凍肉中食源性致病菌的快速檢測方法的研究

趙靜 唐懷志

【摘 要】本文以食源性致病微生物作為目標菌，利用PCR技術，建立一種快速高效檢測凍肉中致病微生物的PCR反應體系。并對反應體系的靈敏度和特異性進行檢測分析，得到最適合的快速檢測食物中致病微生物的方法。

【關鍵詞】食源性致病微生物;PCR;靈敏度;特異性

1 前言

伴隨著國民經濟的發展，食品工業規模在不斷擴大。但是近年來食源性致病菌是引起食源性疾病的屢見不鮮[1]，以微生物性暴發事件數和發病人數最多，分別為總食源性疾病數的40.93%和56.39%[2]。我國是肉制品生產和消費大國，肉制品易受各種微生物的污染，滋生多種致病菌[3]。大腸桿菌是肉類中較為常見的食源性致病菌，可污染各種肉制品。長期以來，這種病原菌的實驗室診斷主要依靠傳統的細菌學檢測方法，步驟繁瑣且需要數日才能得出結論[4]。免疫學檢測方法是一種能夠將高度專一性的抗原-抗體反應與高度敏感性的酶催化作用結合，但免疫學檢測方法一般需要合適數量的純化細菌，或者對樣品進行濃縮用來提高菌液的濃度，所以一般需要進行較長時間的前期增菌[5]。近年來，聚合酶鏈反應是應用最廣泛的分子生物學技術，以其高度保守的核酸序列設計特異性引物進行擴增，用凝膠電泳和紫外核酸檢測儀觀察結果[6]。

本研究旨在基于PCR技術，用于檢測市場中凍肉食品內含有的大腸桿菌的含量，建立一套對凍肉食品中的大腸桿菌進行快速、高效、精準的檢測方法，為食源性致病微生物快速檢測提供參考。主要內容包括三部分：大腸桿菌的PCR反應體系建立;對大腸桿菌PCR退火溫度的反應條件的優化;實例樣品檢測，確定PCR方法的靈敏度及PCR的特異性分析。

2 材料與方法

2.1 材料及設備

大腸桿菌（由吉林農業科技學院微生物實驗室分離菌株）;Taq酶、DNA Marker DL5000均購自百泰克生物技術有限公司;凍肉;SW-079PCR分析儀（寶生物工程大連有限公司）、JY600t電泳儀（北京君意東方電泳設備有限公司）、 LAS 500生物分子成像儀（北京綠綿科技有限公司 ）、FA1004A電子天平（上海精天電子儀器有限公司）、SW-073雙人單面凈化工作臺（蘇州凈化設備有限公司）、HH-8數顯恒溫水浴鍋（金壇市科析儀器有限公司）、HZQ-X10CA恒溫振蕩培養箱（上海一恒科技有限公司）、 FMB20制冰機（上海比朗有限公司）、5424R（冷凍）艾本德臺式高速離心機（上海昆士蘭生物科技發展有限公司）、PHB-10塞里多斯酸度計（上海旦鼎國際貿易有限公司）等;其它化學試劑均為化學純。

2.2 方法

2.2.1 引物設計 選擇大腸桿菌的編碼溶血素基因（hlyA）作為目的基因。用Primer 5.0分析軟件分別設計引物，上游引物為F 5`-GCATCATCAAGCGTACGTTCC-3`，下游引物為R 5`-AATGAGCCAAGCTGGTTAAGC-3`。引物由金斯瑞生物科技有限公司合成。

2.2.2 菌種的培養 將保存的菌種取出，37℃水浴快速解凍，取100 μl再接種到100 ml LB液體培養基。37℃，搖床培養過夜。取培養液劃線接種于LB固體培養基上，培養，分離出單菌落。挑取平板上的單菌落接種于LB液體培養基培養至對數生長期進行后續試驗。

