王雪青,蔣榮霞,郭志鵬,連喜軍,郭俊杰
?
藻藍蛋白及其水解物促進玉米直支鏈淀粉回生機理研究
王雪青,蔣榮霞,郭志鵬,連喜軍※,郭俊杰
(天津商業(yè)大學生物技術(shù)與食品科學學院,天津市食品生物技術(shù)重點實驗室,天津 300134)
藻藍蛋白是螺旋藻中對人體具有多種保健功能的蛋白,初步發(fā)現(xiàn)其具有明顯促進玉米淀粉回生的作用。為了進一步探索其促進玉米淀粉回生的機理,該文將1%和10%藻藍蛋白及其水解物添加至玉米直鏈、支鏈及其混合淀粉中,測定其對淀粉回生的影響,通過X-射線衍射、差示掃描量熱、紅外和固體核磁分析藻藍蛋白及其水解物促進玉米淀粉回生機理。研究結(jié)果表明,添加1.0%藻藍蛋白對直鏈淀粉回生率沒有影響,使支鏈淀粉回生率提高了61.4%;而添加量為10%的藻藍蛋白使直鏈淀粉回生率提高了60.4%,使支鏈淀粉回生率提高了69.6%。藻藍蛋白水解肽低的添加量(1.0%)對玉米直鏈的回生率影響不顯著,但使支鏈淀粉的回生提高了28.1%;水解肽高添加量(10.0%)使玉米直鏈淀粉的回生率提高了184.7%,使玉米支鏈淀粉的回生率提高了47.0%。紫外可見掃描顯示堿性蛋白酶水解可使處于藻藍蛋白結(jié)構(gòu)中心的藻藍素外露出來。X射線結(jié)果表明藻藍蛋白與玉米直鏈支鏈淀粉混合回生后分別產(chǎn)生一個衍射角為2為16.44o 、16.60o尖銳衍射峰。差熱結(jié)果顯示,藻藍蛋白與玉米支鏈淀粉混合、藻藍蛋白水解物與玉米直鏈淀粉混合后,所得回生淀粉均失去結(jié)晶峰,而出現(xiàn)唯一重結(jié)晶峰。紅外和13C固體核磁結(jié)果表明,藻藍蛋白通過精氨酸氨基與玉米支鏈淀粉還原端醛基形成氫鍵,利用藻藍蛋白中疏水性氨基酸驅(qū)離玉米支鏈淀粉側(cè)鏈末端水分子,促使支鏈淀粉末端雙螺旋解旋,加快了支鏈淀粉末端鏈間氫鍵形成,提高了其回生率;而藻藍蛋白水解物中半胱氨酸巰基和玉米直鏈淀粉還原端醛基在與直鏈淀粉混合回生過程形成氫鍵,通過分子甩動使直鏈淀粉雙螺旋解開,大大促進了玉米直鏈淀粉間形成氫鍵,提高了其回生率。該研究提供了一種提高玉米淀粉回生率的新技術(shù)。
農(nóng)產(chǎn)品;淀粉;水解;回生淀粉;藻藍蛋白;回生機理
作為一種膳食纖維,回生抗性淀粉具有通便、控制體質(zhì)量、輔助控制糖尿病、通過促進盲腸乳酸菌繁殖來提高人體免疫力等功效[1]。但低的產(chǎn)率是限制其產(chǎn)業(yè)化的瓶頸。為了提高回生淀粉制備率,國內(nèi)外研究人員在淀粉乳濃度、貯藏溫度和時間、干燥和擠壓工藝、微波、超聲波處理、酶處理、添加生物大分子有機物等方面做了大量的研究。質(zhì)量分數(shù)為1%和10%的蕎麥淀粉乳在0 ℃貯藏回生率較高,達到30.0%以上,而5%、15%和20%濃度下2和6 ℃下貯藏淀粉回生率高[2]。在-18 ℃下冷凍貯藏條件下,糯米淀粉濃度由1%增加到25%,冷凍1 d糯米淀粉的最低回生率由4.5%增加到15.7%;10%~15%的糯米淀粉乳在此條件下貯藏7 d,糯米淀粉的回生率會大于40.0%[3]。在真空干燥溫度30 ℃,真空度0.08 MPa時,老化98 h,甘薯淀粉回生率達到20.9%[4]。擠壓處理及次數(shù)也能影響回生率,重復(fù)擠壓處理可以使玉米淀粉回生率提高到40%以上[5],3次重復(fù)回生和高低溫循環(huán)老化也能明顯促進淀粉的回生[6-7]。超聲波處理可以使甘薯淀粉的回生率提高2.28倍[8],而電解和微波聯(lián)合處理可以使甘薯淀粉的回生率提高1倍[9]。普魯蘭酶和高壓濕熱處理可以使黑豆淀粉回生率提高到41.3%[10],而中溫α-淀粉酶處理可以將甘薯淀粉的回生率提高1.68倍[11]。由于普魯蘭酶和淀粉酶使淀粉側(cè)鏈斷裂而產(chǎn)生更多的直鏈淀粉,從而增加淀粉回生淀粉的成核與結(jié)晶速率[12]。根據(jù)晶體形成理論,添加晶種也能增加回生淀粉的生成,課題組曾經(jīng)采用草酸侵蝕馬鈴薯回生淀粉制備晶種促進玉米淀粉的回生,使得玉米淀粉的回生率由7.37%提高至11.46%[13]。雖然上述的物理方法和化學酶法可以在一定程度上提高回生淀粉的制備率,但未超過45%,規(guī)模化生產(chǎn)競爭力不強。因此,尋找更有效快捷的提高淀粉回生率方法及相關(guān)機制的研究一直是該領(lǐng)域的研究熱點之一。近年來,一些有機大分子多糖和蛋白通過添加至淀粉中與其共回生,可以對回生率有顯著的影響。Luo等[14]研究發(fā)現(xiàn),添加淀粉量5%~7.5%菊糖會促進玉米支鏈淀粉回生,課題組前期研究也發(fā)現(xiàn)[15],添加醇溶蛋白可使玉米淀粉的回生率由9.4%增加到29.3%。最近課題組進一步通過分析核磁、紅外等提出了這種含有醇溶蛋白回生淀粉的一種可能結(jié)構(gòu)[16]。為了尋找能更加有效提高淀粉回生率的有機大分子,課題組嘗試利用藻藍蛋白及其水解物促進玉米淀粉回生,發(fā)現(xiàn)藻藍蛋白及其水解物均可促進玉米直支鏈淀粉的回生,添加淀粉質(zhì)量分數(shù) 為10.0%的藻藍蛋白水解物可以使玉米直鏈淀粉的回生率提高到50%以上。通過固體核磁和紅外分析,提出了藻藍蛋白及其水解物促進玉米直支鏈淀粉回生的可能 機制。
玉米淀粉、螺旋藻(程海湖牌)為市售;PBS(phosphate buffer saline)磷酸鹽緩沖液購自上海哈靈生物科技有限公司、NaCl、NaOH、(NH4)2SO4、BaCl2和CH3CH2OH購自天津鑫橋化工貿(mào)易有限公司;高溫淀粉酶、脂肪酶、堿性蛋白酶由天津市諾奧科技發(fā)展有限公司提供。
