浩楠,馬騰臻,贠建民,楊學(xué)山,李愛霞,陳彥雄,韓舜愈*
1(甘肅農(nóng)業(yè)大學(xué) 食品科學(xué)與工程學(xué)院,甘肅省葡萄與葡萄酒工程學(xué)重點(diǎn)試驗(yàn)室,甘肅省葡萄與葡萄酒產(chǎn)業(yè)技術(shù)研發(fā)中心,甘肅 蘭州,730070) 2(甘肅祁連葡萄酒業(yè)有限責(zé)任公司,甘肅 高臺(tái),734304)

對(duì)乳酸菌的篩選方向主要以MLF的高耐受性、高抗氧化活性、產(chǎn)香能力[5-8]等方面為主。目前,已確定可進(jìn)行蘋乳發(fā)酵的乳酸菌分別為酒球菌屬(Oenococcus)、明串珠菌屬(Leuconostoc)、乳桿菌屬(Lactobacillus)和片球菌屬(Pediococcus)[9-10]。在推廣應(yīng)用方面,酒類酒球菌(Oenococcusoeni)因其快速啟動(dòng)蘋乳發(fā)酵、耐受性能優(yōu)良等優(yōu)點(diǎn)在葡萄酒發(fā)酵中得到廣泛使用[11-13]。然而,我國(guó)目前所用的主導(dǎo)MLF的乳酸菌主要是國(guó)外商品菌株,國(guó)內(nèi)本土菌株使用較少,造成不同產(chǎn)區(qū)葡萄酒品質(zhì)同質(zhì)化嚴(yán)重,不利于國(guó)產(chǎn)葡萄酒的發(fā)展[14-15],因此加強(qiáng)本土乳酸菌資源的開發(fā)與利用,篩選出適合我國(guó)不同地域葡萄酒生產(chǎn)的優(yōu)良乳酸菌菌株具有重要意義。
甘肅河西走廊是我國(guó)釀酒葡萄的主要種植區(qū)之一,蘊(yùn)藏著豐富的野生乳酸菌資源,有待科研和釀酒工作者的開發(fā)使用。本實(shí)驗(yàn)采用改良MRS分離培養(yǎng)基從甘肅祁連葡萄酒有限責(zé)任公司處于自然蘋乳發(fā)酵的干紅葡萄酒中分離得到乳酸菌,對(duì)其進(jìn)行形態(tài)學(xué)、生理生化試驗(yàn)和分子生物學(xué)鑒定,并研究其在葡萄酒環(huán)境下對(duì)pH值、SO2質(zhì)量濃度、乙醇體積分?jǐn)?shù)和發(fā)酵溫度的耐受性,以期得到釀酒性狀優(yōu)良的乳酸菌,為提升河西走廊產(chǎn)區(qū)葡萄酒品質(zhì)提供理論依據(jù)和技術(shù)支持。
1.1.1 試驗(yàn)材料
本試驗(yàn)所用葡萄酒樣采樣于2016年10月甘肅祁連葡萄酒業(yè)有限責(zé)任公司,釀造實(shí)驗(yàn)采用實(shí)驗(yàn)室酒精發(fā)酵結(jié)束的葡萄酒(殘?zhí)?.02 g/L;pH 3.44;總酸7.07 g/L)。
1.1.2 藥品與試劑
商品乳酸菌2株:OMEGA和VP41,法國(guó)Lallemand公司;放線菌酮:美國(guó)Sigma公司;L-蘋果酸、L-乳 酸含量測(cè)定試劑盒:愛爾蘭Megazyme公司;蛋白胨、酵母浸粉、牛肉膏、結(jié)晶紫等其他試劑均為天津市光復(fù)精細(xì)化工研究所;酚酞指示劑、NaOH標(biāo)準(zhǔn)液等均按GB/T 603—2002《化學(xué)試劑試驗(yàn)方法中所用制劑及制品的制備》進(jìn)行配制;革蘭氏染色劑等按GB 478935—2010《食品安全國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)食品微生物學(xué)檢驗(yàn)乳酸菌檢驗(yàn)》進(jìn)行配制。
1.1.3 主要儀器
生化培養(yǎng)箱,上海新苗醫(yī)療器械制造有限公司;YXQ-LS-5011立式壓力蒸汽滅菌鍋,上海博訊實(shí)業(yè)有限公司醫(yī)療設(shè)備廠;827型pH,計(jì)上海雷磁公司;Genesis 10S型紫外-可見分光光度儀,美國(guó)Thermo Scientific公司;CP 214型電子天平,上海奧豪斯儀器有限公司;1810D超純水機(jī),重慶摩爾水處理設(shè)備有限公司;光學(xué)顯微鏡,尼康儀器(上海)有限公司;S·SW-CJ-1FD超凈工作臺(tái)、S·HH·W21·600S水浴鍋、GZX-GF101-Ⅱ恒溫干燥箱,上海躍進(jìn)醫(yī)療器械有限公司。
1.2.1 培養(yǎng)基與乳酸菌分離純化
基礎(chǔ)液體改良MRS培養(yǎng)基[16](g/L):蛋白胨10,酵母浸粉5,牛肉膏10,葡萄糖20,無水醋酸鈉3,檸檬酸銨2,吐溫-80 1,K2HPO42,MgSO4·7H2O 0.2,MnSO4·4H2O 0.05, 鹽酸半胱氨酸0.5;番茄汁的體積分?jǐn)?shù)20%;用1 mol/L NaOH調(diào)節(jié)pH 6.2~6.4,蒸餾水配制,121 ℃滅菌20 min。固體培養(yǎng)基:在液體培養(yǎng)基中加入20瓊脂。分離培養(yǎng)基:基礎(chǔ)液體MRS培養(yǎng)基加50 mg/L放線菌酮。
