魏薇 王會芝 肖文霞 欒艷秋

【摘要】 目的:測定胎膜早破孕婦血清中Caspase-1、IL-1β與IL-18的水平,并分析其在胎膜早破發病中的意義。方法:用ELSIA法對35例胎膜早破孕婦和30例正常孕足月婦女血清中Caspase-1、IL-1β與IL-18進行測定。結果:與正常孕足月組相比,胎膜早破組血清中的Caspase-1、IL-1β與IL-18水平均明顯高,差異有統計意義(P<0.05);胎膜早破婦女血清中Caspase-1與IL-1β呈正相關(P<0.01);也與IL-18呈正相關(P<0.01)。結論:Caspase-1、IL-1β與IL-18參與了胎膜早破的發病過程。
【關鍵詞】 胎膜早破; Caspase-1; IL-1β; IL-18
doi:10.14033/j.cnki.cfmr.2019.05.005 文獻標識碼 A 文章編號 1674-6805(2019)05-00-03
Detection and Significance of Caspase-1,IL-1β and IL-18 in Serum of Pregnant Women with Premature Rupture of Membranes/WEI Wei,WANG Huizhi,XIAO Wenxia,et al.//Chinese and Foreign Medical Research,2019,17(5):-13
【Abstract】 Objective:To determine levels of maternal serum Caspase-1,IL-1β and IL-18 in patients with premature rupture of membranes(PROM) in order to analyze their significance in pathogenesis of PROM.Method:The levels of maternal serum Caspase-1,IL-1β and IL-18 of 35 patients with preterm premature rupture of membranes,30 term-pregnant women were detected by ELISA.Result:The levels of maternal serum Caspase-1,IL-1β and IL-18 of patients with preterm premature rupture of membranes were all higher than that of term-pregnant women(P<0.05).The levels of maternal serum Caspase-1 of patients with preterm premature rupture of membranes were positively correlated with IL-1β(P<0.01),so were Caspase-1 with IL-18(P<0.01).
Conclusion:Caspase-1,IL-1β and IL-18 all take part in the pathogenesis of premature rupture of membranes.
【Key words】 Premature rupture of membranes; Caspase-1; IL-1β; IL-18
First-authors address:The First Maternal and Child Health Hospital of Eastern District in Beijing,Beijing 100007,China
