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紫外線等離子體復合誘變解淀粉芽孢桿菌提高NAG 產量

2018-06-19 02:24:48黎恒張琳陳紅爽張孟陽黃娟張嵐王德培
食品研究與開發 2018年12期
關鍵詞:產量

黎恒,張琳,陳紅爽,張孟陽,黃娟,張嵐,王德培

(工業發酵微生物教育部重點實驗室,省部共建食品營養與安全國家重點實驗室,天津科技大學生物工程學院,天津300457)

N-乙酰-D-氨基葡萄糖(N-acetyl-D-glucosamine,NAG)是氨基葡萄糖(glucosamine,GlcN)的乙?;苌?,是生物細胞內許多重要多糖的基本組成單位,其在治療關節炎、抑制腫瘤和抗氧化等方面有明顯效果,被廣泛應用于醫療、化妝品以及食品行業[1-3],市場需求巨大。目前生產NAG的方法主要是甲殼素酸水解法[4]和化學合成法[5],但因環境污染巨大以及存在過敏風險等因素,安全環保且生產周期短的微生物發酵法開始被關注和研究。而采用微生物發酵法生產NAG,關鍵在于菌株,目前國內外研究方向主要是一些霉菌、大腸桿菌及芽孢桿菌,其發酵產量均不太理想[6-8],因此通過分子改造或誘變選育來篩選高產菌株具有非常重要的意義。

等離子體誘變是近年來發展迅速的一種物理誘變手段,由自由基、帶電粒子、中性粒子、光子等多種離子組成的等離子束作用于目標菌株,具有高突變率和突變株遺傳穩定性良好的特點,被廣泛地應用于菌種誘變[9]。與分子手段相比,等離子體誘變育種具有操作簡便、安全無毒、低成本的優點[10]。多功能等離子體誘變 系 統 (multifunction plasma mutagenesis system,MPMS)作為一種新一代微生物誘變平臺,以等離子體誘變為主,可與紫外、化學誘變等多種手段結合,又再次提高了突變率和突變類型[11]。本試驗首次采用等離子體-紫外復合誘變,對解淀粉芽孢桿菌BI2進行誘變,通過對復合誘變條件的探究,以期來提高BI2產NAG的能力。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 菌株

解淀粉芽孢桿菌BI2(Bacillus amyloliquefaciens BI2)由天津科技大學生化過程與技術研究室自秸稈飼料中分離得到,中國微生物菌種保藏管理委員會普通微生物中心保藏,保藏號:CGMCC No.3413。

1.1.2 試劑

無水葡萄糖、氯化鈉、(NH4)2SO4、K2HPO4·3H2O、KH2PO4(分析純):博歐特(天津)化工貿易有限公司;酵母粉、蛋白胨、瓊脂、甘油(分析純):北京奧博星生物科技有限公司;谷氨酸鈉(純度≥99%):天津市紅玫瑰食品有限公司;NAG標品(純度≥99%):美國Sigma公司。

1.1.3 培養基

細菌基礎培養基:蛋白胨10 g/L,酵母粉5 g/L,氯化鈉10g/L,瓊脂 1.5%;pH7.0~7.2;滅菌121℃,15min。

種子培養基:葡萄糖40 g/L,蛋白胨20 g/L,酵母粉20 g/L,氯化鈉 5 g/L;pH 7.0~7.2;滅菌 115 ℃,20 min。

發酵培養基:葡萄糖50 g/L,蛋白胨10 g/L,酵母粉10 g/L,氯化鈉 5 g/L,(NH4)2SO45 g/L,谷氨酸鈉 20 g/L,K2HPO4·3H2O 10 g/L,KH2PO45 g/L;pH7.5;滅菌 115 ℃,20 min。

葡萄糖篩選培養基:葡萄糖300g/L,蛋白胨0.5g/L,酵母粉 0.5 g/L,氯化鈉 5 g/L,瓊脂 1.5%;pH 7.0~7.2;滅菌115℃,20 min。

