不同發育時期小鼠心肌MyoG基因的表達分析

李莉鑫，任華偉 ，李藝雷，冀云燕 ，薛霖莉 ，曹 靖 ，羅小毛，于秀菊，赫曉燕，王海東

（1.山西農業大學動物科技學院，山西太谷030801；2.山西農業大學信息學院，山西太谷030800；3.北京農業職業學院畜牧獸醫系，北京102442）

MyoG是螺旋-環-螺旋（basic helix-loop-helix，bHLH）基因家族的一員，與 Myf5，MyoD1和MRF4等基因功能相似，都是生肌調節因子[1-3]。這些生肌調節因子不僅調控著肌纖維的生長發育，而且也對肌肉的功能有間接影響。但多數研究都聚焦于骨骼肌中的MyoG基因，例如,在胚胎發育早期，MyoG對于骨骼肌的形成具有促進作用[4-5]。MyoG基因的缺失還會引起小鼠骨骼肌發生萎縮，且嚴重時可能造成死亡[6]。骨骼肌中不斷發生著肌纖維的損傷與修復過程，MyoG是維持肌肉正常功能的重要參與者[7-8]。而關于心肌中MyoG的研究則相對比較少，有研究發現，MyoG在心肌中也有表達，但是表達量比較低，而且MyoG對心肌組織的發育起作用，間接調控心肌的發育[9]。引起心肌疾病的原因有很多，其中，MyoG基因有利于心肌發育，若其缺失將會限制發育或引起發育緩慢，甚至導致心肌衰亡。MyoG基因的深入研究不僅為理解骨骼肌生長發育提供新的理論依據，而且對預防肌肉疾病具有重大意義[10]。

基于以往學者們的研究成果，本研究對象是處于4個不同發育階段的小鼠，分別為幼齡、性成熟、體成熟和老齡小鼠，通過HE染色法、免疫組織化學法和實時熒光定量PCR技術，研究小鼠心肌的一般形態和MyoG基因在心肌中的表達情況，為小鼠心肌生長發育的調控機制和肌肉疾病的治療提供理論基礎。

1 材料和方法

1.1 材料

1.1.1 試驗動物 選取不同發育階段（幼齡、性成熟、體成熟、老齡）的健康小鼠各5只（由山西農業大學羊駝生物工程實驗室提供）。

1.1.2 主要試劑和儀器 試劑有4%多聚甲醛固定液（北京索萊寶科技有限公司）、熔點為54～56℃的石蠟、梯度酒精、二甲苯、PBS沖洗液（索萊寶科技有限公司）、免疫組織化學試劑盒（北京康為世紀生物科技有限公司）、MyoG多克隆抗體（武漢三鷹）、蘇木精、伊紅、中性樹脂封膠、Trizol（美國Invitrogen公司）、熒光定量試劑盒、反轉錄試劑盒（日本 TaKaRa公司）、DNAMarker（美國 Thermo公司）、MSTN基因上下游引物（北京六合華大基因科技有限公司）等。

儀器有光學顯微鏡（德國Leica公司）、制冰機（寧波格蘭特儀器廠）、瓊脂糖凝膠電泳槽（北京六一儀器廠生產）、qPCR儀器（美國Life technologies公司）、普通PCR儀（美國Bio RAD公司）、紫外凝膠成像儀（日本Panasonic公司）。

1.2 試驗方法

1.2.1 取材與固定 采取斷頸法處死小鼠，分別取小鼠心肌，橫切成2塊，其中一塊保存于固定液，用于后面的切片制作、HE染色和免疫組化；另外一塊保存于液氮。

1.2.2 組織包埋及石蠟切片制作 浸蠟前多次反復熔蠟。將固定好的組織修成0.5 cm大小的方塊。經梯度酒精脫水和二甲苯透明后，將組織塊放置于組織包埋機中充分浸蠟3 h。將組織包埋于包埋盒中，待完全凝固后進行切片。

1.2.3 HE染色 分別取幼年、性成熟、體成熟和老年小鼠的心肌組織切片各3張，將切片放置于60℃烤片機上加熱片刻，以避免組織脫片，然后進行脫蠟、蘇木精染色、脫水、伊紅染色、脫水透明、中性樹脂封片、鏡檢。

1.2.4 免疫組織化學 分別取4個發育階段小鼠心肌的切片各3張，首先將心肌組織切片進行脫蠟并用PBS緩沖液清洗3次，每次3 min，然后進行內源性過氧化物酶封閉，待封閉結束后用PBS緩沖液清洗，之后用羊血清再次進行封閉，在4℃環境中過夜孵育一抗。次日，經PBS緩沖液適度清洗切片后滴加二抗，室溫孵育10 min，繼續用PBS緩沖液清洗，清洗3次后滴加顯色劑，然后用蘇木精復染30 s，最后進行脫水透明及封片。

1.2.5 總RNA的提取和cDNA的合成 取出凍存的組織放入研缽中快速研磨，將研磨成粉狀的組織放入加有Trizol的EP管中，充分振蕩混勻，Trizol法提取心肌總RNA，依照反轉錄試劑盒說明書，取0.5 μg以上的RNA用于反轉錄。

