色譜純)、焦性沒食子酸、福林酚試劑、脂肪酸甲酯混標、生育酚混標(純度95%)、角鯊烯標準品，均購于Sigma公司；磷酸緩沖液，購于上海碧云天生物技術有限公司；去離子水，實驗室自備；Alcalase 2.4L，購自諾維信公司。

1.1.2 儀器與設備

電熱鼓風干燥箱；半粒脫皮機；液壓榨油機；HH-4 數顯恒溫水浴鍋；RW-20電動攪拌器，德國IKA公司；羅維朋比色儀；RE-52A旋轉蒸發儀；SHB-3循環水真空泵；TGL-16G型臺式離心機；EL204電子天平,上海梅特勒托利多儀器有限公司；KQ-300 DE數控超聲波清洗器；Mini-240分光光度計，日本島津公司；Diol-SPE二醇基固相萃取小柱(500 mg, 6 mL)，上海安普公司；Rancimat 743 氧化穩定儀，瑞士Rancimat公司；Waters 2695高效液相色譜儀，美國Waters公司；Agilent 7820氣相色譜儀，美國Agilent公司。

1.2 實驗方法

1.2.1 花生油的制取

冷榨法：取一定量花生仁，置于60℃烘箱中10 h,取出冷卻、脫皮，液壓榨油機壓榨，將所得油樣于4 500 r/min離心15 min，得到冷榨花生油。

熱榨法：取一定量花生仁，置于150℃烘箱中75 min,取出冷卻、脫皮，液壓榨油機壓榨，將所得油樣于4 500 r/min離心15 min，得到熱榨花生油。

水酶法：取一定量花生仁，置于60℃烘箱中10 h, 取出冷卻、脫皮，參照Deng等[9]的方法，按料液比1∶5加水磨漿，在Alcalase 2.4L蛋白酶添加量1.5%、60℃、pH 8.5條件下酶解3 h，升溫至90℃，并保持10 min；將所得油樣于4 500 r/min 離心15 min,靜置，取上層，得到水酶法花生油。

1.2.2 基本理化指標測定

酸價，參照GB 5009.229—2016;過氧化值，參照GB 5009.227—2016;色澤，參照GB/T 22460—2008；氧化穩定性，參照GB/T 21121—2007,用Rancimat 743 氧化穩定儀測定。

1.2.3 脂肪酸組成分析

氣相色譜條件：TR-FAME柱(60 m×0.25 mm×0.25 μm)；升溫程序為60℃保持3 min，以5℃/min 升溫至175℃保持15 min，再以2℃/min升溫至220℃保持10 min；分流比100∶1；檢測器、進樣口溫度220℃；進樣量1 μL。

1.2.4 生育酚含量測定

參照Li等[12]的方法采用HPLC進行測定。稱取1.0 g油樣，精確至0.001 g，置于10 mL 棕色容量瓶中，加入正己烷超聲溶解定容后，過0.22 μm 有機膜，取20 μL進樣。

HPLC條件：Nucleosil Silica 柱(20 cm×4 mm×5 μm)；流動相為正己烷-異丙醇(體積比98.5∶1.5)；流速1 mL/min；柱溫30℃；檢測波長295 nm。

配制質量濃度分別為10、20、40、80、100、200、400 μg/mL混合生育酚標準品的正己烷溶液，進樣，以質量濃度與峰面積繪制標準曲線，采用外標法測定生育酚含量。

1.2.5 多酚含量測定

參照Herchi等[13]的方法測定多酚含量。分別取6 mL甲醇和6 mL正己烷活化SPE柱，再用6 mL正己烷-乙酸乙酯(體積比 99∶1)溶液緩沖系統。稱取6.0 g油樣，精確至0.001 g，溶于12 mL正己烷中過柱，用12 mL正己烷洗脫非極性物質，再加入6 mL甲醇洗脫，得到多酚提取液，后將其濃縮至1 mL,加入福林酚0.5 mL，反應5 min后，加入2 mL 7.5% Na2CO3溶液，用去離子水定容至10 mL，放置于暗處反應2 h，765 nm處測定吸光度。