1.2 儀器與設備

Mandela型多功能等離子體誘變系統(MPMS):北京艾德豪克儀器生物有限公司;Agilent 1200高效液相色譜儀:美國安捷倫科技有限公司;TU-1810紫外可見光分光光度計:北京普析通用儀器有限責任公司;LRH-250A生化培養箱:韶關市泰宏醫療器械有限公司;三層立式多功能搖床:上海旻泉儀器有限公司等。

1.3 方法

1.3.1 培養方法

種子培養:從斜面/平板挑取一環單菌落菌體接種到含有50 mL種子培養基的250 mL三角瓶中,于搖床中250 r/min,34℃培養16 h。

發酵培養:將活化好的種子液,以4%(體積分數)的接種量接種到含有50 mL發酵培養基的250 mL三角瓶中,于搖床中200 r/min,37℃發酵48 h。

誘變前菌體培養:取活化好的種子液,以4%(體積分數)的接種量接種到含有50 mL種子培養基的250 mL三角瓶中,于搖床中250 r/min,34℃培養10 h,使菌體處于對數生長的中期,鏡檢無芽孢。

1.3.2 菌株的誘變

菌懸液的制備:取1 mL誘變前菌體培養液12 000 r/min離心2 min,收集菌體,然后用無菌生理鹽水洗滌3次,最后將菌體重懸于無菌生理鹽水中,稀釋100倍,使細胞的終濃度為1×107個/mL。

等離子體誘變:取上述菌懸液10 μL均勻的涂布于誘變杯中,晾干后將其置于多功能等離子體誘變系統(multifunction plasma mutagenesis system,MPMS)中進行等離子體誘變,以99%的氮氣作為工作氣體,輸入功率120 W,間距10 mm,氣流量10 L/min,分別誘變時長 5、7、10、15、20、30、50 s來考察致死率及正突變率。

紫外誘變:取上述菌懸液10 μL均勻的涂布于誘變杯中,晾干后將其置于多功能等離子體誘變系統(MPMS)中進行紫外誘變,紫外線燈管功率為20 W(提前預熱 20 min),處理距離 25 mm,處理時間 5、7、10、15、20、30、50 s來考察致死率及正突變率。

等離子體-紫外復合誘變:取上述菌懸液10 μL均勻的涂布于誘變杯中,晾干后將其置于多功能等離子體誘變系統(MPMS),先等離子體誘變處理一定時間,緊接著進行紫外誘變??疾熘滤缆始罢蛔兟?。

1.3.3 篩選方法

誘變初篩:在誘變處理后的誘變杯中加入1 mL生理鹽水將菌種洗下制成菌懸液。稀釋10倍后,取100 μL均勻涂到高糖篩選培養基表面,37℃靜置培養24 h,挑選菌落直徑≥3 mm的菌株。

誘變復篩:將保藏的初篩菌種接于液體種子培養基中,于搖床中250 r/min,34℃培養16 h,活化2次后以4%(體積比)的接種量接于發酵培養基中,于搖床中200 r/min,37℃培養48 h,采用高效液相色譜法分析乙酰氨糖產量,將高產菌株保存于20%(體積比)甘油管中-20℃保藏。

1.3.4 分析方法

致死率的計算:對誘變處理過的樣品在適當的稀釋度下涂板LB平板,通過菌落形成單位(colonyforming units,CFU)來計算其致死率,并獲得致死率曲線。

致死率/%=(對照板菌落數-誘變板菌落數)/對照板菌落數×100

正突變率的計算:挑取葡萄糖篩選平板上菌落直徑≥3 mm的菌株,進行搖瓶復篩,以NAG產量較出發菌(BI2)提高20%的菌株統計為正突變株。

正突變率/%=正突變菌落數/葡萄糖篩選平板總菌數×100

NAG檢測方法:發酵液經離心、稀釋后由Agilent 1200高效液相色譜法(high performance liquid chromatography,HPLC)檢測[12],色譜柱 HPX-87H(Bio-Rad),流動相5 mmol/L H2SO4,檢測器示差折光檢測器,柱溫 60 ℃,流速 0.6 mL/min,進樣量 10 μL。