模擬葡萄酒的配制[17](g/L):蘋果酸3.0,酒石酸3.0,檸檬酸0.5,無水葡萄糖4.0,NaCl 0.2,(NH4)2SO41.0,KH2PO42.0,MgSO4·7H2O 0.2,MnSO40.05,酵母浸粉4;用10 mol/L NaOH調(diào)節(jié)模擬酒pH至3.4,蒸餾水配制,121 ℃滅菌20 min。SO2(以偏重亞硫酸鉀計(jì))20 mg/L, 乙醇的體積分?jǐn)?shù)為10%,滅菌后加入。
乳酸菌的分離純化:采用梯度稀釋平板法[16],將葡萄酒樣按梯度10-1、10-2、10-3、10-4、10-5、10-6、10-7、10-8稀釋后,吸取0.1 mL涂于分離培養(yǎng)基上對(duì)菌株進(jìn)行分離,27 ℃恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)5~7 d,挑取分離培養(yǎng)基上菌落形態(tài)為乳白色、光滑、菌落直徑小于1 mm的單菌落反復(fù)進(jìn)行劃線分離直至純化。
1.2.2 菌株的鑒定
形態(tài)學(xué)鑒定:用快速壓片法對(duì)初篩菌株進(jìn)行制片,光學(xué)顯微鏡下油鏡鏡檢[18]。
革蘭氏染色實(shí)驗(yàn)按照以下步驟進(jìn)行:
涂菌→干燥→初染→媒染→脫色→復(fù)染→鏡檢
過氧化氫酶實(shí)驗(yàn):取一環(huán)純化后的培養(yǎng)菌,涂于干凈的載玻片上,然后在其上滴加3%(體積分?jǐn)?shù))的H2O2,于半分鐘內(nèi)有氣泡則為陽性反應(yīng),無氣泡為陰性反應(yīng)[19]。
生理生化鑒定:根據(jù)文獻(xiàn)及Bergey’S細(xì)菌鑒定手冊(cè)[19-20]對(duì)乳酸菌生理生化特征的描述標(biāo)準(zhǔn),并結(jié)合其釀酒適應(yīng)性對(duì)初篩菌株進(jìn)行鑒定。
1.2.3 蘋果酸分解能力及降酸能力測(cè)定
蘋果酸分解能力:在無菌條件下,將初篩菌株接入含有L-蘋果酸(3 g/L)的MRS液體培養(yǎng)基中,每隔24 h進(jìn)行1次紙層析監(jiān)測(cè),并觀察蘋果酸斑點(diǎn)的變化,蘋果酸斑點(diǎn)消失即為蘋果酸分解完畢[21]。
降酸能力測(cè)定:將供試菌株以107CFU/mL接種至模擬酒中,20 ℃條件下培養(yǎng),采用酸堿滴定法[22],在發(fā)酵過程中每隔24 h取樣2 mL,加入50 mL蒸餾水,2滴酚酞指示劑,用0.05 mol/L NaOH標(biāo)準(zhǔn)溶液滴定至終點(diǎn)并計(jì)算,結(jié)果以酒石酸計(jì)(g/L)。
1.2.4 分子生物學(xué)鑒定
初篩菌株的分子生物學(xué)鑒定采用16S rDNA分析的方法,由上海生工生物工程有限公司對(duì)菌株進(jìn)行測(cè)序。測(cè)序結(jié)果通過DNA STAR完成序列處理,將處理好的乳酸菌的16S rDNA及基因序列提交到NCBI/Gen Bank,用BLAST程序與Gen Bank數(shù)據(jù)庫(kù)中已知的乳酸菌的16S rDNA基因序列進(jìn)行相似性比較分析。
對(duì)pH值、SO2、乙醇濃度適應(yīng)性篩選:分別將供試菌株與商品酒類酒球菌OMGEA與VP41以107CFU/mL 的接種量接種至不同pH值(3.0、3.2、3.4、 3.6、3.8),不同SO2質(zhì)量濃度(10、30、50、70、90 mg/L), 不同乙醇體積分?jǐn)?shù)(8%、10%、12%、14%、16%)的模擬葡萄酒(121 ℃滅菌20 min)中,20 ℃ 靜置培養(yǎng),觀察菌株生長(zhǎng)情況并用分光光度法對(duì)菌密度OD600進(jìn)行測(cè)定。
對(duì)發(fā)酵溫度適應(yīng)性篩選:將供試菌株與商品酒類酒球菌OMGEA與VP41以107CFU/mL的接種量接種至模擬葡萄酒中以不同發(fā)酵溫度(12、15、18、21、25 ℃) 靜置培養(yǎng)并對(duì)菌密度OD600進(jìn)行測(cè)定。
將供試菌株與商品酒類酒球菌OMGEA與VP41以107CFU/mL的接種量接種至酒精發(fā)酵結(jié)束的葡萄酒中進(jìn)行蘋乳發(fā)酵,發(fā)酵溫度20 ℃,采用紙層析法進(jìn)行過程監(jiān)測(cè),發(fā)酵結(jié)束后采用酶試劑盒測(cè)定葡萄酒中L-蘋果酸和L-乳酸的含量。
試驗(yàn)數(shù)據(jù)采用Excel 2010和SPSS 19.0分析處理。
通過稀釋涂布平板分離法和平板劃線分離法,在MRS分離培養(yǎng)基上分離純化得到24株菌株,對(duì)篩選菌株進(jìn)行了編號(hào)(見表1)。