用焦性沒食子酸作標準品，參照GB/T 8313—2008 繪制標準曲線。采用外標法測定多酚含量。

1.2.6 角鯊烯含量測定

參照文獻[14]的方法，采用氣相色譜測定角鯊烯含量。氣相色譜條件：HP-5毛細管柱(30 m×0.32 mm×0.25 μm)；升溫程序為起始溫度160℃，以15℃/min升溫至220℃保持2 min，再以10℃/min 升溫至280℃保持10 min；分流比20∶1；檢測器、進樣口溫度280℃；進樣量1 μL。

配制質量濃度分別為10、20、40、60、80、100、120 μg/mL角鯊烯標準品的正己烷溶液，進樣，以質量濃度與峰面積繪制標準曲線，采用外標法測定角鯊烯含量。

1.2.7 DPPH自由基清除能力測定

（107）黃羽苔 Xenochila integrifolia（Mitt.）Inoue.楊志平（2006）

1.2.7.1 極性組分DPPH自由基清除能力

極性萃取液的制備：稱取4.0 g油樣，加入5 mL甲醇，避光振蕩30 min 混勻，3 000 r/min 離心15 min,靜置，待分層后取上清液，重復以上操作4次，合并萃取液，甲醇定容。

DPPH自由基清除能力測定：參考文獻[15]的方法，略作改動。取2 mL上述極性萃取液，與2 mL濃度為0.1 mmol/L的DPPH-甲醇溶液混合，避光放置2 h,517 nm處測定吸光度；DPPH自由基清除能力以μmolTE/100 g(以油質量計，下同)表示。

1.2.7.2 非極性組分、全油樣品DPPH自由基清除能力

非極性萃取液的制備：取適量的萃取后殘余的非極性部分，用乙酸乙酯定容。

全油樣品的制備：稱取適量油樣，用乙酸乙酯配制成質量濃度為15 mg/mL的樣液。

DPPH自由基清除能力測定：將甲醇替換成乙酸乙酯，其余同極性組分DPPH自由基清除能力測定。

1.2.8 ABTS自由基清除能力測定

ABTS工作液制備：參考Marfil等[16]的方法，配制ABTS反應儲備液，使用前用0.2 mol/L磷酸緩沖液(pH 7.4) 稀釋,使其在734 nm處的吸光度為0.70±0.002。

ABTS自由基清除能力測定：取1.2.7.1中的極性萃取液20 μL與1 980 μL ABTS工作液振蕩混合，30℃下反應10 min,734 nm處測定吸光度；ABTS自由基清除能力以μmolTE/100 g表示。

1.2.9 數據分析

采用SPSS軟件進行數據統計與分析。顯著性差異采用One-Way ANOVA檢驗以及DUCAN檢驗。

2 結果與討論

2.1 不同制油工藝花生油基本理化指標(見表1)

表1 不同制油工藝花生油的色澤、酸價、過氧化值和氧化穩定指數(OSI)比較

注：結果以”平均值±s”表示;同一列不同字母表示有顯著性差異(p<0.05);下同。

由表1知，水酶法花生油酸價最高，過氧化值最低，OSI最高。酸價高可能與甘油三酯在酶和水分的作用下分解生成游離脂肪酸和甘油有關。熱榨花生油的色澤最深，過氧化值最高，OSI最低，這可能是因為高溫烘烤及壓榨工序有助于脂溶性色素的溶出，同時在高溫過程中花生中的蛋白質和糖類物質會發生美拉德反應，其反應產物使得熱榨油的色澤進一步加深。在高溫烘烤條件下，油脂易發生氧化，使得過氧化值升高，OSI降低。而冷榨花生油因制取條件溫和，其酸價及過氧化值均低于熱榨花生油，OSI高于熱榨花生油。

2.2 不同制油工藝花生油脂肪酸組成(見表2)

表2 不同制油工藝花生油的脂肪酸組成 %

注：同一行不同字母表示有顯著性差異(p<0.05)。

由表2知，花生油的脂肪酸組成主要以棕櫚酸(C16∶0)、硬脂酸(C18∶0)、油酸(C18∶1)、亞油酸(C18∶2)為主，其中油酸和亞油酸的含量約占78%。對比3種花生油可知，3種花生油的脂肪酸組成無差別，而水酶法花生油的油酸含量顯著高于冷榨花生油和熱榨花生油(p<0.05)，亞油酸含量顯著低于冷榨花生油和熱榨花生油(p<0.05)。