胎膜早破是指臨產前胎膜自然破裂。胎膜早破可引起絨毛膜羊膜炎、敗血癥、胎盤早剝和子宮內膜炎,也可引起早產、新生兒腦室出血、腦室周圍白質軟化、腦癱等[1],對母兒威脅較大。因此,積極尋找胎膜早破的病因,減少胎膜早破的發生,對于減少母嬰并發癥,改善母兒圍生期結局具有重要意義。目前有研究表明感染是胎膜早破發生的重要原因之一[2]。而人體對抗感染的重要機制是固有免疫,固有免疫是機體的第一道防線,可區分“自己”和“非自己”[3],可以對病原體感染做出反應[4]。Caspase-1(半胱氨酸天冬氨酸特異性蛋白酶)可在固有免疫中發揮重要作用,Caspase-1可切割IL-1β與IL-18前體,使其變成活性形式,并可啟動一種炎性細胞死亡——細胞焦亡[5]。因此筆者推測Caspase-1、IL-1β與IL-18參與了胎膜早破的發病過程。本研究應用酶聯免疫吸附法(ELISA)測定胎膜早破及對照組血清中Caspase-1、IL-1β與IL-18水平,研究Caspase-1、IL-1β與IL-18在胎膜早破中可能發生的作用。
1 資料與方法
1.1 一般資料
選取2016年10月-2018年1月筆者所在醫院產科病房孕婦65例,分為兩組:胎膜早破孕婦35例為胎膜早破組;正常孕足月婦女30例為正常孕足月組。病例組年齡20~44歲,平均(29.5±1.4)歲,孕周28~41周,平均(37.1±0.8)周;正常孕足月組年齡22~42歲,平均(28.4±1.3)歲,孕周37~41周,平均(39.1±0.3)周。兩組均為單胎孕婦,無其他妊娠并發癥及內外科合并癥,無宮內感染及其他臨床發熱征象。胎膜早破診斷標準:臨產前孕婦感覺陰道內有尿樣液體流出;窺器打開時,可見液體自宮頸流出或后穹隆較多積液,并見到胎脂樣物質;陰道液pH測定:pH≥6.5;陰道液涂片可見羊齒植物狀結晶(8版《婦產科學》)。本研究由筆者所在醫院倫理委員會批準。
1.2 方法
1.2.1 標本制備 一旦確診為胎膜早破,收入院后即抽取靜脈血2~3 ml,正常足月孕婦在入院引產或擇期剖宮產前抽取靜脈血2~3 ml,室溫下充分凝血,2 000 r/min離心10 min,分離血清,置于-80 ℃冰箱待測。
1.2.2 實驗步驟 用ELISA試劑盒檢測血清中Caspase-1、IL-1β與IL-18的水平,測量的步驟嚴格按照說明書進行。
1.3 統計學處理
所得數據采用SPSS 13.0處理,計量資料以(x±s)表示,檢驗方法采用方差齊性檢驗及t檢驗,P<0.05為差異有統計學意義。
2 結果
2.1 兩組婦女血清中Caspase-1、IL-1β與IL-18含量比較
與正常孕足月組相比,胎膜早破組血清中的Caspase-1、IL-1β與IL-18均明顯高,差異有統計意義(P<0.05),見表1。
2.2 胎膜早破婦女血清中Caspase-1與IL-1β、IL-18相關性
血清中Caspase-1與IL-1β呈正相關(r=0.378,P<0.01);Caspase-1與IL-18呈正相關(r=0.582,P<0.01)。
3 討論
胎膜早破發生率在國外為5%~15%,在國內為2.7%~7%。胎膜由羊膜及絨毛膜組成。羊膜是胎膜的最重要結構,有兩種細胞組成:表面的上皮細胞和下層的間質細胞。間質細胞可產生基質膠原(Ⅰ、Ⅲ、Ⅴ型)以保持羊膜的完整性[6]。胎膜破裂可以由羊膜細胞死亡而引起;也可由組成細胞外基質的膠原蛋白降解,使細胞之間的連接破壞而引起,也可上述兩種因素同時作用而引起。
Caspase-1又稱IL-1β轉化酶,是第一個在哺乳動物中發現的半胱氨酸天冬氨酸特異性蛋白酶[7],可以調節宿主抗菌、組織修復、腫瘤轉移、代謝及膜的生物合成等[8]。Caspase-1以酶原的形式存在,并在炎性小體內被激活,炎性小體是一種胞漿內的大分子蛋白復合物,由識別分子、接頭蛋白ASC(凋亡相關斑點樣蛋白)及Caspase-1前體組成[9]。在病原相關分子模式(PAMPs)或危險相關分子模式(DAMPs)刺激下,炎性小體組裝在一起[10],從而觸發了Caspase-1前體自我催化切割,形成P10/P20四聚體,成為活性Caspase-1。激活的Caspase-1可激活炎性細胞因子IL-1β(白介素-1β)和IL-18(白介素-18)前體,使轉化成為活性形式[11];激活的Caspase-1還可切割gasderminD(GSDMD)(消化道皮膚素D),使其形成31 KD的N末端(GSDMDNterm)和22 KD的C末端(GSDMDcterm)片段,N末端可錨定細胞膜上的脂質及其他成分,組裝成弧形、裂隙形及環形的寡聚體,每個寡聚體都可形成穿透細胞膜的小孔[12]。