YXQG02手提式電熱壓力蒸汽消毒器,山東安德醫(yī)療科技有限公司;DH-101-3BS電熱恒溫鼓風干燥箱,天津市中環(huán)實驗電爐有限公司;BCD-229KB海爾冰箱,青島海爾股份有限公司;L535-1離心沉淀機,湖南湘儀離心機儀器有限公司;Bio-Rad FES135紅外分光光度計,美國Bio-Rad公司;島津UV-2450/2550紫外可見分光光度計;DSC204C 型差示掃描量熱分析儀(德國Netzach 公司);D8 ADV ANCE型X 射線衍射儀(德國Bruker AX S公司);Varian Unity 300 MHz 核磁共振譜儀(美國Varian公司)。
1.2.1 藻藍蛋白的提取
藻藍蛋白的提取參照課題組前期的試驗方法[17]。1)細胞破碎:取400 g螺旋藻粉溶于4 000 mL的10 mmol/L磷酸緩沖鹽溶液(0.01 mmol/L pH值為6.8 PBS緩沖液)中浸泡4 h,于-20~4 ℃之間反復(fù)凍融4次,每次融化后用超聲波輔助破碎,功率400 W超聲6 s間隔15 s,超聲次數(shù)60次。然后在轉(zhuǎn)速10 000 r/min、溫度4 ℃條件下下冷凍離心30 min,棄沉淀取上清液。2)鹽析:離心后的藍色上清液樣品,在4 ℃條件下緩慢加入(NH4)2SO4直至濃度為28%飽和,繼續(xù)攪拌使(NH4)2SO4充分溶解,4 ℃靜置過夜。而后在10 000 r/min,4 ℃下冷凍離心30 min除去少量雜蛋白,收集上清液。其上清液再由濃度為55%飽和硫酸銨沉淀,4 ℃下靜置4 h后以10 000 r/min離心30 min,收集藍色蛋白沉淀。3)透析:用PBS溶液收集鹽析所得沉淀,裝入透析袋中透析除去(NH4)2SO4鹽(截留分子量8~14 kD)。將裝有樣品的透析袋置于0.01 mol/L pH值為6.8的PBS緩沖液中透析,多次更換緩沖液,用BaCl2檢測無沉淀即為透析終點。透析后,所得樣品可用聚乙二醇進行濃縮,冷凍干燥后4 ℃保存?zhèn)溆谩龈傻脑逅{蛋白經(jīng)過適量稀釋后,分別測定其波長為620和280 nm的吸光度值,以吸光度620/280比值來表示純度,經(jīng)此法制備的藻藍蛋白純度為1.35。
1.2.2 藻藍蛋白酶水解
將純化后的藻藍蛋白用堿性蛋白酶水解制備藻藍蛋白水解物,堿性蛋白酶水解條件:蛋白液pH值為8.0、酶解溫度40 ℃、酶解時間60 min加酶量為蛋白質(zhì)質(zhì)量的0.1%。酶解完的水解液冷凍干燥后備用。
1.2.3 玉米直支鏈淀粉制備
依照課題組方法制備的玉米直支鏈淀粉[18]。將質(zhì)量分數(shù)10%~15%的玉米淀粉用水分散后,于95 ℃水浴鍋中攪拌糊化2 h至透明,120 ℃進一步高壓(0.2 MPa)糊化40 min。冷卻至常溫后放冰箱中4 ℃老化2 d,每100 mL淀粉乳中加入0.6 mL高溫淀粉酶酶解,離心得到沉淀水洗后得到回生淀粉。將得到的回生淀粉用4 mmol/L KOH溶解后加入3倍體積的正丁醇,充分攪拌后離心分離得到沉淀即為玉米直鏈淀粉。上清液中加入1倍體積乙醇得到沉淀即為玉米支鏈淀粉。得到的玉米直支鏈淀粉再按照文獻[19]的方法除去脂肪和蛋白,水洗后成為純化后玉米直支鏈淀粉。進行回生試驗的玉米直支鏈淀粉不進行干燥,以濕淀粉形式保存于4 ℃冰箱,取10 g濕淀粉干燥后得到淀粉干濕比例。
1.2.4 玉米直、支鏈淀粉與藻藍蛋白及其水解物的共同回生
取相當于干淀粉10 g的玉米直鏈、支鏈濕淀粉,按照干燥淀粉質(zhì)量比例的1.0%、10.0%分別將藻藍蛋白及其水解物與玉米直鏈和支鏈淀粉(濕的狀態(tài))進行混合,加入20 mL 蒸餾水,95 ℃手動攪拌、糊化1.5 h,進一步高溫高壓(0.1 MPa,121 ℃)糊化30 min,冷卻后于4 ℃冰箱老化48 h。之后采用文獻[15]的方法測定回生率。
1.2.5 測試方法
探索藻藍蛋白及其水解物促進玉米直支鏈淀粉回生機制測定紫外可見吸收、紅外、固體核磁、X射線衍射時,藻藍蛋白采用純品(西安明朗生物科技有限公司純度98%),添加量為淀粉量的30%。藻藍蛋白及其水解物的紫外可見吸收測定:將藻藍蛋白及其水解物用著蒸餾水稀釋后靜置30 min,用島津UV-2450/2550紫外可見分光光度計測定最大吸收波長;X射線衍射分析:將粉末狀樣品放入D8 ADV ANCE型X射線衍射儀(德國Bruker AX S公司),采用Cu靶KT射線(0.154 nm)照射,管壓為40 kV,管流為40 mA,掃描速度為0.1 (°)/s。紅外分析:將樣品用光譜純KBr壓片,在27 ℃下用紅外分光光度計Bio-Rad FES135測定淀粉紅外吸收,掃描范圍4 000~400 cm-1;固體核磁分析:將蛋白或淀粉樣品置于密封的 PENCIL型(5-mm)氧化鋯轉(zhuǎn)子中,在Varian Unity 300 MHz核磁共振譜儀上進行,共振頻率為75 kHz,對應(yīng)90°脈沖寬度為3.4s,使用4 mm的雙共振HX CP/MAS(交叉極化/魔角旋轉(zhuǎn))探頭,魔角旋轉(zhuǎn)(MAS)的速度由轉(zhuǎn)速控制柜自動控制在9~12 kHz,試驗溫度范圍是28~120 ℃。差示掃描量熱分析:采用DSC204C型差示掃描量熱分析儀(德國Netzach公司)進行分析測試,升溫速率為0.02 ℃/s。
