產纖維素酶枯草芽孢桿菌Kpg酶學性質研究及對麩皮纖維素含量的影響

聶利波，李 旺，史敦勝，宋洋洋，王占彬

(河南科技大學 動物科技學院，河南 洛陽 471003)

中國是農業大國，每年能夠生產數以萬噸糧食，同時也產生大量農產品廢棄物。其中的大部分都以焚燒的方式進行處理，不僅造成了環境的污染，同時也浪費了大量資源[1]。秸稈、麩皮、稻殼等產量較大，同時也是浪費最嚴重的，而其中的主要成分纖維素卻可以作為飼料原料供畜牧業生產使用。但由于纖維素結構比較復雜，這些纖維素原料難以被動物消化吸收，同樣會造成資源的浪費[2]。

纖維素酶能夠將纖維素降解為可以供動物機體消化吸收的葡萄糖，為緩解畜牧業中飼料來源緊缺的局面提供可能。纖維素酶的來源十分廣泛，在植物、細菌、真菌和動物體內均能分泌或生成纖維素酶[3-4]。隨著科學技術的發展，尤其是分子生物技術的逐漸成熟，科技工作者通過基因重組和篩選的方式，從自然界中獲得能夠降解纖維素的纖維素酶基因，將其整合到特定細菌的基因組中，以便達到降解纖維素的目的。由于大多數的纖維素酶都是通過微生物分泌的，進行篩選和構建重組菌時，選擇對動物機體無害的益生菌作為宿主菌，不但能促進動物機體對營養物質的消化吸收，而且對目前畜牧行業存在的抗生素濫用現象也是一種有效的抵制。

本試驗的研究對象是一株源自于動物腸道的益生菌——野生型枯草芽孢桿菌(B.subtilis) LN，經過基因重組技術改造后，篩選出能夠表達纖維素酶的重組菌B.subtilisKpg，通過研究其最適反應溫度和最適反應pH，以及對麩皮中纖維素和真蛋白含量的影響，為重組菌B.subtilisKpg的實際應用提供參考。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 菌 種 產纖維素酶的重組菌B.subtilisKpg，野生型B.subtilisLN，均由河南科技大學生物飼料和精準營養實驗室保存。

1.1.2 培養基 LB固體培養基：胰蛋白胨10 g，酵母粉5 g，氯化鈉10 g，瓊脂粉20 g，蒸餾水定容到1 L，121 ℃高溫高壓滅菌25 min。

種子培養基：牛肉膏0.5 g，蛋白胨1 g，氯化鈉0.5 g溶于90 mL滅菌水，待溶解完全后，定容至100 mL，121℃滅菌25 min。

固體發酵培養基：麩皮100 g，氯化銨2 g，氯化鈉1 g，滅菌水60～70 mL。

1.1.3 主要試劑的配制 CMCA底物溶液：羧甲基纖維素鈉(CMC-Na)1 g，磷酸鹽緩沖液定容至100 mL。121 ℃滅菌25 min，4 ℃保存。

DNS染液：3，5-二硝基水楊酸6.3 g定容至500 mL，45 ℃恒溫水浴鍋中溶解，逐步加入氫氧化鈉21.0 g，不斷攪拌，至完全溶解。緩慢加入四水酒石酸鈉182 g，再依次加入苯酚5 g，無水亞硫酸鈉5 g，置于45 ℃恒溫水浴鍋中，邊攪拌邊補滅菌水，使添加物完全溶解，定容至1 L。將配制好的溶液轉移褐色瓶中，置于避光處7 d后使用。

不同pH濃度磷酸鹽緩沖液的配制見表1，配制完成后以弱酸弱堿進行pH值的標定后定容至1 L。

表1 不同pH濃度磷酸鹽緩沖液的配制

1.2 方法

1.2.1 粗酶液的提取 取實驗室保存的重組菌B.subtilisKpg 20 μL均勻涂布于LB固體培養基上，37 ℃倒置培養16 h。將活化好的B.subtilisKpg挑取單菌落，接種于種子培養基中，置于37 ℃，220 r/min恒溫搖床振蕩培養18 h。將菌液置于4 ℃，5 000 r/min超低溫離心機中離心30 min，上清液即為粗酶液。利用同樣的方法制備野生型B.subtilisLN粗酶液。

1.2.1 不同溫度對重組菌B.subtilisKpg纖維素酶活性的影響測定 試驗分為7個試驗組，每組取制備好的重組菌B.subtilisKpg粗酶液1 mL，加入2 mL的CMCA底物溶液，混勻后分別置于不同反應溫度(30 ℃、40 ℃、50 ℃、60 ℃、70 ℃、80 ℃、90 ℃)的恒溫水浴鍋中，水浴30 min。待水浴結束后加入2.5 mL DNS染液混勻，100 ℃沸水浴中煮沸10 min，迅速通過流水冷卻至室溫后用去離子水定容至25 mL。以不加酶液的相同底物為對照組，利用紫外線分光光度計在540 nm波長條件下，測定OD值。各試驗組3個重復。每個溫度梯度試驗組均以野生型B.subtilisLN為對照。