表1 分離菌株一覽表Table 1 Isolated strains
2.2.1 形態(tài)學(xué)鑒定
27 ℃條件下培養(yǎng)5 d,菌株在固體培養(yǎng)基表面形成直徑小于1 mm的光滑乳白色菌落,隨著培養(yǎng)時(shí)間的延長(zhǎng),也存在大于1 mm的情況。分離菌株在MRS固體培養(yǎng)基上的生長(zhǎng)情況,符合文獻(xiàn)[23]對(duì)乳酸菌的描述。通過革蘭氏染色和顯微鏡對(duì)菌株進(jìn)行鏡檢,結(jié)果發(fā)現(xiàn),菌株細(xì)胞革蘭氏染色均為陽性,且細(xì)胞均呈橢圓或球形、成對(duì)排列。符合《乳酸菌分類鑒定及實(shí)驗(yàn)方法》[19]中對(duì)細(xì)菌形態(tài)學(xué)的描述標(biāo)準(zhǔn)。
2.2.2 過氧化氫酶實(shí)驗(yàn)
初步篩選的菌株(表1)經(jīng)過氧化氫酶實(shí)驗(yàn),得到如下結(jié)果(表2)。所篩選的24株菌株中有14株菌株為陰性,符合對(duì)乳酸菌過氧化氫酶實(shí)驗(yàn)的描述[19]。