變量以平均值±標準差(ˉ±),表示,采用檢驗。采用SPSS軟件進行分析。
表1為藻藍蛋白及其水解物對玉米直支鏈淀粉回生率的影響數(shù)據(jù)。由表1可知,添加1.0%藻藍蛋白對直鏈淀粉回生率沒有影響,而10%的添加量,則表現(xiàn)出有較顯著的促進作用,使回生率從對照的27.0%提高至43.3%,提高了60.4%, 支鏈淀粉提高了69.6%;添加1%藻藍蛋白對支鏈淀粉產(chǎn)生明顯的促進回生作用,回生率由26.7%增至43.1%,提高了61.4%,而當添加量從1%增至到10%,支鏈淀粉回生率再增加效果不顯著,僅從43.1%提高到45.3%,提高了5.1%。對于藻藍蛋白水解肽來說,低的添加量(1.0%)對玉米直鏈的回生率影響不顯著,但對支鏈淀粉的回生顯示出促進作用(提高了28.1%),高添加量(10.0%)顯示出極強的促進玉米直鏈淀粉的作用,回生率從27.0%增加到76.9%,增加了184.7%,而玉米支鏈淀粉的回生率從26.7%增加到39.2%,僅增加了47%。
因此,對于玉米直鏈淀粉,隨著藻藍蛋白或水解肽的添加量增加,促進回生率也隨之增加。但是對于玉米支鏈淀粉僅是低的添加量,就顯示出其有效的促進作用,再通過增大添加比例來增加回生率,效果不顯著。這可能是由于玉米直支鏈淀粉與藻藍蛋白或肽形成的氫鍵部位不同影響的結(jié)果。

表1 藻藍蛋白及其水解物對玉米直支鏈淀粉回生率的影響
注:* 為<0.05, ** 為<0.01。
Note: * means<0.05, ** means<0.01.
圖1為藻藍蛋白及其水解物的紫外可見最大吸收光譜圖。由圖1可知,藻藍蛋白的紫外可見最大吸收波長為258.0、616.0 nm,無374 和 340 nm附近的藻膽素特征吸收峰,這與文獻報道相似[20-21]。藻藍蛋白水解物的紫外可見最大吸收波長為258.0、346.0、613.5 nm,出現(xiàn)了藻膽素的特征吸收,說明堿性蛋白酶水解使處于藻藍蛋白結(jié)構(gòu)中心的藻藍素外露出來。

圖1 不同濃度藻藍蛋白及其水解物紫外可見掃描光譜圖
圖2為玉米直鏈和支鏈淀粉混合藻藍蛋白及其水解物前后回生所得淀粉的X射線衍射圖。由圖2a可知,試驗采用的藻藍蛋白并非單個晶體,2衍射角為9.52°、21.34°、31.52°、45.22°,這與文獻報道葛仙米中藻藍蛋白的非晶體衍射(2衍射角為16.66°、20.68°、23.70°、29.06°、30.12°、33.66°、37.90°、40.32°、57.54°)不同[22]。由圖2b可知,藻藍蛋白水解后晶體2衍射角缺失31.52°和45.22°的2個晶面,而增加了2衍射角為8.78°的1個晶面。即晶體面間距小的晶面減少了而面間距比較大晶面增多了。由圖2c、2d可知,回生玉米直鏈淀粉衍射角2為16.76°、22.16°,回生玉米淀粉中支鏈淀粉衍射角2為17.22°、19.28°,這與課題組前期研究基本一致[23]。由圖2e可知,玉米直鏈淀粉與藻藍蛋白混合回生后,衍射角2為22.16°的尖銳峰消失,增加了衍射角2為19.36°、23.52°的衍射峰,但這2個峰周圍有許多衍生峰,峰型不尖銳。由圖2f可知,玉米直鏈淀粉和藻藍蛋白水解物混合回生后衍射角2為16.44°的峰明顯變得更加尖銳,說明藻藍蛋白水解物可加速玉米直鏈回生淀粉在此晶面上的聚集,從而大大加速了其回生的速度。由圖2 g可知,玉米支鏈淀粉和藻藍蛋白混合回生后衍射角2為16.60°的峰明顯變得更加尖銳,顯示藻藍蛋白可加速玉米支鏈回生淀粉在此晶面上的聚集,加速晶面形成。根據(jù)促進玉米直支鏈淀粉回生樣品(2f、2g)尖銳衍射角減小可知,兩種物質(zhì)分別促進玉米直支鏈淀粉回生機理可能跟它們加入后2衍射角為16.4°~16.7°的面間距增大有關(guān)。圖2e和2h中藻藍蛋白與直鏈淀粉、藻藍蛋白水解物與支鏈混合回生后淀粉的回生率增加不多,其2衍射峰也未出現(xiàn)明顯的尖銳峰,這也進一步說明尖銳衍射峰的出現(xiàn)和淀粉回生率提高有相關(guān)性。
圖3玉米直鏈和支鏈淀粉混合藻藍蛋白及其水解物前后回生所得淀粉差示掃描量熱圖(differential scanning calorimeter, DSC)。由圖3可知,藻藍蛋白有2個晶體融化峰(134.40、140.69 ℃)(圖3a),藻藍蛋白水解物有1個主峰(112.86 ℃)和3個小峰。玉米直鏈回生淀粉有3個晶體融化峰(89.61、95.48、109.74 ℃),玉米支鏈回生淀粉有2個晶體融化峰(108.97、143.14 ℃)。這些晶體融化溫度均低于甘薯直支鏈回生淀粉[24],這可能與玉米直支鏈淀粉平均鏈長比甘薯直支鏈淀粉的短有關(guān)。回生淀粉晶體中低溫為晶體融化溫度,高溫為淀粉重結(jié)晶融化溫度[25]。由圖3a、3c、3d、3e和3g可知,藻藍蛋白添加入玉米直支鏈淀粉后,其所得直鏈回生淀粉融化溫度由109.74升高到126.93 ℃,所得支鏈回生淀粉融化溫度由143.14降低到139.74 ℃,說明藻藍蛋白參與了玉米直支鏈的回生,參與回生的藻藍蛋白分子鏈長介于玉米直鏈和支鏈淀粉之間。值得注意的是:藻藍蛋白與玉米支鏈淀粉混合回生后只有淀粉重結(jié)晶峰,而沒有晶體峰,此峰溫度與藻藍蛋白重結(jié)晶峰接近。說明玉米支鏈淀粉中分子鏈長與藻藍蛋白接近的分子數(shù)量多,這些分子之間更容易形成氫鍵,從而產(chǎn)生一種全新的含藻藍蛋白的回生功能淀粉。