酶活力單位規定： 50 ℃條件下，以1 mL纖維素酶粗酶液在1 min內水解羧甲基纖維素鈉生成1 μg葡萄糖的酶量為1個酶活力單位。

酶活力計算公式：

式中：X. 酶活力(U/mL)；W. 測得的吸光度值；N. 酶樣所稀釋的倍數；k. 葡萄糖標準曲線的斜率；T. 反應時間；M. 酶樣體積；1000. mg轉化為μg。

1.2.2 不同pH對重組菌B.subtilisKpg纖維素酶活性的影響測定 試驗分為10個試驗組，每個試驗組取制備好的重組菌B.subtilisKpg粗酶液1 mL，分別加入2 mL不同pH(3.5、4.0、4.5、5.0、5.5、6.0、6.5、7.0、7.5、8.0)配制的CMCA底物溶液，混勻后置于50 ℃恒溫水浴鍋中，水浴30 min。待水浴結束后加入2.5 mL DNS染液混勻，100 ℃沸水浴中煮沸10 min，迅速通過流水冷卻至室溫后用去離子水定容至25 mL。以不加酶液的相同底物為對照組，測定OD540值。每組3個重復，每個溫度梯度試驗組均以野生型B.subtilisLN為對照。

1.2.3 不同溫度、pH對重組菌B.subtilisKpg纖維素酶活性的影響測定 取制備好的重組菌B.subtilisKpg粗酶液1 mL，分別加入不同pH值(5.5、6.0、6.5、7.0、7.5、8.0)配置的CMCA底物溶液，混勻后分別置于不同反應溫度(40 ℃、50 ℃、60 ℃、70 ℃、80 ℃)恒溫水浴鍋中，水浴30 min。待水浴結束后加入2.5 mL DNS染液混勻，100 ℃沸水浴中煮沸10 min，迅速通過流水冷卻至室溫后用去離子水定容至25 mL。以不加酶液的相同底物為對照組，測定OD540值。各試驗組3個重復。

1.2.4 麩皮發酵試驗 選擇5個固體發酵培養基分別加入無菌種子培養基、重組菌B.subtilisKpg粗酶液、重組菌B.subtilisKpg菌液、野生型B.subtilisLN粗酶液和野生型B.subtilisLN菌液，添加量均為10 mL。混勻置于燒杯中，用報紙包好，并用針頭扎孔，放置于37 ℃ 恒溫培養箱內，靜止培養6 d。每隔1 d翻動一次，并適當補水。發酵完成的培養產物置于65 ℃烘箱中進行烘干，至培養產物中水分一致。

1.2.5 發酵麩皮中纖維素和真蛋白含量的測定 發酵麩皮中纖維素和真蛋白含量的測定參照《飼料分析及飼料質量檢測技術》中纖維素[5]67-77和真蛋白[5]48-53的測定方法進行。

1.2.6 數據統計 試驗結果用Excel 2013軟件進行預處理，用SPSS 19.1統計軟件對數據進行單因素方差分析，采用Duncan氏法進行多重比較檢驗。

2 結果與分析

2.1 不同溫度對纖維素酶活性的影響

不同反應溫度下，重組菌B.subtilisKpg的纖維素酶活性均大于野生型B.subtilisLN，但兩者的粗酶液隨溫度的變化趨勢類似。反應溫度為60 ℃時，酶活性最大為108.45 U/mL，與對照組相比提高了172%。超過60 ℃之后，隨著反應溫度的升高，重組菌B.subtilisKpg纖維素酶活性逐漸降低，反應溫度到達90 ℃時，纖維素酶活最低，但依舊能表現出一定的活性，為8.80 U/mL(圖1)。

2.2 不同pH對纖維素酶活性的影響

pH值為6時，重組菌B.subtilisKpg纖維素酶活性最大為97.72 U/mL，相對于野生型B.subtilisLN酶活性提高了220%。pH為3時，重組菌B.subtilisKpg和野生型B.subtilisLN的纖維素酶活性均為最低，僅為5.03 U/mL和5.65 U/mL。反應環境為弱堿時，纖維素酶的最適pH為7.5，酶活性為78.24 U/mL，隨著pH值的增大，纖維素酶活性逐漸降低。在弱堿環境中，重組菌B.subtilisKpg纖維素酶仍能表現出較高的活性(圖2)。試驗結果顯示，pH值為7時的中性環境并不是重組菌B.subtilisKpg纖維素酶的最適反應環境。

圖1 不同溫度對重組菌與野生菌纖維素酶活力的影響

圖2 不同pH對重組菌與野生菌纖維素酶活力的影響

注：同組數據標注不同小寫字母表示差異顯著(P<0.05)，相同字母者為差異不顯著(P>0.05)。

Notes: In the same group, values with different lowercase letter mean significant difference (P<0.05), the same letter mean insignificant difference (P>0.05).

