王巍 劉文鑫 黃永彬 洪運廣 楊志剛
1廣東醫科大學附屬醫院血液病研究室(廣東湛江 524000);2上海中醫藥大學附屬岳陽中西醫結合醫院血液科實驗室(上海 200437)
Wnt/β-catenin信號通路是一條在進化中較為保守的通路,該通路活化后通過關鍵分子β-catenin與核內轉錄因子TCF/LEF(T cell factor/Lymphoid enhancer factor)結合形成轉錄復合體、調控下游靶基因表達而發揮生物學作用,其異常激活與多種腫瘤包括急性白血?。╝cute leukemia,AL)發病相關[1-5]。脊椎動物基因組一般都含有4種TCF/LEF,即LEF1、TCF1、TCF3和TCF4,其中LEF1與白血病發生發展的關系較為密切[6-9]。為研究Wnt/β-catenin信號通路是否通過β-catenin/LEF1轉錄復合體在AL發病中發揮作用,本文檢測了AL患者β-catenin和LEF1的表達并分析了相關性,現將結果報告如下。
1.1 病例資料及細胞株 收集廣東醫科大學附屬醫院血液科2016年3月至2017年3月初診AL患者骨髓標本85例,其中男56例、女29例,中位年齡39歲(10~79歲)。急性髓系白血病(acute myeloid leukemia,AML)62例,其中 M1 2例、M2 10例、M3 13例、M4 5例、M5 28例、M6 1例、AML未定型3例;急性淋巴細胞白血病(acute lymphoblastic leukemia,ALL)23例,其中 B-ALL 20例,T-ALL 3例,診斷符合張之南主編的《血液病診斷及療效標準》(第3版)。對照組20例為同期診治的非惡性血液病患者及造血干細胞移植供著(增生性貧血9例,原發免疫性血小板減少癥5例,感染性骨髓像3例,移植供著3例),其中男9例,女11例,中位年齡37.5歲(14~65歲)。人白血病細胞株K562、HL-60、Raji為廣東醫科大學附屬醫院血液病研究室保存,THP-1細胞由廣東醫科大學附屬醫院消化內科全娟花博士饋贈。
1.2 主要試劑 淋巴細胞分離液購置天津灝洋生物公司;TRIzol、逆轉錄試劑盒、SYBR@Premix Ex TaqTMⅡ試劑盒購自TaKaRa公司。
1.3 骨髓單個核細胞分離及實時定量RT-PCR取抗凝骨髓液2~5 mL,淋巴細胞分離液分離單個核細胞,1×107細胞加1 mL TRIzol吹打混勻,提取總RNA,紫外分光光度計檢測RNA質量和濃度,按照TaKaRa逆轉錄試劑盒說明書逆轉錄cDNA。PCR引物用在線軟件primer 3設計好后由英濰捷基公司合成,β-catenin及內參基因GAPDH引物序列同前[11],LEF1上游引物:5′-AGGCCTCTACAACAAGGGAC-3′,下游引物:5′-TCCTGGAGAAAAGTGCTCGT-3′,擴增片段長度208 bp。按TaKaRa公司SYBR@Premix Ex TaqTMⅡ試劑盒說明書進行PCR 反應,總體系 10 μL,其中 SYBR@Premix Ex TaqⅡ(2×)5 μL,上下游引物(10 μmol/L)各0.4 μL,cDNA 1 μL,滅菌超純水3.2 μL。PCR擴增條件:95℃預變性30 s;95℃ 5 s,60℃ 30 s,共45個循環;之后進行熔解曲線分析。計算2-ΔCT值作為各標本mRNA相對表達量,ΔCT=目的基因CT值-內參基因CT值。
1.4 細胞培養 K562、HL-60、THP-1、Raji細胞于含10%胎牛血清的RPMI 1640培養基培養,待細胞呈對數生長時,取1×107細胞加1 mL TRIzol提取RNA并逆轉錄,定量PCR檢測β-catenin及LEF1表達。
1.5 統計學方法 采用SPSS 17.0軟件進行統計學分析。細胞株檢測結果用均數±標準差表示;病例標本檢測結果不符合正態分布,用中位數表示,組間比較用Mann-WhitneyU檢驗,相關性分析用Spearman相關。P<0.05認為差異有統計學意義。
2.1 RNA質量及方法可靠性分析 所提RNA經分光光度計檢測,A260nm/A280nm值均在1.8~2.0之間,純度好,可用于定量PCR檢測。熔解曲線分析顯示,各基因PCR擴增產物熔解溫度均一,熔解峰為銳利的單一峰,說明擴增產物均一,無非特異擴增及引物二聚體(圖1)。

圖1 β-catenin、LEF1及GAPDH PCR反應熔解曲線Fig.1 Resolving curves of β-catenin,LEF1 and GAPDH PCR products
2.2 AL患者β-catenin、LEF1 mRNA表達及相關性 β-catenin和LEF1在AML、ALL及對照組均可檢測到表達,β-catenin mRNA表達由高到低依次為ALL、AML和對照組,其中ALL與對照組、AML與對照組相比,差異具有統計學意義(Z=-3.008,P=0.003;Z=-2.333,P=0.020),ALL與AML之間差異無統計學意義(Z=-1.746,P=0.081)。LEF1 mRNA表達由高到低的依次為ALL、對照組和AML,ALL與對照組、AML與對照組、ALL與AML差異均有統計學意義(Z=-5.430,P=0.000;Z=-3.191,P=0.001;Z=-6.781,P=0.000)(表1)。Spearman相關分析顯示,ALL、AML組β-catenin與LEF1 mRNA表達均呈正相關(r=0.526,P=0.010;r=0.420,P=0.001)。