由圖3b、3c、3d、3f和3h可知,藻藍蛋白水解物添加入玉米直支鏈淀粉后,其所得直鏈回生淀粉融化溫度由109.74升高到118.37 ℃,所得支鏈回生淀粉融化溫度由143.14降低到130.02 ℃。與藻藍蛋白促進玉米支鏈淀粉結(jié)果類似,藻藍蛋白水解物促進玉米直鏈淀粉回生的差示掃描量熱圖(DSC)(圖3f)中,直鏈回生淀粉的晶體融化峰消失,只出現(xiàn)重結(jié)晶峰118.37 ℃,這個融化溫度與藻藍蛋白水解物的重結(jié)晶融化峰接近。其他2個低溫峰應(yīng)該是藻藍蛋白水解物不同分子晶體峰,與直鏈淀粉無關(guān)。從差熱融化溫度可知,藻藍蛋白及其水解物分別促進玉米支鏈和直鏈淀粉回生,是因為這種結(jié)合能夠解開玉米直支鏈淀粉雙螺旋,為玉米直支鏈淀粉間形成氫鍵創(chuàng)造便利條件,進而加速淀粉大分子晶體形成速度,大幅提高淀粉的回生率。

圖3 玉米直鏈和支鏈淀粉混合藻藍蛋白及其水解物前后回生所得淀粉差示掃描量熱圖
圖4為玉米直鏈和支鏈淀粉混合藻藍蛋白及其水解物前后回生所得淀粉的紅外光譜圖。3 282~3 315 cm-1附近處的吸收峰為淀粉分子的O-H的伸縮振動或者蛋白分子的N-H伸縮振動,2 930 cm-1附近較尖銳峰是淀粉或蛋白亞甲基的C-H鍵的不對稱伸縮振動吸收峰,圖4 e、4f、4g、4h中1 644.1 cm-1處的吸收峰是淀粉中水的H-O-H的彎曲振動吸收峰,1 006.7 cm-1處為淀粉結(jié)構(gòu)C-O-C中C-O的振動吸收峰[26-27]。圖4 a、4b中1 651.2 cm-1處為藻藍蛋白水解物中蛋白質(zhì)酰胺Ⅰ鍵C=O的伸縮振動[20]。圖4a、4b中1 408.8、1 411.6 cm-1為甲基的C-H剪式彎曲振動,993~1 003 cm-1為C-O-H彎曲振動[28],前者峰強變?nèi)跽f明藻藍蛋白水解物中肽鏈變短,藻藍蛋白中參與氫鍵的甲基被解離,后者峰強度減小變化可能與含羥基氨基酸與多糖連接被打斷有關(guān)。圖4 a、4b中1 538~1 550 cm-1處波數(shù)代表的酰胺Ⅱ鍵C-N伸縮振動和N-H變形振動的組合[28],藻藍蛋白水解后該處峰強度減小,這是蛋白酶水解過程酰胺鍵斷裂所致。圖4e、4g中藻藍蛋白與玉米直支鏈淀粉混合回生后,玉米回生直鏈淀粉波數(shù)由3 285.3轉(zhuǎn)變?yōu)? 268.2 cm-1,支鏈淀粉由3 315.3轉(zhuǎn)變?yōu)? 282.5 cm-1,此處紅外波數(shù)的減小代表氫鍵的形成[28],支鏈淀粉此處波數(shù)降低更多可能跟藻藍蛋白中的巰基、支鏈淀粉的還原端醛基參與了氫鍵的形成有關(guān)。此兩圖中可以觀察到酰胺Ⅰ、Ⅱ鍵的吸收峰,說明藻藍蛋白中羰基和氨基沒有參與淀粉回生過程氫鍵的形成。圖4f、4h中藻藍蛋白水解物與玉米直支鏈淀粉混合回生后,玉米回生直鏈淀粉波數(shù)由3 285.3轉(zhuǎn)變?yōu)? 282.5 cm-1,支鏈淀粉由3 315.3轉(zhuǎn)變?yōu)? 288.5 cm-1。根據(jù)表1結(jié)果可知,藻藍蛋白水解物促進玉米直鏈淀粉回生非常明顯,而3 285.0 cm-1附近的紅外波數(shù)卻變化不大,說明促進回生的動力來源于非羥基基團如氨基或巰基。圖4f(黑色箭頭)中對應(yīng)于酰胺Ⅰ、Ⅱ鍵的紅外峰的消失正好印證了這種推測,這些羰基和氨基參與了氫鍵的形成,C=O、C-N伸縮振動消失了。總結(jié)紅外分析,藻藍蛋白促進玉米支鏈淀粉的原因可能是藻藍蛋白中的巰基與支鏈淀粉還原端醛基之間形成了氫鍵;藻藍蛋白水解物促進玉米直鏈淀粉回生可能是水解多肽的羰基、氨基與直鏈淀粉的羥基形成了氫鍵導(dǎo)致。

圖4 玉米直鏈和支鏈淀粉混合藻藍蛋白及其水解物前后回生所得淀粉的紅外光譜圖
圖5為玉米直鏈和支鏈淀粉混合藻藍蛋白及其水解物前后回生所得淀粉的13C固體核磁圖譜。根據(jù)文獻[29],藻藍蛋白中含有的氨基酸主要有Arg、Asp、Ala、Cys、His、Thr、Glu、Leu、Ser、Val、Pro、Ile、Trp、Phe、Lys、Tyr、Met和Gly,圖5 a、5 b中化學位移176.7、176.6 ppm代表酰胺鍵,156.9 ppm代表Arg,129.6、128.5 ppm代表Phe,115.6 ppm可能是Tyr C3或His C4的化學位移[30-33],但Tyr的139 ppm附近的峰強度很弱,說明該氨基酸含量比較少,所以該處化學位移只能由His產(chǎn)生。蛋白酶水解藻藍蛋白后,此峰裂解為118.1和114.8 ppm,說明水解過程蛋白的酰胺鍵在His連接位置斷開。圖5 a、5 b中92.9、93.7 ppm處化學位移為多糖C1原子,73.0、72.7 ppm處化學位移為多糖C2-5原子,60.6、60.8 ppm處化學位移為C6原子[34]。藻藍蛋白水解后多糖峰強度略有增強(60.8 ppm處C6原子峰的變化最明顯),說明藻藍蛋白可能與藻多糖結(jié)合,蛋白酶水解過程使蛋白中氨基酸與多糖的C6連接打斷,更多多糖的C6顯示出化學位移。圖5 a、5 b中未出現(xiàn)代表Glu的折疊結(jié)構(gòu)化學位移53.5、54.0 ppm[35],說明藻藍蛋白及其水解物主要以-螺旋結(jié)構(gòu)的形式存在。圖5 a、5 b中化學位移24.9、25.3 ppm代表Leu的-CH3[35],藻藍蛋白水解前后此處化學位移變化不大,說明蛋白酶水解過程中與亮氨酸連接的酰胺鍵可能沒有斷開。