2.3 不同溫度、pH對纖維素酶活性的影響

通過對重組菌B.subtilisKpg粗酶液在不同反應溫度和不同pH環境中的酶活性測定發現，在60 ℃，pH為6.0時其酶活力最高，達到113.58±1.8 U/mL，與其他條件下相比差異顯著(P<0.05)(表2)。相同溫度條件下，當pH為6時，重組菌B.subtilisKpg的粗酶液活力均高于其他pH條件下的酶活力；相同pH環境下，溫度為60 ℃時，重組菌B.subtilisKpg的粗酶液活力均高于其他溫度條件下的酶活力。試驗結果與之前所測結果相符，為重組菌B.subtilisKpg的應用提供參考。

2.4 重組菌B.subtilis Kpg對麩皮粗纖維和真蛋白含量的影響

由表3可看出，重組菌B.subtilisKpg菌液和粗酶液均能夠對麩皮纖維素含量產生顯著影響(P<0.05)。在不添加任何菌液和粗酶液的無菌種子培養基中，發酵后麩皮的纖維素含量為13.1%，添加重組菌粗酶液可以使麩皮中纖維素含量降低至12.2%，添加重組菌菌液可將纖維素含量降低至11.7%，與無菌種子培養基試驗組相比差異顯著(P<0.05)；將宿主菌添加到麩皮中，粗酶液和菌液對麩皮中纖維素含量影響不明顯(P>0.05)。通過發酵麩皮試驗發現，重組菌對纖維素的降解效果顯著(P<0.05)，證明了重組菌B.subtilisKpg在生產實踐中對纖維素酶降解的可靠性。

表2 不同溫度、pH對重組菌纖維素酶活力的影響

注：同行數據肩標為不同小寫字母表示差異顯著(P<0.05)，相同字母或無字母表示差異不顯著(P>0.05)。下同。

Notes: In the same row, values with different lowercase letter superscripts mean significant difference (P<0.05), the same or no superscripts mean insignificant difference (P>0.05) .The same below.

表3 發酵麩皮中纖維素和真蛋白成分變化

注：同行數據后肩小寫字母為P<0.05時差異顯著性檢測，相同字母者為差異不顯著。

Note::Values with different lowercase superscripts in the same line are significantly different (P<0.05), the same superscripts are insignificantly different.

由表3可看出，重組菌B.subtilisKpg和野生型B.subtilisLN均能將固體發酵培養基中的無機氮轉化為有機氮，提高真蛋白含量且差異顯著(P<0.05)。在不添加任何菌液和粗酶液的無菌種子培養基中，發酵后麩皮的真蛋白含量為17.4%，添加重組菌B.subtilisKpg粗酶液和野生型B.subtilisLN粗酶液的發酵麩皮，真蛋白含量提高至19.0%和19.1%，與無菌種子培養基試驗組相比差異顯著(P<0.05)，但兩者之間無明顯差異(P>0.05)；添加重組菌B.subtilisKpg和野生型B.subtilisLN的菌液也能提高發酵麩皮中真蛋白含量，且差異顯著(P<0.05)。試驗發現，在發酵麩皮過程中，添加粗酶液效果優于添加相應菌液。在一定的發酵時間內，B.subtilis粗酶液可以直接發揮作用，縮短了菌液生長分泌相應酶類的培養周期。

3 討 論

由于在植物中的纖維素酶含量少且難以提取，因此大多數纖維素酶的篩選都來自于微生物中。經常被科技工作者用來生產纖維素酶的微生物有青霉、曲霉、芽孢桿菌、酵母菌等[6-9]。本試驗選用的研究對象是對野生型B.subtilisLN進行DNA改造后，能夠分泌纖維素酶的重組菌B.subtilisKpg。野生型B.subtilisLN源自于動物腸道益生菌菌群，在生產使用中對動物機體造成的不良影響可降到最低。劉鑫[10]以藏綿羊源的產纖維素酶B.subtilis為研究對象，使用不同的抗生素進行處理，結果發現其具有良好的耐堿性、耐酸性和抗藥性。本試驗同樣采用的是動物源B.subtilis，為重組菌B.subtilisKpg的生產應用提供理論支持。其次，B.subtilis自身對外界環境的耐受程度比較好，生存條件要求不高，便于培養[11]。在研究過程中發現，在低溫、高溫和強酸條件下，重組菌B.subtilisKpg分泌的纖維素酶均能表達一定的活性，證明了重組菌B.subtilisKpg具有較強的耐受性。B.subtilis表達系統能夠直接將表達產物分泌到細胞外，增加了產物的回收利用效率。B.subtilis憑借自身高效的信號肽和分子伴侶系統，可以有效地提高目的蛋白的分泌量。陳大超[12]利用B.subtilis表達系統構建能夠降解有機磷的新型菌株，使其分泌的酶活性提高了0.9倍。本試驗選用野生型B.subtilisLN作為宿主菌，目的是為了借助B.subtilis高效的表達系統，增加纖維素酶的表達量，為生產實踐提供便利。