2.2.3 基因組DNA的提取 采用郭新梅，康冀川[7]等人的改良CTAB法。提取1 mL對數期菌液，12000 r/min離心5 min，向細菌沉淀中依次加入10 % SDS 30 μL，CTAB提取緩沖液（Tris- HCl 50 mmol/L，pH值8.0，EDTA 10 mmol/L;NaCl 0.7 mol/L;CTAB 1.5%）150 μL，加蛋白酶K 5 μL， CTAB/NaCl 80 μL，于60℃條件下水浴 40 min;加等體積的酚∶氯仿∶異戊醇（25∶24∶1），輕輕混勻，在4℃條件下以轉速12000 r/min離心5 min;取上清液，加入400 μL異丙醇混勻，在4℃條件下用轉速12000 r/min離心5 min;棄上清液，加入70%的乙醇洗滌沉淀，自然晾干，用100 μL含RNA酶A（20 mg/mL）的TE溶解DNA，于-20℃條件下冷凍保存備用。

2.2.4 食品樣品前處理和模板DNA的提取 （1）樣品處理：無菌條件下取25 g或25 mL食品樣品，放入225 mL滅菌生理鹽水中均質，制成10倍梯度稀釋液。（2）增菌培養：將菌液接入7.5% NaCl肉湯或胰蛋白胨肉湯中，37℃振蕩培養半小時。（3）取菌液4℃條件下4000 r/min離心10 min，取上清液加入另一滅菌離心管中以10000 rpm離心20 min，沉淀依據細菌基因組DNA提取步驟進行提取，利用已經建立的PCR反應程序進行檢測。取PCR產物在瓊脂糖凝膠上進行電泳，利用凝膠成像系統觀察結果。

2.2.5 靈敏度及特異性分析 將致病微生物培養增菌后接種于食品樣品中，培養后計數，將已測濃度的菌液用生理鹽水稀釋，得到稀釋10-1、10-2、10-3、10-4、10-5、10-6、10-7倍的稀釋液，取2 mL提取DNA，以各自提取DNA為模板進行PCR檢測。

3 結果與分析

3.1 PCR反應條件的優化

PCR退火溫度優化結果，為了選擇最佳的退火溫度，參照查閱的文獻，分別選擇47.3 ℃、48.4℃、50.0℃、51.7 ℃、53.3℃、54℃進行多重PCR擴增，結果如圖1所示。隨著退火溫度的升高，條帶有明顯變亮的趨勢，但到53.3℃時已變化不大，因此確定53.3 ℃為多重PCR的最佳的退火溫度。

3.2 人工污染樣品的檢測

按照2.2.4的方法將食品進行處理，并提取檢測樣品的DNA，將提取的凍肉中的DNA進行PCR擴增。觀察結果如圖2所示，圖中出現所需菌種的擴增的特異性條帶，并且條帶清晰明亮，表明食品中存在大腸桿菌存在，并能成功擴增出結果。

3.3 樣品PCR靈敏度檢測

將大腸桿菌人工感染凍肉處理液，經培養直接提取DNA，以DNA為模板，進行10倍梯度稀釋然后進行PCR檢測，從圖3可以看出大腸桿菌的最低檢測限為2×10-4 ng/μL。

4 結論與討論

根據本試驗的結果表明，選擇大腸桿菌的編碼溶血素基因（hlyA）作為目的基因設計的特異性引物，引物的特異性較強且互不干擾，可以用于PCR檢測大腸桿菌。在PCR反應體系的退火溫度的條件優化中確立了53.3℃是最優的退火溫度。在凍肉的檢測樣品中大腸桿菌的最低檢測含量為2×10-4ng/μL。本研究在凍肉中檢出大腸桿菌具有較強特異性。

本研究中特異性引物的設計存在些問題，在PCR的大腸桿菌的陰性對照中，存在一條不是預估的條帶，但是并不影響大腸桿菌的鑒定。所以特異性目的基因的選擇顯得尤為重要，本試驗對大腸桿菌的靈敏度最低檢測限較低，通過討論分析：影響因素大致分為兩個，一是檢測樣品的基因組DNA濃度與含量較低，二是凍肉中脂肪和蛋白質的含量較多，介質成分干擾PCR結果。但大多數的肉制品的致病菌的感染劑量均大于103CFU/ml[8]。所以本試驗的靈敏度檢測結果對實際的應用具有參考意義。

本試驗建立了凍肉中大腸

桿菌的PCR檢測方法，大大縮短了檢驗時間與檢驗成本。檢測出凍肉中的兩種致病菌具有很高的特異性、較高的靈敏度、成本低的特點，與實驗室中傳統的食品中致病菌的檢測相比，極大的節省時間，在食品安全檢測中具有一定實際應用價值。

參考文獻：

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