而圖5 a、5 b中化學位移16.4、17.1 ppm代表Ala/Val/Thr的-CH3[32],酶解前后該處化學位移發(fā)生了明顯變化,說明這些氨基酸連接的酰胺鍵可能被打斷,甲基碳的共振發(fā)生了變化。含有這些氨基酸的多肽可能跟藻藍蛋白中多糖連接在一起,使酶解后多糖疏水性增強。由圖5 e、5 g可知,藻藍蛋白與玉米直支鏈淀粉混合回生后,直鏈淀粉C1化學位移由100.3 ppm轉(zhuǎn)變?yōu)?02.4、100.3 ppm,支鏈淀粉該處化學位移由103.0、100.5 ppm轉(zhuǎn)變?yōu)?03.2 ppm。根據(jù)文獻[33-36],回生淀粉此處化學位移出現(xiàn)雙峰代表存在淀粉單螺旋晶體或者淀粉處于無定型狀態(tài),藻藍蛋白的添加使玉米直鏈回生淀粉形成單螺旋晶體或還原端碳原子由結(jié)晶態(tài)轉(zhuǎn)變?yōu)闊o定型態(tài),使玉米支鏈淀粉由無定型態(tài)轉(zhuǎn)變?yōu)榻Y(jié)晶態(tài),這與表1中回生率數(shù)據(jù)結(jié)果相符。藻藍蛋白添加后對玉米直支鏈淀粉其他碳原子的化學位移影響不大。由圖5 f、5 h可知,藻藍蛋白水解物與玉米直支鏈淀粉混合回生后,直鏈淀粉所有碳原子化學位移基本沒變,與淀粉無定形區(qū)相關(guān)的化學位移由82.5減小到81.4 ppm[35],暗示藻藍蛋白水解物促進玉米直鏈淀粉回生可能跟無定形區(qū)變化相關(guān)。支鏈淀粉該處化學位移變化與添加藻藍蛋白基本相同,說明從核磁上難以看出藻藍蛋白和其水解物對支鏈淀粉回生作用的差異原因。圖5 e、5 f、5 g、5 h中的172~174 ppm代表酰胺鍵,說明這些樣品中確實有藻藍蛋白及其水解物存在,但因為固體核磁衍射靈敏性或蛋白與淀粉在回生過程相互作用導(dǎo)致其他基團信號比較弱。

圖5 玉米直鏈和支鏈淀粉混合藻藍蛋白及其水解物前后回生所得淀粉的固體核磁圖
根據(jù)藻藍蛋白及其水解物和玉米直支鏈淀粉混合前后所得回生淀粉的紅外和核磁分析,推測了其促進回生機理可能途徑(圖6)。在圖6a中,藻藍蛋白在堿性蛋白酶作用下分解成不同肽段的多肽和多糖,其中多糖C6分子上還結(jié)合有親水性氨基酸Thr、Cys和Arg等,疏水性氨基酸肽Val 和Leu等。對于玉米支鏈淀粉來說,藻藍蛋白與其混合后(如圖6c),藻藍蛋白中Arg的氨基與玉米支鏈淀粉的還原端醛基間形成氫鍵,減弱支鏈淀粉運動速度,緩慢甩動過程中使支鏈淀粉末端雙螺旋解旋,不同分子間羥基形成氫鍵,生成回生淀粉;由于藻藍蛋白中的糖蛋白連接在蛋白上,沒有溶解到溶液中增加溶液粘度,不影響支鏈淀粉解旋。但當藻藍蛋白水解物與玉米支鏈淀粉混合時(如圖6e),水解物中含有Arg的多肽分子量小、鏈長短,精氨酸與支鏈淀粉形成氫鍵后,分子量大得多的支鏈淀粉在運動過程可以牽引多肽左右搖擺,加之水解物中多糖溶解使溶液黏度增加,玉米支鏈淀粉末端雙螺旋不能解旋,無法為回生提供更好的條件,所以不促進支鏈淀粉的回生。對于玉米直鏈淀粉來說,其分子量小、還原端多、移動速度快的特點促使其還原端可以與藻藍蛋白中半胱氨酸的巰基間形成微弱的氫鍵(圖6b),直鏈淀粉過快的移動速度阻礙了其與藻藍蛋白結(jié)合后雙螺旋的解旋,不能促進其回生。而藻藍蛋白水解物分子量小,其與直鏈淀粉雙螺旋中一條鏈形成氫鍵后(如圖6d所示,直鏈淀粉還原端與藻藍蛋白水解物中精氨酸之間形成氫鍵),當直鏈淀粉運動時,2條雙螺旋就容易發(fā)生解旋,使淀粉雙螺旋上羥基暴露出來,不同鏈之間更容易形成氫鍵,大大促進了直鏈淀粉的回生。因此,淀粉還原端形成氫鍵可明顯促進其回生。

注:Thr,Cys,Arg,His,Val,Leu分別為蘇氨酸、半胱氨酸、精氨酸、組氨酸、纈氨酸、亮氨酸。
藻藍蛋白可以促進玉米支鏈淀粉回生,藻藍蛋白水解物可以促進玉米直鏈淀粉的回生。藻藍蛋白水解物中半胱氨酸巰基可能和玉米直鏈淀粉還原端醛基在與直鏈淀粉混合回生過程形成氫鍵,通過分子甩動使直鏈淀粉雙螺旋解開,大大促進了玉米直鏈淀粉間形成氫鍵,提高了其回生率;而藻藍蛋白通過精氨酸氨基可能與玉米支鏈淀粉還原端醛基形成氫鍵,利用藻藍蛋白中疏水性氨基酸驅(qū)離玉米支鏈淀粉側(cè)鏈末端水分子,促使支鏈淀粉末端雙螺旋解旋,加快了支鏈淀粉末端鏈間氫鍵形成,提高了其回生率。淀粉還原端形成氫鍵可明顯促進其回生。
研究結(jié)果表明,添加1.0%藻藍蛋白對直鏈淀粉回生率沒有影響,使支鏈淀粉回生率提高了61.4%;而添加量為10%的藻藍蛋白使直鏈淀粉回生率提高了60.4%,使支鏈淀粉回生率提高了69.6%。藻藍蛋白水解肽低的添加量(1.0%)對玉米直鏈的回生率影響不顯著,但使支鏈淀粉的回生提高了28.1%;水解肽高添加量(10.0%)使玉米直鏈淀粉的回生率提高了184.7%,使玉米支鏈淀粉的回生率提高了47.0%。
藻藍蛋白及其水解物促進玉米直支鏈淀粉回生的發(fā)現(xiàn)開辟了功能蛋白干預(yù)淀粉回生的新領(lǐng)域,為開發(fā)多功能保健食品、拓寬藻藍蛋白和玉米淀粉應(yīng)用領(lǐng)域找到一條新途徑。
[1] Fuentes-Zaragoza E, Riquelme-Navarrete M J, Sánchez- Zapata E, et al. Resistant starch as functional ingredient: A review[J]. Food Research International, 2010, 43(4): 931-942.
