楊成聰,沈馨,馬雪偉,楊夢麗,董蘊,郭壯,*
(1.湖北文理學院食品科學技術學院鄂西北傳統發酵食品研究所,湖北襄陽441053;2.襄陽出入境檢驗檢疫局綜合實驗室,湖北襄陽441003)
作為一種酸甜適口的傳統發酵食品,米酒通常以糯米為主要原料,接入酒曲發酵而成[1]。米酒中的有機酸包括草酸、乙酸、乳酸、蘋果酸、琥珀酸、檸檬酸和酒石酸等,其通常由微生物發酵或后期添加形成[2]。適量的酸可以在米酒中起到調節和緩沖諸味的作用,但當酸度過高或過低時,均會造成米酒品質下降[3]。由此可見,有機酸作為米酒中重要的呈味物質,對米酒產品的滋味品質有著較大的影響,因而明確米酒中有機酸的種類及含量是極為必要的。
除酸堿滴定法外[4],研究人員亦可以采用旋光法[5]、氣相色譜法(Gas Chromatography,GC)[6]和高效液相色譜法(High Performance Liquid Chromatography,HPLC)[7]對米酒中的有機酸含量進行測定。值得一提的是,雖然旋光法和酸堿滴定法較為經濟,但其準確度較低,重復性亦較差[8]。此外,因有機酸具有較高的沸點,不容易氣化,因而在使用氣相色譜法對其測定時,需先對檢測物進行衍生,方法較為復雜[9]。高效液相色譜法具有方法簡便快捷、分離度高、結果準確和對所測組分沸點沒有要求等優點,因而廣泛的應用于食品中有機酸的測定[10]。GB 5009.157-2016《食品安全國家標準食品有機酸的測定》采用該方法約束了果汁飲料及果汁、果味碳酸飲料、果凍、水果罐頭、膠基糖果、固體飲料、面包、餅干、糕點、烘焙食品餡料和生濕面制品中有機酸的測試方法。然而令人遺憾的是,米酒并不在上述約束范圍內。
本研究采用HPLC法對米酒中草酸、乙酸、乳酸、蘋果酸、琥珀酸、檸檬酸和酒石酸含量進行了測定,通過色譜條件的優化和方法性能的評價,實現了米酒中7種有機酸的快速分離和定量分析,為米酒生產廠家產品的自我檢測提供了參考。
米酒:市售;草酸、乙酸、乳酸、蘋果酸、琥珀酸、檸檬酸和酒石酸標準品:西隴科學股份有限公司;磷酸二氫鉀、磷酸氫二銨和磷酸(均為分析純):天津市北辰方正試劑廠;甲醇和異丙醇(均為色譜純):國藥集團化學試劑有限公司;0.45 μm微孔濾膜:上海半島實業有限公司凈化器材廠。
LC-20ADXR高效液相色譜儀(配置有SIL-20A XR自動進樣器、LC-20AD XR四元低壓梯度泵、CTO-10AS vp柱溫箱、SPD-M20A二極管陣列紫外-可見光檢測器)、Inertsil ODS-SP C18色譜柱(150 mm×4.6 mm,5 μm):日本島津公司;PGJ-10-AS 品冠純水機:武漢品冠儀器設備有限公司;2-6E小型臺式離心機:德國Sigma實驗室離心機股份有限公司;PHS-25型數顯pH計:上海儀電科學儀器有限公司;HHS-2數顯恒溫水浴鍋:長豐儀器設備廠;PS-100A超聲波清洗機:深圳市潔匯超聲洗凈設備有限公司。
1.2.1 樣品的處理方法
用天平稱取20.00 g試樣置于培養皿中,然后轉移至研缽中磨至粉碎,之后轉移至100 mL的容量瓶中,用流動相定容后靜置一段時間。將定容后的樣品轉移至離心杯中,12 000 r/min離心10 min,取上清液過0.45 μm微孔纖維素濾膜,濾液備用。
1.2.2 色譜條件的優化
1.2.2.1 供試樣品的制備
分別稱取草酸0.15g、蘋果酸0.30 g、檸檬酸0.60 g、酒石酸0.75 g以及乳酸、醋酸和琥珀酸各1.50 g溶解后于50 mL的容量瓶中定容,制成母液待用。
分別取各母液1.0 mL,再加入0.2 mL 1.0 mol/L的磷酸,用超純水定容至10 mL,混勻后作為供試樣品待用。
1.2.2.2 流動相中磷酸鹽的選擇
流動相:分別配制濃度均為0.01 mol/L的磷酸二氫鉀和磷酸氫二銨溶液,流動相中不添加乙腈,調節pH 值為 2.30;進樣量:20 μL;檢測器:SPD-M20A;色譜柱:InertsilODS-SPC18 色譜柱(150 mm×4.6 mm,5 μm);柱溫:30℃;流速:0.8 mL/min;檢測波長:215 nm。
1.2.2.3 流動相中磷酸鹽濃度選擇
流動相:分別配制0.01、0.05 mol/L和0.08 mol/L的磷酸二氫鉀溶液,流動相中不添加乙腈,調節pH值為 2.30;進樣量:20 μL;檢測器:SPD-M20A;色譜柱:InertsilODS-SPC18色譜柱(150 mm×4.6 mm,5 μm);柱溫:30℃;流速:0.8 mL/min;檢測波長:215 nm。
1.2.2.4 流動相pH值的選擇
流動相:分別配制pH值為2.30、2.50和2.90,濃度為0.01 mol/L的磷酸二氫鉀溶液,流動相中不添加乙腈;進樣量:20 μL;檢測器:SPD-M20A;色譜柱:In ertsilODS-SPC18色譜柱(150 mm×4.6 mm,5 μm);柱溫:30℃;流速:0.8 mL/min;檢測波長:215 nm。
1.2.2.5 流動相中乙腈比例的選擇
流動相:濃度為0.01 mol/L的磷酸二氫鉀溶液,分別設置乙腈和水相的體積比為0∶100、5∶95和10∶90;調節pH值為2.30;進樣量:20 μL;檢測器:SPDM20A;色譜柱:InertsilODS-SPC18色譜柱(150 mm×4.6 mm,5 μm);柱溫:30 ℃;流速:0.8 mL/min;檢測波長:215 nm。
1.2.2.6 柱溫的選擇
分別設置柱溫為 25、30、35、40 ℃,流動相:濃度為0.01 mol/L的磷酸二氫鉀溶液,流動相中不添加乙腈,調節pH值為 2.30;進樣量:20 μL;檢測器:SPD-M20A;色譜柱:InertsilODS-SPC18色譜柱(150 mm×4.6 mm,5 μm);流速:0.8 mL/min;檢測波長:215 nm。
1.2.2.7 流速的選擇
分別設置流動相流速為0.5、0.8、1.0 mL/min和1.2 mL/min;流動相:濃度為0.01 mol/L的磷酸二氫鉀溶液,流動相中不添加乙腈,調節pH值為2.30;柱溫為 25 ℃;進樣量:20 μL;檢測器:SPD-M20A;色譜柱:InertsilODS-SPC18色譜柱(150 mm×4.6 mm,5 μm);檢測波長:215 nm。
1.2.3 米酒中7種有機酸的測定
1.2.3.1 米酒樣品的采集
從襄陽市武商廣場購物中心購買10種品名的米酒樣品,依次編號為MJ1~MJ10。
1.2.3.2 標準曲線的制作
分別稱取草酸0.15 g、蘋果酸0.30 g、檸檬酸0.60 g、酒石酸0.75 g以及乳酸、醋酸和琥珀酸各1.50 g分別溶解后于50 mL的容量瓶中定容,制成母液待用。分別吸取 0.1、0.2、0.5、1.0、1.4 mL,在加入 0.2 mL 1.0 mol/L 磷酸后,用流動相定容至10 mL。分別配制各個梯度的標準品溶液,溶液過0.45 μm濾膜待用。每個濃度重復進樣,分別以7種有機酸的濃度為自變量x,色譜峰面積的均值為因變量y,采用外標法進行標準曲線計算。
色譜條件:流動相:濃度為0.01 mol/L的磷酸二氫鉀溶液,流動相中不添加乙腈,調節pH值為2.30;進樣量:20 μL;檢測器:SPD-M20A;色譜柱:InertsilODSSPC18 色譜柱(150 mm×4.6 mm,5 μm);柱溫:25℃;流速:1.0 mL/min;檢測波長:215 nm。
1.2.3.3 結果計算
米酒樣品中的有機酸含量按照以下公式進行計算:

式中:X為樣品中有機酸的含量,g/kg;C為由標準曲線求得樣品中某有機酸的濃度,μg/mL;V為樣品的最后定容體積,mL;m為樣品質量,g。
1.2.3.4 米酒中7種有機酸含量的測定
所有的試樣均按照1.2.1中的處理方法進行處理,按照1.2.3.2中的色譜條件進行測定,按照1.2.3.3中的計算方法進行計算。
1.2.4 方法性能評價
1.2.4.1 重復性試驗
取MJ5樣品2 mL于10 mL容量瓶中,加入0.2 mL 1 mol/L磷酸后定容。12 000 r/min離心10 min,上清液過0.45 μm濾膜后,按照1.2.3.1中的色譜條件進行7種有機酸峰面積的測定,試驗重復5次,同時對其相對標準偏差值(relative standard deviation,RSD)進行計算。
1.2.4.2 精密度試驗
將1.2.2.1中的供試樣品,不間斷進樣5次,色譜條件同1.2.3.2,分別對7種有機酸的峰面積進行測定,同時對其相對標準偏差(relative standard deviation,RSD)進行計算。
1.2.4.3 加標回收率試驗
取MJ5樣品2 mL于10 mL容量瓶中,加入0.2 mL 1 mol/L磷酸后定容。12 000 r/min離心10 min,上清液過0.45 μm濾膜備用。濾液分為4份,1份不做任何處理,另外3份添加一定量的7種有機酸的混合溶液。色譜條件同1.2.3.2。
1.2.5 統計分析
使用島津高效液相色譜自帶軟件Labsolution將色譜圖轉化為數據矩陣后,利用Origin 8.5軟件(O-riginLab,MA,USA)作圖。
2.1.1 流動相中磷酸鹽種類的選擇
在色譜柱為Inertsil ODS-SP C18柱(150 mm×4.6 mm,5μm),柱溫為 30℃,流動相流速為0.8mL/min,pH值為2.30,流動相中不添加乙腈,磷酸鹽濃度為0.01 mol/L的固定條件下,分別選擇磷酸二氫鉀和磷酸氫二銨作為流動相中的磷酸鹽,探討了磷酸鹽種類對7種有機酸分離效果的影響,其結果如圖1所示。
由圖1可知,磷酸二氫鉀和磷酸氫二銨對7種有機酸分離效果的影響不大,但當緩沖鹽的種類選擇磷酸二氫鉀時,其基線要比磷酸氫二銨更平整,且噪音較小。綜上所述,本研究選擇磷酸二氫鉀作為流動相中的緩沖鹽。
2.1.2 流動相中磷酸鹽濃度選擇
在色譜柱為Inertsil ODS-SP C18柱(150 mm×4.6 mm,5μm),柱溫為 30℃,流動相流速為0.8mL/min,pH值為2.30,流動相中不添加乙腈的固定條件下,分別配制磷酸二氫鉀的濃度為0.01、0.05、0.08mol/L,探討了磷酸二氫鉀濃度對7種有機酸分離效果的影響,其結果如圖2所示。
由圖2可知,磷酸鹽的濃度對7種有機酸的保留時間沒有較大的影響,但較高的鹽濃度會對色譜柱和整個流路系統造成損害,因此在其分離效果相同的條件下選擇磷酸二氫鉀的濃度為0.01 mol/L。

