白洪越,孔水仙,王 宇,侯熙彥,呂 俠*
(1.大連民族大學生命科學學院,生物技術與資源利用教育部重點實驗室,遼寧 大連 116600;2.大連醫科大學附屬第二醫院,遼寧 大連 116027)
尿苷二磷酸葡萄糖醛酸轉移酶(UGTs)是人體重要的II相代謝酶,不僅肩負著大量外源物的代謝清除,同時還在維系機體內源性物質代謝平衡中發揮著重要作用[1]。很多藥物、中草藥及天然化合物可抑制或激活UGTs酶的活性,引起臨床上不良的藥物/草藥-藥物相互作用或導致內源性物質的代謝紊亂。熒光探針具有操作簡便,生物樣本需要量少,高通量等優點。N-(4-丁酸甲酯)-4-羥基-1,8-萘酰亞胺(NMHN)能夠同時被多種UGTs亞型快速代謝,生成的代謝產物也具有較好的熒光屬性,能夠作為UGTs廣譜熒光探針底物,同時快速檢測多個UGTs亞型的活性[2]。再者生成的代謝產物也可作為β-葡萄糖醛酸苷酶的熒光探針底物用于β-葡萄糖醛酸苷酶的活性檢測。因此迫切需要構建NMHNG的高效制備方法。與化學合成法相比,生物合成法制備葡萄糖醛酸苷產物具有產率高、副產物少、制備過程簡單等優點[3]。本文利用牛肝微粒體能夠高效催化NMHN發生葡萄糖醛酸化反應生成NMHNG,同時借助固相萃取柱實現了NMHNG的高效分離及純化,獲得了純度大于98%的代謝產物。
Bruker ARX 500 MHz 超導核磁共振波譜儀(瑞士Brucker公司);UPLC-UV-ESI-MS 高效液相色譜-串聯質譜儀(日本島津公司); Allegra X-30R高速冷凍離心機(美國克曼庫爾特有限公司);MS-100恒溫混勻儀(杭州奧盛儀器有限公司);Synergy H1 型全功能微孔板檢測酶標儀(美國博騰儀器有限公司)。
三羥甲基氨基甲烷(Tris)、聚氧乙烯十六烷基醚(Brij58)、尿苷二磷酸葡萄糖醛酸鈉鹽(UDPGA)和MgCl2均購自Sigma公司;各種屬肝微粒體均購自瑞德肝臟疾病研究有限公司; UniElut C18AEX陰離子固相萃取小柱購自華譜有限公司。
1.2.1 NMHN葡萄糖醛酸化的種屬差異
UGTs孵育體系的建立:在1.5 mL離心管中依次加入底物NMHN(終濃度500 μmol/ L)、各個種屬肝微粒體(終濃度為0.5 mg/mL)、MgCl2(50 mmol/L)、Tris-HCl(50 mmol/L),于恒溫混勻儀上預先孵育5 min,再加入UDPGA(40 mmol/ L)起始反應,反應6h后加入乙腈終止反應。4℃ 14770r/min 離心20 min后取上清液于UPLC-UV-ESI-MS分析不同屬肝微粒體對NMHN生物轉化率。
1.2.2 NMHNG的制備與鑒定
UGTs孵育體系的建立同上,使用豬肝微粒體制備NMHNG(轉化率可達94.9%)。SPE柱由甲醇和水順序洗脫活化,將混合上清液上樣于SPE柱,依次用6mL超純水、6mL甲醇和6mL 5%的甲酸甲醇順序洗脫。收集含有代謝產物的餾份,旋轉蒸干后,通過質譜和核磁共振波譜鑒定其結構。
NMHN在9種動物肝微粒體催化下均能發生葡萄糖醛酸化反應生成NMHNG,猴肝微粒體,大鼠肝微粒,小鼠肝微粒體,豚鼠肝微粒體,豬肝微粒體,狗肝微粒體,兔肝微粒體,牛肝微粒體和人肝微粒體的轉化率分別為28.1%,73.9%,59.9%,87.7%,94.9%,64.9%,75.9%,90.9%,和43.5% .其中豬肝微粒體催化NMHN發生葡萄糖醛酸化反應的生物轉化率最高,因此選擇豬微粒體為酶源用于NMHNG的制備。
由圖1a可知,UGTs反應混合液中NMHNG的含量高于90%,但是仍有約10%的NMHN的存在。SPE柱分離純化后,UGTs反應混合液中的NMHNG與NMHN及UGTs反應混合液中的其它雜質實現了快速較好的分離,獲得了4.0 mg NMHNG,其純度高于98%,實際產率高達80%。由圖1b和1c所示,UPLC-UV-ESI-MS給出NMHN的準分子離子峰[M+H]+,m/z: 314.05,NMHNG的準分子離子峰[M+H]+,m/z: 490.10,NMHNG的分子量比NMHN的分子量增加了176,確定其為NMHN的但葡萄糖醛酸化產物。

Fig.1 UPLC-UV chromatography of the reaction mixture (a) and the glucuronide of NMHN after isolation and purification by SPE(b) and the MS spectra of NMHN and NMHNG (Inset)
NMHNG黃色粉末(乙腈),紫外最大吸收波長為240 nm和360 nm,ESI-MS給出其準離子峰m/z 490.10 [M+H]+,其分子量489比NMHN大176,結合核磁共振氫譜和碳譜推測其分子式為C23H23NO11。與NMHN的13C NMR相比,NMHNG的13C NMR中出現6個新的葡萄糖醛酸的碳信號(δ99.94,72.9,75.57,71.3,75.4,170.0),其它碳信號與NMHN非常相似。從遠程相關譜圖HMBC譜中看到(δ5.44) 的葡萄糖醛酸的端基氫信號與C-4(δ157.7)有相關。1H NMR 中NMHNG的葡萄糖醛酸特征信號端基質子 H(δ5.44,J=7.2Hz)偶合常數大于7,證實其為β構型糖苷鍵。綜合上述信息,可確定NMHN在豬肝微粒體的催化下生成了NMHN-β-D-葡萄糖醛酸苷結合物,氫譜和碳譜核磁共振化學位移歸屬見表1。

Table 1 Proton and carbon NMR chemical shift assignments for the glucuronide of NMHNG (DMSO-d6,δ in ppm,J in Hz)
本文考察了不同種屬肝微粒體對NMHN的生物轉化效率,利用能夠高效轉化NMHN生成NMHNG的豬肝微粒體,使用生物合成的方法制備了NMHNG。同時通過固相萃取小柱實現了反應混合液中NMHNG的富集、分離和純化,借助現代波譜分析手段對NMHNG的結構進行了表征。該生物合成法產率高、制備物純度高、制備過程簡單,為NMHNβ-D-葡萄糖醛酸苷的高效制備提供了方法。