2 結果與分析

2.1 初篩方法的建立

本試驗所用菌株BI2在葡萄糖耐受試驗中表現出高耐受性,在300 g/L葡萄糖濃度的平板培養下,依舊保持了30%的存活率,比較適合高糖高滲的工業化生產。且在高糖平板上其菌落直徑發生了較大改變,對菌落直徑大小進行統計,如表1所示。

表1 葡萄糖篩選平板菌落大小分布Table 1 The distribution of colony size on glucose screening plate

由表1可知,菌落直徑大小呈正態分布,菌落直徑≥3 mm的占10%,菌落直徑≤1.5 mm的菌落占20%,1.5 mm~3 mm的菌落占70%。對不同直徑菌落各取30個進行搖瓶發酵驗證NAG產量,并與出發菌株對照,如表2所示。

表2 葡萄糖篩選平板菌落大小與NAG產量Table 2 NAG yeild with different colony sizes of strains on glucose screening plate

由表2可知,發現在高糖平板上菌落直徑大小與NAG產量呈正相關性,既菌落直徑越大其NAG產量越高,其在300 g/L葡萄糖高滲平板上長勢越好,因為NAG與芽孢菌細胞壁合成有關,NAG產量越高,芽孢菌細胞壁越完整[13]。因此,本試驗選擇了葡萄糖篩選培養基并挑選菌落直徑≥3 mm的菌株,來作為初篩條件快速篩選NAG產量提高菌株。

2.2 等離子體誘變對菌株致死率及正突變率的影響

MPMS產生的等離子體中含有氮正離子(N+)、原子態氧(O)、OH-自由基等活性成分,可使微生物的細胞壁、細胞膜的結構及通透性改變,并對DNA和蛋白質等生物大分子造成損傷,導致大量細胞死亡。少量存活細胞通過修復機制,產生大量隨機突變[14]。因此,選擇合適的MPMS誘變時間能夠實現微生物的快速誘變育種。

本試驗先對出發菌株BI2進行等離子體單獨誘變。測定其致死率曲線見圖1。

圖1 等離子體誘變對菌株致死率和正突變率的影響Fig.1 The effect of MPMS treatment on lethality rate and positive mutagenesis rate

由圖1可知,多功能等離子體誘變系統對BI2的致死力較強,MPMS處理20 s時致死率達到91%,處理50 s時致死率達到98%。有研究表明,當微生物菌種的致死率為80%~95%時[15],正突變率最高,但突變本身具有隨機性,其致死率與正突變率之間的關系并不是十分清楚,主要取決于誘變方法和菌株本身的特性。因此選取致死率在79%~96%之間的5個點測定其正突變率,如圖1顯示,結果表明等離子體處理15 s時正突變率最高,為15%,此時致死率為88%。

2.3 紫外誘變對菌株致死率及正突變率的影響

出發菌株經紫外誘變處理不同時間的致死率和正突變率如圖2所示。

圖2 紫外誘變對菌株的致死率和正突變率影響Fig.2 The effect of Ultraviolet treatment on lethality rate and positive mutagenesis rate

由圖2可以看出,出發菌株對紫外處理也比較敏感,隨著處理時間的延長,致死率逐漸增加。當處理10 s時,致死率為57%,當處理30 s時,致死率為95%,處理50 s時致死率為100%。有文獻表明,紫外處理致死率在70%~80%之間時正突變率較高[16]。因此選取致死率在60%~95%之間的5個點進行正突變率測定。結果顯示,當紫外線處理20 s時,正突變率最高為10%,此時致死率為84%。