2.3 AL細胞株β-catenin、LEF1 mRNA表達 三種AML細胞株,THP-1細胞β-catenin mRNA表達最高,LEF1表達最低;K562細胞β-catenin mRNA表達最低,LEF1表達最高;HL60細胞β-catenin、LEF1 mRNA表達介于前兩種細胞株之間。THP-1細胞β-catenin、LEF1 mRNA表達方向基本與AML患者一致,可作為研究Wnt/β-catenin信號通路的AML細胞模型。Raji細胞與AML細胞株相比βcatenin mRNA表達最低,LEF1表達也最低,基本檢測不到。Raji細胞株β-catenin、LEF1 mRNA表達方向與ALL患者不同,不宜作為研究Wnt/βcatenin信號通路的ALL細胞模型(表1)。
Wnt通路是一條在進化中較為保守的信號通路,分為經典的Wnt/β-catenin通路、非經典的Wnt/Ca2+和Wnt/PAP(planar cell polarity,平面細胞極性)通路,其中Wnt/β-catenin信號通路研究較多。Wnt/β-catenin通路簡單地說由胞外因子(Wnt蛋白)、跨膜受體(frizzled蛋白和LRP5/6)、胞內蛋白復合體(APC、Axin、GSK-3β、CK1、β-catenin等)、核內轉錄因子(TCF/LEF)、下游靶基因等組成,其中β-catenin是關鍵分子、TCF/LEF是轉錄調控開關。Wnt/β-catenin信號通路活化后β-catenin降解減少,胞漿中增多的β-catenin進入細胞核,與核內轉錄因子TCF/LEF結合形成轉錄復合體、調控下游靶基因轉錄而發揮該通路的調控作用。

表1 β-catenin和LEF1 mRNA在AL、對照組和細胞株中的表達Tab.1 Expressions of β-catenin and LEF1 mRNA in AL groups,control group and cell lines
TCF/LEF家族中LEF1參與淋巴細胞分化[10-11]、粒系發育[12],與白血病發生發展關系較密切,比如過表達LEF1基因的小鼠可發展成為B-ALL或免疫球蛋白重鏈D-J重排的AML[7],成人B-ALL患者高表達 LEF1預后不良[8],正常核型AML患者LEF1高表達預后良好[9]等。急性白血病存在Wnt/β-catenin信號通路的異常激活[13-14],該通路激活后β-catenin是否與LEF1結合發揮致白血病作用呢?為研究該問題,本文檢測了AL患者β-catenin和LEF1的表達及相關性。結果顯示,ALL患者βcatenin、LEF1 mRNA表達高于對照組,并且兩者表達呈正相關,提示β-catenin/LEF1轉錄復合體可能在ALL發病中發揮作用。而AML則不然,與對照組相比,β-catenin mRNA表達增高,LEF1 mRNA表達降低,兩個基因表達方向雖不同,但相關分析顯示仍呈正相關。ALL患者LEF mRNA表達上調與JIA等[15]的研究結果一致。AML患者表達下調與GANDILLET等[16]的研究結果基本一致,該研究用qPCR方法檢測了7例β-catenin表達較豐富的AML患者84個Wnt/β-catenin通路相關基因,與正常骨髓CD34+細胞相比,AML患者LEF1 mRNA表達下調。而FU等[17]的研究結果則相反,該研究比較了101例AML患者和20例健康對照LEF1 mRNA表達,顯示AML患者高于對照組。METZELER等[9]、ALBANO等[18]分別研究了LEF1 mRNA表達對正常核型AML、急性早幼粒細胞白血?。╝cute promyelocytic leukemia,APL)患者預后的影響,但均未與對照組比較(未設對照)。目前LEF1在AL中表達研究還較少,而且本實驗、GANDILLET 等[16]和FU等[17]所設置的對照不同,依次為非惡性血液病和移植供著、正常骨髓CD34+細胞、健康人,因此LEF1在AML中的表達是上調還是下調尚難下定論。LEF1至少有2種剪接體,一種為全長型,具有轉錄激活作用;另一種為截短型(缺乏β-catenin結合位點),對轉錄具有抑制作用[7]。本實驗PCR檢測的是總LEF mRNA,FU等[17]未標明檢測的轉錄本,METZELER 等[9]和 ALBANO 等[18]檢測的也是總LEF mRNA,因此LEF1在AML患者表達研究還需增加全長型LEF檢測更準確地進行。另外,本研究結果還顯示THP-1細胞β-catenin、LEF1 mRNA表達方向基本與AML患者一致,可作為研究Wnt/β-catenin信號通路的AML細胞模型。
綜上所述,AL患者有Wnt/β-catenin路通的異常激活,β-catenin/LEF1轉錄復合體可能在ALL發病中發揮作用,LEF1在AML中的表達還需擴大樣本量、增加全長型LEF1檢測、規范對照設置進一步研究。
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