表2 菌株過氧化氫酶實(shí)驗(yàn)Table 2 Catalase experiment of Isolates strains
注:+:陽性,-:陰性;菌株及編號(hào)參照表1。
2.2.3 生理生化鑒定
對(duì)上述14株初篩菌株進(jìn)行糖發(fā)酵試驗(yàn)(表3),結(jié)果表明菌株符合《細(xì)菌鑒定手冊(cè)》[20]對(duì)乳酸菌屬生理生化特征的描述標(biāo)準(zhǔn)。其中編號(hào)4,14,17,18的菌株符合對(duì)短乳桿菌(Lactobacillusbrevis)的特征描述,編號(hào)9,22的菌株符合對(duì)Lactobacilluskunkeei的特征描述。編號(hào)3,6,7,12,15,19,21,24的菌株符合對(duì)小片球菌(Pediococcusparvulus)的特征描述。

表3 初篩菌株糖發(fā)酵實(shí)驗(yàn)Table 3 Sugar fermentation experiment of preliminary screening strains
注:+:陽性,-:陰性;菌株及編號(hào)參照表1。
2.3.1 蘋果酸分解實(shí)驗(yàn)
乳酸菌的蘋果酸分解能力是評(píng)估其降酸能力的主要指標(biāo)。將上述菌株的蘋果酸分解能力由紙層析進(jìn)行初步確定。由圖1可以看出,編號(hào)為3,7,12,15,19的5株菌株具有較好的蘋果酸分解能力,分別在發(fā)酵的72,72,84,96,84 h蘋果酸斑點(diǎn)消失。編號(hào)為6,21,24的菌株分解蘋果酸能力較差,基本不具備蘋果酸分解能力。而編號(hào)為4,9,14,17,18,22的菌株完全不具有蘋果酸分解能力(數(shù)據(jù)未顯示)。

圖1 初篩菌株蘋果酸分解實(shí)驗(yàn)Fig.1 Malic acid decomposition test of primary screening strains注:M:L-蘋果酸標(biāo)品; L:L-乳酸標(biāo)品;菌株及編號(hào)參照表1。
2.3.2 降酸能力實(shí)驗(yàn)
將上述具有蘋果酸分解能力的5株菌株進(jìn)行降酸能力測(cè)定,結(jié)果見圖2。隨著發(fā)酵時(shí)間的增加,發(fā)酵液中的總酸含量逐漸減少。在發(fā)酵的第1~2天菌株處于適應(yīng)期,對(duì)發(fā)酵液中的酸分解緩慢,但在發(fā)酵的第3~6天各菌株發(fā)酵液中的總酸含量下降最快(按酒石酸計(jì))。與商業(yè)菌株OMEGA和VP41對(duì)比,篩選得到的菌株都具有較好的降酸能力。其中,C302-3、C321-3菌株在發(fā)酵的初期降酸緩慢,但隨著菌株對(duì)發(fā)酵液環(huán)境的適應(yīng)最終能與商業(yè)菌株的降酸能力差異不顯著。而C171-1、C301-1、F461-1菌株的整個(gè)降酸過程的趨勢(shì)與商品菌株相似。

圖2 初篩菌株的降酸能力Fig.2 The ability of primary screening strains to degrade acid
將經(jīng)過上述實(shí)驗(yàn)篩選出的菌株C171-1、C301-1、C302-3、C321-3、F461-1進(jìn)行分子生物學(xué)鑒定。
2.4.1 凝膠電泳檢測(cè)結(jié)果
電泳檢測(cè)5株菌株的PCR擴(kuò)增產(chǎn)物。由圖3可知,5個(gè)擴(kuò)增產(chǎn)物均在1 500~2 000 bp有1條擴(kuò)增帶。

圖3 初篩菌株的PCR電泳圖Fig.3 The PCR electrophoretogram of screened strains注:MK-Marker,A-C171-3、B-C301-1、C-C302-3、D-C321-3、E-F461-1。
2.4.2 16S rDNA測(cè)序比對(duì)
將5個(gè)初篩菌株的16S rDNA序列測(cè)定結(jié)果在Gen Bank用BLAST程序進(jìn)行比對(duì),基因系統(tǒng)進(jìn)化樹見圖4,比對(duì)結(jié)果如下:C171-3與C321-3為PediococcusparvulusNi555(登錄號(hào):AB601176.1);C301-1與C302-3為PediococcusparvulusMA55(登錄號(hào):KY425789.1);F461-1為Pediococcusparvulusgp116(登錄號(hào):KM495950.1)。最終得知這3株菌株均為乳酸菌屬的小片球菌(Pediococcusparvulus)。