2.4 等離子體-紫外復合誘變對菌株致死率和正突變率的影響

復合誘變包括兩種或多種誘變劑的先后使用、同時使用、同一誘變劑的重復使用。普遍認為復合誘變具有協同效應。單一誘變因子長期使用容易使菌株產生耐受性,兩種或兩種以上誘變劑合理搭配進行復合誘變較單一誘變效果更好[17]。本試驗采用先等離子體后紫外處理的復合誘變順序,主要考慮兩種方法的處理時間對菌株誘變效果的影響。依次選取兩種方法正突變率最高的3個水平設計了全面實驗,探究復合誘變對菌株的致死率及正突變率影響。結果如表3所示。

由表3分析可知,在復合誘變中,隨著復合誘變時間的增加,致死率也隨之增加,但正突變率卻不一定隨之增加,說明兩種誘變因子存在協同和交互作用。而當致死率過高時,正突變率顯著下降。其中等離子體處理15 s,然后紫外處理15 s時正突變率最高為28%,此時致死率為92%。可以看到復合誘變較單因子誘變的正突變率提高明顯,較等離子體單獨處理提高1.86倍,較紫外單獨處理提高2.8倍。

表3 等離子體-紫外復合誘變對菌株的致死率和正突變率影響Table 3 The effect of MPMS-Ultraviolet treatment on lethality rate and positive mutagenesis rate

2.5 等離子體-紫外復合誘變的篩選結果

取等離子體處理15 s和紫外處理15 s的復合誘變后的菌懸液,按照1.3.3的方法進行高濃度葡萄糖平板初篩,統計菌落直徑≥3 mm的占全部菌落的比例達到35%比出發10%有較大提高。由于在葡萄糖篩選平板上菌落大小與產NAG能力有正相關性,說明經復合誘變作用后,突變株的正突變率明顯提高,挑取40株按照1.3.3的方法進行復篩,NAG產量見圖3所示。

由圖3可知,直徑≥3 mm的菌株中,80%的菌株發生了正突變,證明了初篩方法的有效性。從中篩選出一株NAG產量最高菌BH-7,NAG產量達到1.02 g/L,較出發菌提高3.4倍。經過兩次復合誘變及篩選,分別篩選出 BH-14、BH-2-1、BH-3-2,NAG 產量依次為1.11、1.4、1.23 g/L,較出發菌分別提高 3.7、4.7、4.1 倍。

2.6 突變菌的遺傳穩定性研究

為考察突變株的遺傳穩定性,將經過篩選到的四株產量提高菌(BH-7、BH-14、BH-2-1、BH-3-2)在 LB平板培養基中傳代培養10代,并將各代菌體分別經種子活化后接種于發酵培養基中,37℃培養48 h,通過高效液相色譜法測定NAG產量,如圖4所示。

由圖4可知,菌株BH-7、BH-14、BH-2-1在傳代后NAG產量下降明顯,遺傳不穩定。菌株BH-3-2在第3、4代產量略有下降,很快產量回復且遺傳比較穩定。

圖3 復合誘變突變株NAG產量Fig.3 NAG production of the mutants on MPMS-Ultraviolet treatment

圖4 突變株的遺傳穩定性實驗Fig.4 Genetic stability experiment of the mutant strains

3 結論

本文研究了等離子體、紫外以及等離子體-紫外復合誘變對芽孢菌致死率及正突變率的影響,對結果進行分析表明,等離子體誘變15 s時正突變率最高為15%,紫外誘變20 s時正突變率最高為10%,而在等離子體15 s和紫外15 s的復合誘變條件下,正突變率達到最高為28%,較單因子誘變效果提高明顯,可以作為誘變育種的首選方法。在該復合誘變條件下,通過初篩復篩,篩選出一株產量提高菌株BH-3-2。與出發菌株BI2相比,NAG產量從0.3 g/L提高到1.23 g/L,提高了4.1倍,傳代10次發現遺傳穩定性良好。

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