在本研究中，通過設計不同的反應溫度梯度，探索重組菌B.subtilisKpg分泌的纖維素酶表達活性，結果發現重組菌B.subtilisKpg在30～90 ℃范圍內均能表現出一定活性。張偉[13]在構建產木聚糖酶B.subtilis的過程中發現，重組菌在85 ℃的高溫環境中，酶活性最強，在65～95 ℃環境中，仍能保持酶活性最高時的70%，與本試驗結果相似。B.subtilis在生長繁殖過程中會產生芽孢，對極端溫度有較好的耐受性，可以減輕表達產物受溫度、紫外線以及其他物質的破壞，保持相應的活性[14]。在飼料加工過程中，制粒時伴隨著高溫的產生，一般為60～80 ℃范圍內，制粒時間大概1～2 min，因此需要微生物或者酶制劑具有一定耐熱性[15]。重組菌B.subtilisKpg能使酶活性較強的溫度集中在40～70 ℃之間，但在80 ℃時僅能表現出最高酶活性的40.1%，有待進一步改進提高。影響纖維素酶活性的因素除了溫度，pH的影響也很大。在動物的消化系統中，各部位的pH大多維持在5～7.5之間，呈中性偏酸。重組菌B.subtilisKpg表達的纖維素酶在pH5.5～8之間均能表現出較高的活性，避免了纖維素酶在使用過程中失活的現象發生。劉暉[16]在纖維素酶的耐受性試驗研究中發現，其纖維素酶的最佳pH環境維持在5～7之間，與本試驗結果相似，但酶活性最高時是在pH為5，而在本研究中，最適pH為6，這可能與纖維素酶基因的來源不同有關。纖維素酶是由多種水解酶組合在一起形成的，不同基因來源的纖維素酶基因，其組分比例也存在差異，因此對最適環境也會存在差異[17-18]。

在固體發酵試驗中，選用麩皮為發酵原料，麩皮自身纖維素含量較高，且每年我國的麩皮產量很大[19]。研究重組菌B.subtilisKpg對麩皮的影響，對合理運用麩皮具有一定的意義。通過試驗發現重組菌B.subtilisKpg可以降低麩皮中的纖維素含量，效果顯著(P<0.05)，同時還能夠顯著提高真蛋白的合成(P<0.05)。崔晨曉[20]在研究酵母菌發酵對小麥麩皮含量的影響中發現，酵母菌35 ℃發酵48 h條件下能使麩皮中的膳食纖維含量降低6.45%，真蛋白含量提高21.97%。在本試驗中，重組菌B.subtilisKpg可以將麩皮纖維素降低10.7%，B.subtilis在發酵過程中利用纖維素酶可以破壞纖維素的結構，使其水解為單糖，降低纖維素含量。但在真蛋白的提高上效果不如酵母菌，僅提高9.2%。這是由于酵母菌更適合在麩皮基質中生長，在生長過程中將麩皮中的無機氮轉化有機氮[21]。試驗過程中還發現，發酵過程中，添加重組菌B.subtilisKpg菌液對麩皮中纖維素的降解最好，添加重組菌B.subtilisKpg粗酶液對麩皮中的真蛋白提高效果也是最好。因為在降解纖維素的過程中，添加菌液可以增加纖維素酶的表達量。但是，纖維素酶對真蛋白的轉化卻無明顯作用，真蛋白含量的提高，只能依靠B.subtilis自身生長過程中表達或分泌的某種產物。同時在細菌生長過程中，也會消耗掉一部分的真蛋白，因此直接添加粗酶液，減少了細菌對真蛋白的利用，提升效果優于直接添加菌液[22]。

4 結 論

重組菌B.subtilisKpg分泌纖維素酶的最適反應溫度為60 ℃，最適pH為6.0，在兩者協同作用下纖維素酶活性為113.58 U/mL。重組菌B.subtilisKpg能夠有效減少麩皮中纖維素含量，同時明顯提高真蛋白含量。