1.2.6 引物的設計 試驗所用引物均根據Gen Bank上對應小鼠的序列，利用Premier 5.0軟件進行設計，由北京華大公司合成，引物序列如表1所示。

表1 引物序列信息

1.2.7 實時熒光定量PCR 以cDNA為模板，使用熒光定量試劑盒在熒光定量PCR儀上進行基因檢測。實時熒光定量PCR體系10 μL：SYBR Permix Ex Taq 5 μL，ROX Reference Dye Ⅱ 0.2 μL，上、下游引物各 0.4 μL，cDNA模板 100 ng，DEPC 水補足10 μL。PCR 擴增程序：95℃預變性 10 min；95℃變性 30 s，60 ℃退火 30 s，72 ℃延伸 20 s。

1.3 統計學方法

所有試驗數據均用SPSS 22.0軟件進行單因素方差分析（One-Way ANOVA），試驗結果用平均值±標準誤表示，P＜0.05為差異顯著，具有統計學意義。采用GraphPad PrismTM軟件作圖。

2 結果與分析

2.1 不同發育階段小鼠心肌的形態

小鼠心肌切片經HE染色后，在顯微鏡下可見其細胞核呈橢圓形。幼齡小鼠的肌細胞排列緊密，幾乎不見間隔，細胞與胞核數量多（圖1-A）；性成熟小鼠心肌的細胞間隔較幼齡小鼠增大增寬，細胞體積增大且數量減少（圖1-B）；體成熟和老年小鼠較幼齡小鼠肌間隔顯著增大，細胞數明顯減少且肥大（圖 1-C，D）。

2.2 不同發育階段小鼠心肌的MyoG表達定位研究

從圖2可以看出，MyoG基因在4個發育階段均有表達，表達部位為細胞質，且表達量存在差異性。MyoG基因在小鼠幼齡時期心肌組織的表達量顯著高于其他3組（圖2-A），性成熟和體成熟小鼠心肌中表達量明顯減少（圖2-B，2-C），在老齡小鼠心肌中表達最少（圖2-D）。表明隨著小鼠年齡的增加，MyoG的相對表達量會逐漸降低，表達位置不會發生明顯改變。

2.3 不同發育階段小鼠心肌中MyoG的mRNA表達情況

為了進一步研究不同發育階段小鼠心肌中MyoG的表達差異，本研究提取了小鼠心肌的總RNA，檢測其mRNA的表達水平。結果表明，幼年、性成熟和體成熟時期小鼠心肌中MyoG的mRNA表達水平沒有明顯差異，但在老年時期明顯降低（圖3）。

3 討論

MyoG是典型的成肌調節因子之一，其表達水平的高低在肌細胞的各個發育階段都有至關重要的影響。欒兆進等[11]通過研究MyoG對不同日齡綿羊的背最長肌和肱二頭肌中IMF沉積的影響發現，MyoG基因在2塊肌肉上的表達量均呈現先上升后下降的趨勢，不同肌肉上MyoG基因的表達量無明顯差異，但不同日齡的綿羊肌肉中MyoG基因的表達量明顯不同。趙青[12]通過研究肌細胞生成素多態性對金華豬生長性狀的影響發現，母豬在生長早期發育較慢，而公豬在早期就具有很快的生長速度，同時引用多位學者的研究結果證實了豬和人類與鼠的MyoG基因序列有96%的同源性[13-15]，由此可知，同品種間不同性別MyoG基因的表達也會存在差異。此外，鄺良德等[14]對家畜MyoG基因的結構和功能研究發現，MyoG基因在豬胎兒期表達水平較高，在之后的發育中具有下降的趨勢[16]。

近年來，各種心臟疾病的發病率越來越高，關于心臟的研究也日漸深入，心肌是心臟的重要組成部分，對于心臟功能的維持至關重要。心肌切片的HE染色結果表明，心肌纖維大多呈短柱狀，細胞核數量并不固定，單核及多核細胞都可以觀察到，細胞核呈卵圓形且多位于細胞中央，有些則散布在胞質邊緣。李碩[17]、劉錚鑄等[18]研究了MyoG基因的啟動子序列，結果顯示，MyoG基因在肌細胞終末分化過程中不可或缺，同時也調控肌細胞的融合過程；王穎薇等[19]通過研究心肌補片的制備及其結構功能特點，得出肌纖維數目在生長發育過程中不斷變化且最終趨于穩定的結論。賈徑等[9]關于鴨心組織中MyoG基因表達的研究發現，MyoG基因在心臟生長發育過程中發揮著重要的作用，其在心肌整個發育過程中呈現下降趨勢。本試驗免疫組化結果顯示，MyoG基因在心肌中表達，表達部位在細胞質，且表達不均勻。此外，qPCR結果表明，MyoG基因在小鼠心肌中的表達量隨年齡的增長而下降。這與已有的研究結果相似。而MyoG基因呈現下降的趨勢，其原因可能是由于小鼠生長發育過程中該基因發揮顯著作用，促進心肌細胞分化，而當小鼠發育結束后，該基因的任務基本完成，此時細胞抑制素開始發揮作用，MyoG基因開始逐漸減少。該過程符合小鼠生長發育的正常規律。

4 結論

本研究結果顯示，幼齡、性成熟、體成熟和老齡這4個發育階段的小鼠心肌中均有MyoG基因的表達，且均存在于細胞質中。其表達水平與生長發育密切相關，隨年齡增長逐漸下降，尤其在老年鼠中顯著降低。