2.3 不同制油工藝花生油微量活性成分含量

2.3.1 生育酚含量(見圖1)

注：結果以“平均值±s”表示；同一柱形上方不同字母表示有顯著性差異(p<0.05)；下同。

圖1 不同制油工藝花生油的生育酚含量比較

生育酚是一種很好的抗氧化劑，有4種單體即α-生育酚、β-生育酚、γ-生育酚和δ-生育酚。由圖1知，花生油中生育酚以α-生育酚和γ-生育酚為主，占總生育酚含量的83%～90%，β-生育酚及δ-生育酚含量極低，這與文獻[17]的研究結果一致。熱榨花生油的α-生育酚和總生育酚含量分別為(124.57±0.03)mg/kg、(206.61±3.24)mg/kg，顯著高于冷榨花生油及水酶法花生油(p<0.05)。這可能是因為高溫烘烤有助于脂肪伴隨物的溶出，同時美拉德反應產物可以保護生育酚不被氧化。在長時間的酶解條件下，水酶法花生油中生育酚因結構被破壞，含量降低。

2.3.2 多酚含量(見圖2)

圖2 不同制油工藝花生油的多酚含量比較

酚類物質具有抗氧化作用。研究表明，酚類化合物具有保護心臟、降低心血管疾病風險、抗癌等功效[18]。由圖2知，熱榨花生油的多酚含量為(44.27±2.60)mgGAE/kg，顯著高于冷榨花生油和水酶法花生油(p<0.05)，而冷榨花生油和水酶法花生油中多酚含量無顯著差異(p>0.05)。這可能是因為高溫烘烤過程中，多酚多聚物的化學鍵斷裂，釋放出更多的多酚，同時美拉德反應產物在一定程度上可以保護多酚不被氧化。多酚是極性物質，在水酶法提取花生油的過程中，多酚極易溶于水相，使得油相中的多酚含量減少[19]。

2.3.3 角鯊烯含量(見圖3)

圖3 不同制油工藝花生油的角鯊烯含量比較

角鯊烯是一種脂質不皂化物，具有增強機體免疫力、抗衰老、抗疲勞、抗癌等多種生理功能。由圖3知，冷榨花生油的角鯊烯含量為(477.20±10.31) mg/kg，顯著高于熱榨花生油和水酶法花生油(p<0.05)，這可能是由于角鯊烯是一種不穩定的物質[20]，其結構受熱易被破壞。高溫烘烤、酶解都會使角鯊烯結構受到不同程度的破壞，從而使得其含量降低。熱榨花生油和水酶法花生油的角鯊烯含量無顯著差異(p>0.05)。

2.4 不同制油工藝花生油DPPH自由基和ABTS自由基清除能力(見表3)

由表3知，熱榨花生油全油、極性組分及非極性組分的DPPH自由基清除能力均顯著高于冷榨花生油和水酶法花生油(p<0.05)，冷榨花生油除極性組分的DPPH自由基清除能力顯著低于水酶法花生油(p<0.05)外，其全油及非極性組分的DPPH自由基清除能力與水酶法花生油無顯著差異(p>0.05)。比較全油、極性組分和非極性組分的DPPH自由基清除能力可知，花生油中的極性組分與非極性組分均具有清除自由基的作用，同時花生油全油的DPPH自由基清除能力不等于這兩個組分的簡單相加。全油的DPPH自由基清除能力高于非極性組分，這說明花生油中的極性組分在乙酸乙酯體系中起到了清除自由基的作用。全油的DPPH自由基清除能力卻低于極性組分，這有可能是因為乙酸乙酯的體系抑制了某些微量活性成分的抗氧化作用，使得自由基清除能力下降[21]。

由表3知，熱榨花生油清除ABTS自由基能力顯著高于冷榨花生油和水酶法花生油(p<0.05)，冷榨花生油的ABTS自由基清除能力與水酶法花生油無顯著差異(p>0.05)。