趙 剛,閆 冰,劉鑫瑩
(哈藥集團生物疫苗有限公司,哈爾濱 150000)
1.1.1 細胞及病毒
ST細胞(哈藥集團生物疫苗有限公司保存和提供);病毒(由哈藥集團生物疫苗有限公司制備、鑒定和保存)。
1.1.2 試驗試劑
新生牛血請(購自內蒙古金源康生物工程有限公司);MEM 培養基(購自美國Gibco 公司);Virus Pro?ST-S無血清培養基(購自上海源培生物科技有限公司);胰蛋白酶(購自美國Sigma 公司);0.5%豚鼠紅細胞懸液(哈藥集團生物疫苗有限公司研發中心配制)。
1.2.1 ST細胞低濃度血清適應及馴化
采用逐步降低血清的方法馴化ST 細胞以適應低濃度血清培養,在含10%新生牛血清的MEM 培養液中穩定生長的ST 細胞長至對數生長中期時,更換為含5%新生牛血清的MEM培養液,待細胞長至80%~90%的匯合度時,胰蛋白酶消化細胞,以細胞密度為2.0×105個·mL-1傳代于含5%新生牛血清的MEM培養液中。經過5代后,ST細胞在含5%新生牛血清的MEM 培養液中的存活率維持在95%以上,并保持正常貼壁性能和較快生長速率,可進一步降低血清馴化培養。以同樣的方法使ST 細胞逐步適應含1%新生牛血清的MEM培養條件。
1.2.2 懸浮生長ST-S細胞株篩選
以適應1%新生牛血清條件的ST細胞為出發點,在三角培養瓶中進行懸浮培養馴化適應,培養液為1%新生牛血清的ST-S無血清培養基,細胞初始接種密度為5.0×105個·mL-1,培養轉速為160 r·min-1。每天取樣檢測細胞密度,從中選出生長旺盛的細胞擴繁保種,命名為ST-S細胞株。
1.2.3 病毒含量測定
將病毒液用MEM 細胞培養液作10 倍系列稀釋,取10-5、10-6、10-73個稀釋度,各加入96孔細胞培養板,每個稀釋度6 孔,每孔100 μL,同設6孔加100 μL MEM作為無病毒空白對照。每孔加入100 μL新消化的ST細胞懸液(4.0×105個·mL-1),置37 ℃,5%CO2培養箱中培養5 d,每日觀察和記錄各孔中病毒感染情況,取最高細胞病變時間點,按Reed-Muench法,計算病毒的致半數細胞感染滴度(TCID50)。
1.2.4 生物反應器培養豬細小病毒
將ST-S 細胞以初始密度0.75×106個·mL-1接種至生物反應器,上罐后培養12h,按照MOI(病毒感染復數)0.1的比例接種豬細小病毒L株,接種后72 h 收獲。于7 L 生物反應器中連續培養3 批,測定豬細小病毒L株的病毒含量和紅細胞凝集價。
經低血清被動懸浮培養適應,ST 細胞呈現出細胞懸浮生長的形態,細胞個體大小基本均一,但細胞結團現象嚴重,個別細胞團較大。在低血清懸浮培養馴化后期,懸浮ST-S 細胞呈現較好的單細胞懸浮生長狀態,細胞呈圓球形,結團現象較少,胞體大小基本一致,生長速度正常,說明ST-S 細胞已經適應了低血清營養條件,成為單細胞懸浮狀態生長,見圖1、2。ST-S細胞不同時間細胞生長密度見表1。
由表1可知,ST-S細胞最高生長密度可達4.5×106個·mL-1。將該懸浮馴化好的ST-S細胞擴大培養確定為F0代。
將ST-S 細胞以初始密度0.75×106個·mL-1接種至生物反應器,上罐后培養12h,按照MOI(病毒感染復數)0.1的比例接種豬細小病毒L株,接種后72 h 收獲。于7 L 生物反應器中連續培養3 批,測定豬細小病毒L株的病毒含量和紅細胞凝集價。結果表明,工藝參數穩定性較好,病毒含量可穩定在107.36~107.60TCID50·mL-1,紅細胞凝集價在1∶512~1 024,結果見表2。

圖2 ST-S細胞懸浮培養后期

表1 ST-S細胞不同時間細胞生長密度

表2 懸浮ST-S細胞增殖豬細小病毒
試驗中采用逐步降低血清含量并調整無血清培養基配方的方法,最終可獲得無血清懸浮培養的ST細胞,此株ST細胞可以穩定連續傳代,細胞生長可以維持在較高的活力及細胞密度,從搖瓶放大至7L 反應器,細胞生長穩定。本研究掌握了一種ST 懸浮細胞馴化的方法,其他貼壁細胞的馴化也可借鑒此類方法。
經懸浮馴化的ST-S 細胞對豬細小病毒敏感,病毒在其上的增殖能力與轉瓶培養相當,可獲得較高的病毒滴度及紅細胞血凝價;轉瓶培養豬細小病毒的操作過程繁瑣、同一批次不同細胞瓶中病毒的滴度也存在差異、時間成本大。利用ST 懸浮細胞生產的病毒產量遠遠高于貼壁培養,且同一批次的病毒質量更均一穩定,為后續逐級放大奠定基礎。
本文所述方法馴化的ST 懸浮細胞呈現較好的單細胞懸浮生長狀態,生長速度正常,細胞最高生長密度可達4.5×106個·mL-1,以此為基礎制備豬細小病毒可規?;焖俅罅可a,易于質量控制,純度高,穩定性好,病毒含量可穩定在107.36~107.60TCID50·mL-1,紅細胞凝集價在1∶512~1 024。因此生產工藝可用于豬細小病毒的大規模生產。