小孔的形成破壞了細胞膜的完整性,可使陽離子特別是Ca2+內流,破壞細胞的滲透壓和電化學梯度,使水分內流,增加了細胞內的壓力,導致細胞腫脹和溶解[13],引起一種程序性細胞死亡—細胞焦亡,隨后細胞內的大量炎癥介質包括活性IL-1β和IL-18分泌到細胞外;這些小孔直徑10~16 nm,而成熟的IL-1β和IL-18分子直徑大約為4 nm,這種孔的直徑足以允許成熟的IL-1β和IL-18的通過[14],IL-1β和IL-18也可在細胞溶解前或無細胞溶解情況下分泌到細胞外[15]。因此細胞溶解、死亡和IL-1β和IL-18分泌是Caspase-1激活的下游事件。本研究結果顯示:與對照組相比,胎膜早破組血清中Caspase-1明顯升高,差異有統計學意義(P<0.05),說明Caspase-1參與了胎膜早破的發病過程。因此本研究推測Caspase-1在激活后,切割了gasderminD,形成了穿透細胞膜的小孔,導致了胎膜細胞腫脹和溶解,引起胎膜細胞焦亡,從而引起胎膜早破。
IL-1β屬于IL-1細胞因子家族,是強有力的促炎因子。IL-1β前體在細胞內被Caspase-1激活形成成熟的活性形式,并依賴于gasderminD形成的小孔在細胞溶解前分泌到細胞外[15],或在gasderminD引起細胞溶解、細胞焦亡后大量分泌到細胞外。在分泌到細胞外后,活性IL-1β可與IL-1受體相結合以啟動免疫反應,這對于保護機體免受病原體侵害及調節組織損傷后愈合非常重要[16];分泌到細胞外的活性IL-1β還可引起白細胞遷移和激活,有利于機體控制和最終清除細菌[17];IL-1β還可誘導細胞遷移和歸位,并能激活下游蛋白激酶級聯反應,引起炎性蛋白表達;還可增加淋巴細胞和嗜伊紅細胞黏附和跨內皮遷移[18]。另外,IL-1β還可引起痛覺過敏和血管舒張,并可作為一種內源性熱原質,引起發熱或激活免疫細胞[14]。一些研究表明,IL-1β可誘導不同類型的基質金屬蛋白酶(MMPs)表達增加[18],而MMPs可通過調節胎膜組織的細胞外基質蛋白代謝,從而降解細胞外基質膠原而引起胎膜破裂[19-20]。本研究結果顯示:與正常孕足月組相比,胎膜早破組IL-1β水平明顯高,說明IL-1β在胎膜早破過程中發揮了重要作用。
IL-18是另一種強有力促炎因子,與IL-1β同屬于IL-1細胞因子家族。與IL-1β一樣,IL-18也可被Caspase-1激活形成成熟的活性形式,在細胞溶解前通過gasderminD小孔或在細胞溶解后分泌到細胞外。在分泌到細胞外后,IL-18可促進Th1細胞、自然殺傷細胞(NK cell)和細胞毒性T細胞分泌干擾素-γ(IFN-γ)[7],而IFN-γ能誘導MMP-2的表達[21]。本研究結果顯示:與正常孕足月組相比,胎膜早破組IL-18水平明顯升高,說明IL-18在胎膜早破過程中也發揮了重要作用。因此本研究推測:Caspase-1可激活IL-1β和IL-18,而IL-1β和IL-18可誘導多種基質金屬蛋白酶(MMPs)表達增加,從而降解胎膜細胞外基質,導致胎膜早破。
本研究還顯示:胎膜早破婦女血清中Caspase-1與IL-1β呈正相關(r=0.378,P<0.01);也與IL-18呈正相關(r=0.582,P<0.01),說明Caspase-1可能通過IL-1β、IL-18發揮作用,從而在胎膜早破發病過程中發揮重要作用。
總之,胎膜孕婦血清中Caspase-1、IL-1β與IL-18水平均升高,說明Caspase-1、IL-1β與IL-18參與了胎膜早破的發病過程。Caspase-1、IL-1β與IL-18可作為新的預防與治療靶點。因此,尋找Caspase-1、IL-1β與IL-18的拮抗劑,抑制其作用,截斷其反應通路,有望成為預防與治療胎膜早破的新途徑。關于Caspase-1、IL-1β與IL-18與胎膜早破的關系有待于進一步深入研究。
參考文獻
[1] Saghafi N,Pourali L,Ghazvini K,et al.Cervical bacterial colonization in women with preterm premature rupture of membrane and pregnancy outcomes:A cohort study[J].Int J Reprod Biomed(Yazd),2018,16(5):341-348.
