熱水浸提法提取鹿茸膠原蛋白工藝研究

高鴻蒙 王智慧 雅茹

1 試驗方法

1.1 膠原蛋白的提取

取干鹿茸30g，粉碎勻漿，加入1500ml蒸餾水勻漿抽提，離心分（10000r/min，20min）。殘渣用8倍NaOH溶液攪拌過夜，離心分離（10000r/min，20min），重復用堿洗三次，去除上清液，將沉淀用蒸餾水沖洗，離心（10000r/min，20min），如此反復2次。加60%乙醇1000mL，4℃浸提48h，紗布過濾，離心，上清液于50℃、60r/min旋轉蒸發回收乙醇，提取液置于截流分子量范圍8～15kDa的透析袋中，對蒸餾水透析24h，-20℃預凍24h，凍干，即得鹿茸膠原。

1.2 聚丙烯酰胺凝膠電泳

采用DYCZ-24D型垂直板凝膠電泳槽，采用濃度為10%的分離膠和濃度為5%的濃縮膠，濃縮膠電壓為70mV，分離膠電壓140mV。采用考馬斯亮藍R250進行染色，最后用脫色液（甲醇∶冰醋酸∶蒸餾水=4.5∶4.5∶1）脫色，至背景清晰，觀測分子量范圍。電泳各儲液放入0～2 ℃的冰箱中，隨取隨用;電泳緩沖液pH值為8.3。采用的標準蛋白為：兔磷酸化酶B（97400）;牛血清白蛋白（66200）;兔肌動蛋白（43000）;牛碳酸酐酶（31000）;胰蛋白酶抑制劑（20100）;雞蛋清溶菌酶（14400）。

配制完膠后，迅速沿著電泳槽的玻璃板邊緣將膠倒入電泳槽，先到分離膠，至膠液面離玻璃板凹槽3.5厘米左右。然后在膠面上輕輕鋪1cm高的水，垂直放置20～30分鐘左右使之凝聚。然后吸出膠面上的水，倒入濃縮膠，使膠液面與玻璃板凹槽處平齊，然后插入梳子，室溫放置使其凝固。待凝膠完全凝后，取下梳子，拆掉膠條，重新安裝好電泳槽后，倒入電極緩沖液。檢查板是否漏液，若不漏則可點樣了。

點樣：將樣品液與加樣緩沖液等體積混合后，即可用微量注射器在孔中點樣。每孔上樣量為20μL。加樣完畢后，打開電源（負極接上槽，正極接下槽），電流初為15mA，當前沿指示劑進入分離膠后調節電流為20mA。待指示劑遷移至距下口約1cm時，關閉電源。整個電泳所需時間約為6h。

1.3 紫外分析

對提取的膠原溶液用紫外可見分光光度計測量其吸收光譜。實驗中應選用石英比色皿，分光光度計的波長選在200一500nm之間。

1.4 氨基酸分析

取上述膠原凍干品約25mg，2mL6mol/LHCl水解24h，蒸干，采用1100系列高效液相進行氨基酸含量測定。衍生試劑：2，4-二硝基氟苯（FDNB）;流動相A：乙腈∶水（55∶45）;流動相B：KH2PO4，PH=7.2;梯度洗脫，流速1mL/min，進樣量10μL。

在20 種常見氨基酸中，甘氨酸、脯氨酸和丙氨酸含量最高，其中甘氨酸含量幾乎占了1/3，為33.24% ，脯氨酸和丙氨酸含量分別為11.64% 和11.78% ;組氨酸和酪氨酸含量較低，沒有檢測出胱氨酸;非常見氨基酸———羥脯氨酸的含量也非常高，為11.20% 。另外，羥脯氨酸和脯氨酸比值為0.8，和Ⅰ型膠原（0.7～0.8）一致。

2 結果分析

2.1 電泳結果分析

1.對提取的膠原蛋白進行不同倍數的稀釋，稀釋倍數為3倍，5倍，10倍。

電泳圖片如下：見圖一.

說明：圖片中所顯示的，第一條帶為標準蛋白maker，2-4條帶為稀釋3倍的膠原蛋白樣品，5-7條帶為稀釋5倍的膠原蛋白樣品，8-10條帶為稀釋10倍的膠原蛋白樣品，電泳圖片表明稀釋5倍的條帶比較清晰。圖片顯示蛋白分子量為116kDa左右，符合相關文獻的報道，提取的膠原為Ⅱ型膠原蛋白。

2.2 紫外分析結果

通過在200—500nm的波長下對稀釋不同倍數的樣品進行掃描，獲得了較好的效果，最大吸收波長均在230nm，與文獻報道的Ⅰ型膠原蛋白的最大吸收波長一致。結果見圖四

3 結論

（1）鹿茸為原料提取膠原蛋白，方法簡便易行，從對其冷藏條件下為凍狀可以鑒定出所提取的物質為膠原。

（2）從電泳的結果看，所提取的物質為膠原的水解產物，膠原蛋白或者是明膠，因為膠原的分子量為300kDa，但其水解后的產物膠原蛋白的分子量為十萬左右，符合文獻的報道。

（3）從紫外分析的結果看，所提取的物質中含有Ⅰ型膠原蛋白。

基金項目：錫林郭勒職業學院研究課題（編號：QN-2019-02）。

（作者單位：錫林郭勒職業學院）