[2] 張坤生,周雪,連喜軍,等. 冷藏條件下蕎麥淀粉回生規(guī)律的研究[J]. 食品工業(yè)科技,2013,34(16):157-158,177. Zhang Kunsheng, Zhou Xue, Lian Xijun, et al. The study on the retrogadation regular of buckwheat starch under cold storage condition[J]. Science and Technology of Food Industry (STFI), 2013, 34(16): 157-158,177. (in Chinese with English abstract)
[3] 張坤生,寧仲娟,連喜軍,等. 冷凍對糯米淀粉回生的影響[J]. 食品工業(yè)科技,2013,34(21):49-51. Zhang Kunsheng, Ning Zhongjuan, Lian Xijun, et al. Effect of freezing on starch retrogradation of glutinous rice starch[J]. Science and Technology of Food Industry (STFI), 2013, 34(21): 49-51. (in Chinese with English abstract)
[4] 連喜軍,張燕. 不同老化工藝對甘薯回生抗性淀粉制備率的影響[J]. 糧食加工,2012,37(3):46-48. Lian Xijun, Zhang Yan. Effects of different aging processes on the preparation rate of resistant starch of sweet potato[J]. Grain Processing, 2012, 37(3): 46-48. (in Chinese with English abstract)
[5] Masatcioglu T M, Sumer Z, Koksel H. An innovative approach for significantly increasing enzyme resistant starch type 3 content in high amylose starches by using extrusion cooking[J]. Journal of Cereal Science, 2017, 74: 95-102.
[6] Jagannadham K, Parimalavalli R, Babu A S. Effect of triple retrogradation treatment on chickpea resistant starch formation and its characterization[J]. Journal of Food Science and Technology, 2017, 54(4): 901-908.
[7] Silverio J, Fredriksson H, Andersson R, et al. The effect of temperature cycling on the amylopectin retrogradation of starches with different amylopectin unit-chain length distribution[J]. Carbohydrate Polymers, 2000, 42(2): 175-184.
[8] 連喜軍,羅慶豐,劉學燕,等. 超聲波對甘薯回生抗性淀粉生成的作用[J]. 食品研究與開發(fā),2011,32(1):61-64. Lian Xijun, Luo Qingfeng, Liu Xueyan, et al. Effects of ultrasonic wave on the formation of resistant starch of sweet potato[J]. Food Research and Development, 2011, 32(1): 61-64. (in Chinese with English abstract)
[9] 連喜軍,錢瑞,劉敬,等. 電解法和微波法聯(lián)合處理提高甘薯淀粉回生率[J]. 糧食加工,2011,36(5):51-54. Lian Xijun, Qian Rui, Liu Jing, et al. The retrogradation rate of sweet potato starch was improved by electrolysis and microwave[J]. Food Research and Development, 2011, 36(5): 51-54. (in Chinese with English abstract)
[10] Demirkesen-Bicak H, Tacer-Caba Z, Nilufer-Erdil D. Pullulanase treatments to increase resistant starch content of black chickpea () starch and the effects on starch properties[J]. International journal of Biological Macromolecules, 2018, 111: 505-513.
[11] 連喜軍,趙璐,牛瑞華,等. 中溫-淀粉酶處理提高甘薯回生抗性淀粉制備率[J]. 糧食與油脂,2010(8):21-23. Lian Xijun, Zhao Lu, Niu Ruihua, et al. The preparation rate of retrograde resistant starch of sweet potato was improved by medium temperature and-amylase treatment [J]. Cereals & Oils, 2010(8): 21-23. (in Chinese with English abstract)
[12] 丁文平,李清,夏文水. 淀粉酶對大米淀粉回生影響機理的研究[J]. 糧食與飼料工業(yè),2005 (10):16-17. Ding Wenping, Li Qing, Xia Wenshui. Study on the mechanism of amylase on the retrogradation of rice starch[J]. Cereal & Feed Industry, 2005(10): 16-17. (in Chinese with English abstract)
[13] 孟憲昉,劉立增,郭俊杰,等. 草酸侵蝕馬鈴薯回生淀粉制備晶種促進玉米淀粉回生的研究[J]. 食品工業(yè)科技,2016,37(3):131-134,148. Meng Xianfang, Liu Lizeng, Guo Junjie, et al. Study on the effect of oxalic acid on the retrogradation of corn starch by seed preparation of potato starch[J]. Science and Technology of Food Industry (STFI), 2016, 37(3): 131-134,148. (in Chinese with English abstract)
[14] Luo D, Li Y, Xu B, et al. Effects of inulin with different degree of polymerization on gelatinization and retrogradation of wheat starch[J]. Food chemistry, 2017, 229: 35-43.