圖4 初篩菌株的基因系統(tǒng)進(jìn)化樹圖譜Fig.4 Phylogenetic tree establishment of lactic acid bacteria from 5 species
將上述鑒定的3株菌株(簡(jiǎn)化為C30、C17、F46)進(jìn)行釀酒適應(yīng)性測(cè)定,通過對(duì)pH值、SO2質(zhì)量濃度、乙醇體積分?jǐn)?shù)與發(fā)酵溫度這4個(gè)釀造條件的耐受性進(jìn)行分析。
2.5.1 pH
pH值是影響乳酸菌生長(zhǎng)的重要因素。從圖5可以看出,pH值對(duì)菌株的生長(zhǎng)影響十分顯著。隨著pH的升高,菌株的OD600值呈上升趨勢(shì),即菌株的生長(zhǎng)能力隨著pH的升高而增強(qiáng)。干紅葡萄酒的pH值多為3.4~3.6[15],pH為3.4時(shí),與商品菌株OMEGA及VP41比較,菌株C30的OD600值與商品菌株差異不顯著(P>0.05)且表現(xiàn)出良好的耐受性。盡管菌株F46和C17生長(zhǎng)能力較商品菌株弱,但也能啟動(dòng)蘋乳發(fā)酵。

圖5 菌株的pH耐受能力Fig.5 The ability of the strain to tolerate pH
2.5.2 SO2質(zhì)量濃度
加入適量的SO2對(duì)葡萄酒中的有害微生物具有抑制作用,同時(shí)可達(dá)到抗氧化等作用[21]。因此,需對(duì)菌株進(jìn)行SO2的耐受性考察。從圖6可以看出,隨著SO2濃度的增加,菌株的OD600值呈下降趨勢(shì),即菌株的生長(zhǎng)能力隨著SO2濃度的增加而降低。當(dāng)SO2質(zhì)量濃度為50 mg/L時(shí),與商品菌株比較,菌株C30與F46表現(xiàn)出強(qiáng)于商品菌株的SO2耐受性,表明篩選的C30與F46菌株在一般葡萄酒含有的SO2濃度下具有較強(qiáng)的耐受性。然而當(dāng)SO2質(zhì)量濃度為90 mg/L時(shí),所有菌株均已不能生長(zhǎng)。

圖6 菌株的SO2耐受能力Fig.6 The ability of the strain to tolerate SO2
2.5.3 乙醇體積分?jǐn)?shù)
葡萄酒的乙醇體積分?jǐn)?shù)也是抑制乳酸菌生長(zhǎng)的主要因素,當(dāng)乙醇體積分?jǐn)?shù)達(dá)到10%時(shí)就會(huì)抑制菌株的生長(zhǎng)[17]。從圖7可以看出,隨著乙醇體積分?jǐn)?shù)的增加,菌株的OD600值呈下降趨勢(shì),即菌株的生長(zhǎng)能力隨著乙醇體積分?jǐn)?shù)的增加而降低。當(dāng)乙醇體積分?jǐn)?shù)為10%時(shí),篩選的3株菌株表現(xiàn)出較商品乳酸菌更好的耐受性。一般葡萄酒的酒精度在12%~14%,當(dāng)乙醇體積分?jǐn)?shù)為14%時(shí),菌株C30的OD600值為0.23,與商品菌株差異顯著(P<0.05),但在乙醇體積分?jǐn)?shù)為16%時(shí),5株菌株的生長(zhǎng)均受到強(qiáng)烈抑制。

圖7 菌株的乙醇耐受能力Fig.7 The ability of the strain to tolerate alcohol
2.5.4 發(fā)酵溫度
干紅葡萄酒的蘋乳發(fā)酵溫度為18~20 ℃[17]。此次篩選出的菌株來自于河西走廊地區(qū),該地區(qū)屬于冷涼的地區(qū),由于該地區(qū)在蘋乳發(fā)酵時(shí)發(fā)酵溫度較低,因此菌株需對(duì)發(fā)酵溫度具有一定的耐受性[24]。從圖8可以看出,隨著發(fā)酵溫度的升高,菌株的OD600值呈上升趨勢(shì),即菌株的生長(zhǎng)能力隨著發(fā)酵溫度的升高而增強(qiáng)。圖中篩選的3株菌株在不同的發(fā)酵溫度條件下的生長(zhǎng)能力較2株商品菌株強(qiáng)。但當(dāng)發(fā)酵溫度為15 ℃時(shí),篩選的3株菌株與商品菌株差異顯著(P<0.05),表明其在較低溫度條件下也有較強(qiáng)的生長(zhǎng)能力。