[2] Zhu J,He M,Ma C,et al.Expression and Clinical Significant of NOD-Like Receptor Protein 3(NLRP3) and Caspase-1 in Fetal Membrane and Placental Tissues of Patients with Premature Rupture of Membrane[J].Med Sci Monit,2018,24:1560-1566.
[3] Fan S,Yuan J,Deng S,et al.Activation of interleukin-1? release by the classical swine fever virus is dependent on the NLRP3 inflammasome,which affects virus growth in monocytes[J].Front Cell Infect Microbiol,2018,8:225.
[4] Zhou W,Chen C,Chen Z,et al.NLRP3:A Novel Mediator in Cardiovascular Disease[J].J Immunol Res,2018,2018:5702103.
[5] Qu W,Wang Y,Wu Y,et al.Triggering receptors expressed on myeloid cells 2 promotes corneal resistance against pseudomonas aeruginosa by inhibiting caspase-1-dependent pyroptosis[J].Front Immunol,2018,9:1121.
[6] Mogami H,Hari Kishore A,Akgul Y,et al.Healing of Preterm Ruptured Fetal Membranes[J].Sci Rep,2017,7(1):13139.
[7] Man S M,Karki R,Kanneganti T D.Molecular mechanisms and function of pyroptosis,inflammatory caspases and inflammasomes in infectious disease[J].Immunol Rev,2017,277(1):61-75.
[8] Man S M,Karki R,Briard B,et al.Differential roles of caspase-1 and caspase-11 in infection and inflammation[J].Sci Rep,2017,7:45126.
[9] Eckhart L,Tschachler E.Control of cell death-associated danger signals during cornification prevents autoinflammation of the skin[J].Exp Dermatol,2018,27(8):884-891.
[10] Malik A,Kanneganti T D.Inflammasome activation and assembly at a glance[J].J Cell Sci,2017,130(23):3955-3963.
[11] Shao B Z,Xu Z Q,Han B Z,et al.NLRP3 inflammasome and its inhibitors:a review[J].Front Pharmacol,2015,5(6):262.
[12] Mulvihill E,Sborgi L,Mari SA,et al.Mechanism of membrane pore formation by human gasdermin-D[J].EMBO J,2018,37(14):e98321.
[13] DiPeso L,Ji D X,Vance R E,et al.Cell death and cell lysis are separable events during pyroptosis[J].Cell Death Discov,2017,13(3):17070.
[14] Feng S,Fox D,Man S M.Mechanisms of Gasdermin Family Members in Inflammasome Signaling and Cell Death[J].J Mol Biol,2018,430(18 Pt B):3068-3080.
[15] Heilig R,Dick M S,Sborgi L,et al.The Gasdermin-D pore acts as a conduit for IL-1? secretion in mice[J].Eur J Immunol,2018,48(4):584-592.
[16] Conos S A,Lawlor K E,Vaux D L,et al.Cell death is not essential for caspase-1-mediated interleulin-1? activation and secretion[J].Cell Death Differ,2016,23(11):1827-1838.
[17] Xu Y J,Zheng L,Hu Y W,et al.Pyroptosis and its relationship to atherosclerosis[J].Clin Chim Acta,2018,476:28-37.
[18] Chen M S,Lin C Y,Chiu Y H,et al.IL-1?-induced matrix metalloprotease-1 promotes mesenchymal stem cell migration via PAR1 and G-protein-coupled signaling pathway[J].Stem Cells Int,2018,2018:3524759.
[19] Zuo G,Dong J X,Zhao F F,et al.Expression of matrix metalloproteinase-9 and its substrate level in patients with premature rupture of membranes[J].J Obstet Gynaecol,2017,37(4):441-445.
[20] Sukhikh G T,Kan N E,Tyutyunnik V L,et al.The role of extracellular inducer matrix metalloproteinases in premature rupture of membranes[J].
J Matern Fetal Neonatal Med,2016,29(4):656-659.
[21] Cai Y L,Wang Z W.The expression and significance of IL-6,IFN-γ,SM22a,and MMP-2 in rat model of aortic dissection[J].Eur Rev Med Pharmacol Sci,2017,21(3):560-568.