[15] Lian X J, Guo J J, Wang D L, et al. Effects of protein in wheat flour on retrogradation of wheat starch[J]. Journal of Food Science, 2014, 79(8): 1505-1511.
[16] 郭俊杰,馬喬治,康海岐,等. 含醇溶蛋白小麥回生抗性直支鏈淀粉性質(zhì)分析[J]. 農(nóng)業(yè)工程學報,2018,34(4): 293-298. Guo Junjie, Ma Qiaozhi, Kang Haiqi, et al. Analysis on properties of starch with alcohol - soluble protein in wheat resistant to direct - branched chain[J]. Transactions of the Chinese Society of Agricultural Engineering (Transactions of the CSAE), 2018, 34(4): 293-298. (in Chinese with English abstract)
[17] 劉楊,王雪青,趙培,等. 水提分離鈍頂螺旋藻藻藍蛋白及其穩(wěn)定性研究[J]. 天津師范大學學報(自然科學版),2008(3):11-14. Liu Yang, Wang Xueqing, Zhao Pei, et al. Study on the separation of phycocyanin from spirulina platensis by water extraction and its stability[J]. Journal of Tianjin Normal University(Natural Science Edition), 2008(3): 11-14. (in Chinese with English abstract)
[18] Lian X, Dong S, Gao K, et al. Sweet potato amylose and amylopectin with narrower distribution of molar mass and chain length obtained by a repeated retrogradation–hydrolysis procedure[J]. Journal of Applied Polymer Science, 2016, 133(34): 8311-8319.
[19] Lian X, Sun H, Li L, et al. Characterizing the chemical features of lipid and protein in sweet potato and maize starches[J]. Starch‐St?rke, 2014, 66(3/4): 361-368.
[20] 殷鋼,劉錚,劉飛,等. 鈍頂螺旋藻中藻藍蛋白的分離純化及特性研究[J]. 清華大學學報(自然科學版),1999(6):21-23. Yin Gang, Liu Zheng, Liu Fei, et al. Isolation, purification and characterization of phycocyanin from spirulina platensis [J]. Journal of Tsinghua University(Science and Technology), 1999(6): 21-23. (in Chinese with English abstract)
[21] 李文軍,陳敏. 藍隱藻藻藍蛋白結(jié)構(gòu)與功能穩(wěn)定性研究[J]. 海洋科學,2013,37(7):33-40. Li Wenjun, Chen Min. Study on the structure and functional stability of cyanobacteria[J]. Marine Sciences, 2013, 37(7): 33-40. (in Chinese with English abstract)
[22] 汪興平. 葛仙米藻藍蛋白的一級結(jié)構(gòu)、構(gòu)象及抗氧化活性研究[D]. 武漢:華中農(nóng)業(yè)大學,2006.Wang Xingping. Studies on Primary Structure and Comformation as well as Antioxidation Activities of Phycocyanin from[D]. Wuhan: Huazhong Agricultural University. 2006. (in Chinese with English abstract)
[23] 郭俊杰,孫海波,李琳,等. 參與回生玉米直鏈和支鏈淀粉理化特性[J]. 食品工業(yè)科技,2014,35(14):91-94 Guo Junjie, Sun Haibo, Li Lin, et al. Physicochemical characteristics of amylose and amylopectin fractions from retrograded maize starch[J]. Science and Technology of Food Industry (STFI), 2014, 35(14): 91-94. (in Chinese with English abstract)
[24] 馮霞,杜曉冉,周潤生,等. 用差熱法研究甘薯直、支鏈淀粉回生動力學[J]. 河南工業(yè)大學學報(自然科學版),2016,37(5):26-33. Feng Xia, Du Xiaoran, Zhou Runsheng, et al. The study of kinetics of sweet potato amylose and amylopectin during retrogradation by DSC method[J]. Journal of Henan University of Technology (Natural Science Edition) (JHUT), 2016, 37(5): 26-33. (in Chinese with English abstract)
[25] 謝新華,賀平,宋一諾,等. 月桂酸對小麥淀粉凝膠回生特性的影響[J]. 麥類作物學報,2016,36(10):1350-1354. Xie Xinhua, He Ping, Song Yinuo, et al. Effect of luaric acid on the retrogradation properties of wheat starch gel[J]. Journal of Triticeae Crop (JTC). 2016, 36(10): 1350-1354. (in Chinese with English abstract)
[26] 牛凱,李貴蕭,代養(yǎng)勇,等. 碾軋時間和頻率對玉米淀粉機械力化學效應(yīng)的影響[J]. 農(nóng)業(yè)工程學報,2017,33(4):293-301. Niu Kai, Li Guixiao, Dai Yangyong, et al. Effect of milling time and frequency on mechanical and chemical effects of corn starch[J]. Transactions of the Chinese Society of Agricultural Engineering (Transactions of the CSAE), 2017, 33(4): 293-301. (in Chinese with English abstract)
[27] 吳躍. 抗高直鏈大米淀粉回生的物理修飾及其回生的檢測和表征[D]. 無錫:江南大學,2010. Wu Yue. Physical Modification of Anti-high Linear Rice Starch Retrogradation and Detection and Characterization of its Retrogradation[D]. Wuxi: Jiangnan University, 2010. (in Chinese with English abstract)
[28] Doyle B B, Bendit E G, Blout E R. Infrared spectroscopy of collagen and collagen-like polypeptides[J]. Biopolymers: Original Research on Biomolecules, 1975, 14(5): 937-957.
[29] 林啟山,張建平,曾繁杰,等. 海洋紅藻和藍藻中的別藻藍蛋白結(jié)構(gòu)特征的比較[J]. 植物生理學報,1992(3): 253-259. Lin Qishan, Zhang Jianping, Zeng Fanjie, et al. Comparison of structural characteristics of allophycocyanin in marine red algae and cyanobacteria[J]. Plant Physiology Journal, 1992(3): 253-259. (in Chinese with English abstract)
[30] Alberti E, Gilbert S M, Tatham A S, et al. Study of high molecular weight wheat glutenin subunit 1Dx5 by 13C and 1H solid-state NMR spectroscopy. I. Role of covalent crosslinking[J]. Biopolymers, 2002, 67(6): 487-498.
[31] Calucci L, Forte C, Galleschi L, et al.13C and1H solid state NMR investigation of hydration effects on gluten dynamics[J]. Int. J. Biol. Macromol. 2003, 32(3): 179-189.