圖8 菌株的發(fā)酵溫度耐受能力Fig.8 The ability of the strain to tolerate the temperature of the fermentation
在經(jīng)供試菌株與商品酒類酒球菌OMGEA與VP41發(fā)酵的葡萄酒中,L-蘋果酸和L-乳酸的含量見表4。數(shù)據(jù)顯示,酒樣中的L-蘋果酸被菌株消耗轉(zhuǎn)化為L(zhǎng)-乳酸,與商品菌株OMEGA和VP41發(fā)酵酒樣比較,菌株C30、C17、F46發(fā)酵酒樣中L-蘋果酸和L-乳酸含量差異不顯著,表明篩選的菌株具有較好的分解L-蘋果酸的能力。

表4 葡萄酒中L-蘋果酸和L-乳酸的含量Table 4 The content of L-malic acid and L-lactic acid in wine
注:表中同一指標(biāo)內(nèi)不同字母代表差異顯著,樣本量n=3,P<0.05。
本試驗(yàn)篩選的菌株均為小片球菌(P.parvulus),而最終分離的菌株當(dāng)中沒有酒類酒球菌,這可能與其生長(zhǎng)力較弱有關(guān)[14]。在液體培養(yǎng)基中,由于沒有乙醇等的抑制,生長(zhǎng)能力強(qiáng)的乳桿菌、片球菌等乳酸菌爭(zhēng)奪了培養(yǎng)基中的大部分營(yíng)養(yǎng),使酒類酒球菌等長(zhǎng)勢(shì)較弱的菌株無法生長(zhǎng),分離的菌種受到限制[20]。在葡萄酒中分離到的片球菌中,有害片球菌(P.damnosus)和小片球菌(P.parvulus)較常見。研究表明,片球菌可能會(huì)產(chǎn)生一些發(fā)酵食品的風(fēng)味物質(zhì)[11,18],增加發(fā)酵食品風(fēng)味的復(fù)雜性,但也有研究表明片球菌通過利用發(fā)酵飲料中的殘留糖而引起酒體黏稠、影響葡萄酒過濾,從而降低葡萄酒質(zhì)量[25-26]。本試驗(yàn)中,自然蘋乳發(fā)酵后的酒樣并未觀察到黏稠現(xiàn)象,這可能是由于模擬酒糖含量低(4 g/L),片球菌主要以蘋果酸為碳源,故無多糖產(chǎn)生所致。然而,以單一片球菌株進(jìn)行蘋乳發(fā)酵對(duì)葡萄酒品質(zhì)的影響還需進(jìn)一步研究。所以,將葡萄酒中的小片球菌進(jìn)行釀造分析對(duì)葡萄酒發(fā)酵及其品質(zhì)具有重要意義。
采用MRS分離培養(yǎng)基從甘肅祁連葡萄酒業(yè)有限責(zé)任公司干紅葡萄酒中分離獲得24株乳酸菌,經(jīng)形態(tài)學(xué)鑒定、生理生化鑒定、蘋果酸分解實(shí)驗(yàn)等,得到其中5株具有較好的降酸能力。
經(jīng)16S rDNA分析得到3株菌株均為小片球菌(Pediococcusparvulus)。分別為PediococcusparvulusNi555(登錄號(hào):AB601176.1);PediococcusparvulusMA 55(登錄號(hào):KY425789.1);Pediococcusparvulusgp116(登錄號(hào):KM495950.1)。
與商品乳酸菌比較,3株小片球菌均表現(xiàn)出較好的釀酒適應(yīng)性,其中菌株C30對(duì)低發(fā)酵溫度(15 ℃)、高SO2質(zhì)量濃度(50 mg/L)和高乙醇體積分?jǐn)?shù)(14%)耐受性較強(qiáng),具有較強(qiáng)的蘋果酸-乳酸發(fā)酵適應(yīng)性。