[32] Jiang W, Zhou Z, Wang D, et al. Transglutaminase catalyzed hydrolyzed wheat gliadin grafted with chitosan oligosaccharide and its characterization[J]. Carbohyd. Polym. 2016, 153: 105-114.
[33] Flores-Morales A, Jiménez-Estrada M, Mora-Escobedo R. Determination of the structural changes by FT-IR, Raman, and CP/MAS 13C NMR spectroscopy on retrograded starch of maize tortillas[J]. Carbohydrate Polymers, 2012, 87(1): 61-68.
[34] McIntyre D D, Ho C, Vogel H J. One‐dimensional nuclear magnetic resonance studies of starch and starch products[J]. Starch‐St?rke, 1990, 42(7): 260-267.
[35] Zhang X, Burgar I, Lourbakos E, et al. The mechanical property and phase structures of wheat proteins/polyvinyl alcohol blends studied by high-resolution solid-state NMR[J]. Polymer, 2004, 45(10): 3305-3312.
[36] Flores-Morales A, Jiménez-Estrada M, Mora-Escobedo R. Determination of the structural changes by FT-IR, Raman, and CP/MAS 13C NMR spectroscopy on retrograded starch of maize tortillas[J]. Carbohydrate Polymers, 2012, 87(1): 61-68.
Mechanism of retrogradation enhancement of maize amylose and amylopectin by phycocyanin and its hydrolysate
Wang Xueqing, Jiang Rongxia, Guo Zhipeng, Lian Xijun※, Guo Junjie
(300134,)
Phycocyanin is a kind of dark blue powder isolated from spirulina and has a variety of health functions of anti-cancer, blood cell regeneration, etc. In order to widen its application in food, phycocyanin and its hydrolysis are added into maize amylose/amylopectin paste during retrogradation, it has been found that they can promote the retrogradation of amylose/amylopectin. In order to further explore its mechanism of promoting the retrogradation of maize starch, the effects of contents of phycocyanin or its hydrolysate in maize amylose/amylopectin on retrogradation rate were determined, and the method of X-ray diffraction, differential scanning calorimetry, infrared and solid nuclear magnetic analysis were used. The results showed that phycocyanin hydrolyzate promoted maize amylose retrogradation more obviously than that of phycocyanin. 10% addition of phycocyanin hydrolyzate could make maize amylose retrogradation rate increase from 27% to 76.9%, 184.8% higher. Phycocyanin promoted the retrogradation of maize amylopectin more pronouned than its hydrolysate, 10% addition of phycocyanin let maize amylopectin retrogradation rate increase from 26.7% to 45.3%, which increased by 69.6%. According to the UV-visible scanning, phycocyanin hydrolysis co cause the phycocyanin pigment in the center of phycocyanin to be exposed. X-ray results indicated that addition of phycocyanin to maize amylopectin induced a sharper peak at 2is 16.60o, as well as that mixture of phycocyanin hydrolysate and maize amylose caused a same sharper one at 2is 16.44o. Compared to diffraction angles of retrograded maize amylose/amylopectin, the decrease of sharp diffraction angle in those mixtures supported that interplanar distance at this angle became larger. DSC results demonstrated that mixture of phycocyanin and maize amylopectin, or mixture of phycocyanin hydrolysate and maize amylose, which both promoted retrogradation greatly, both caused the presence of re-crystallization peaks and loss of crystallization peaks. In other words, more phycocyanin/hydrolysate chains and maize amylose/amylopectin with similar length involved in retrogradation. Such process should deal with unwinding of maize amylose/amylopectin. The results of infrared and13C solid NMR showed that phycocyanin might be hydrolyzed into arginine-rich polypeptide with hydrophilic, polysaccharides and polypeptide with hydrophobic. The mechanism for phycocyanin to promote retrogradation of maize amylopectin was that the formation of hydrogen bond between the arginine amino acid of phycocyanin and aldehyde of reduction end in maize amylopectin, and water molecule of maize amylopectin being driving away from the side chain end by phycocyanin hydrophobic amino acid, promoted the end of the chain-branched starch double helix spin, accelerate the formation of hydrogen bond between the end chains of amylopectin, which lead to improve retrogradation rate of maize amylopectin. The mechanism for phycocyanin hydrolysate to increase retrogradation rate of maize amylose was that the hydrogen bond formed between the sulfydryl of cysteine in phycocyanin hydrolyzate and aldehyde of reduction end in maize amylose during retrogradation of mixture, then the double helix of amylose was unlocked by molecular swinging, which greatly promoted the formation of hydrogen bond between amylose and improved the retrogradation rate of amylose. This study provides a new technique to improve the retrogradation rate of maize starch.
agricultural products; starch; hydrolysis; retrograded starch; phycocyanin; retrogradation mechanism
2018-10-25
2019-03-01
國家自然科學基金項目(31571834;31871811);天津市科技重大專項與工程(一二三產(chǎn)業(yè)融合發(fā)展科技示范工程)(項目編號18ZXYENC00080);天津市高等學校大學生創(chuàng)新訓練計劃項目(201810069067);天津市高等學校創(chuàng)新團隊“農(nóng)產(chǎn)品加工貯藏新新技術(shù)及相關(guān)機理研究”(編號TD13-5087);天津市自然科學基金(18JCZDJC98200)資助
王雪青,博士,教授,主要從事天然產(chǎn)物的研究開發(fā)及應(yīng)用。Email:wxqing@tjcu.edu.cn
連喜軍,博士,副教授,主要從事回生淀粉研究。 Email:lianliu2002@163.com
10.11975/j.issn.1002-6819.2019.08.038
TS231
A
1002-6819(2019)-08-0324-11
王雪青,蔣榮霞,郭志鵬,連喜軍,郭俊杰. 藻藍蛋白及其水解物促進玉米直支鏈淀粉回生機理研究[J]. 農(nóng)業(yè)工程學報,2019,35(8):324-334. doi:10.11975/j.issn.1002-6819.2019.08.038 http://www.tcsae.org
Wang Xueqing, Jiang Rongxia, Guo Zhipeng, Lian Xijun, Guo Junjie. Mechanism of retrogradation enhancement of maize amylose and amylopectin by phycocyanin and its hydrolysate[J]. Transactions of the Chinese Society of Agricultural Engineering (Transactions of the CSAE), 2019, 35(8): 324-334. (in Chinese with English abstract) doi:10.11975/j.issn.1002-6819.2019.08.038 http://www.tcsae.org