圖1 流動相磷酸鹽種類對7種有機酸分離效果的影響Fig.1 Effect of phosphate type of mobile phase on the separation of 7 kinds organic acids

圖2 流動相磷酸二氫鉀濃度對7種有機酸分離效果的影響Fig.2 Effect of monopotassium phosphate concentration in mobile phase on the separation of 7 kinds organic acids
2.1.3 流動相pH值的選擇
在色譜柱為Inertsil ODS-SP C18柱(150 mm×4.6 mm,5μm),柱溫為30℃,流動相流速為0.8mL/min,流動相中不添加乙腈,磷酸二氫鉀濃度為0.01 mol/L的固定條件下,分別設置流動相的pH值為2.30、2.50和2.90,探討了流動相pH值對7種有機酸分離效果的影響,其結果如圖3所示。
由圖3可知,流動相的pH值會對7種有機酸的保留時間造成影響,當pH值為2.30時7種有機酸均可被較好的分離,但當pH值為2.50或2.90時,草酸和酒石酸的峰均不能很好的分開。值得一提的是,隨著流動相pH值的升高,部分有機酸的出峰時間出現縮短的情況。綜上所述,本研究選擇流動相pH值為2.30。
2.1.4 流動相中乙腈比例的選擇
在色譜柱為Inertsil ODS-SP C18柱(150 mm×4.6 mm,5μm),柱溫為30℃,流動相流速為0.8mL/min,pH值為2.30,磷酸二氫鉀濃度為0.01 mol/L,分別設置乙腈與緩沖鹽溶液的體積比為0∶100、5∶95和10∶90,探討了流動相中乙腈比例對7種有機酸分離效果的影響,其結果如圖4所示。
由圖4可知,隨著乙腈體積比例的增加,各個有機酸的保留時間均相應縮短,當乙腈與緩沖鹽溶液的體積比是5∶95時,草酸、酒石酸、乳酸和乙酸均不能達到基線分離,當乙腈與緩沖鹽溶液的體積比是10∶90時,7種有機酸均不能達到基線分離。綜上所述,本研究選擇流動相中不添加乙腈。

圖3 流動相pH值對7種有機酸分離效果的影響Fig.3 Effect of pH of mobile phase on the separation of 7 kinds organic acids

圖4 流動相中乙腈比例對7種有機酸分離效果的影響Fig.4 The effect of acetonitrile percentage in mobile phase on the separation of 7 kinds organic acids
2.1.5 柱溫的選擇
在色譜柱為Inertsil ODS-SP C18柱(150 mm×4.6 mm,5μm),流動相流速為0.8mL/min,pH值為2.30,流動相中不添加乙腈,磷酸二氫鉀濃度為0.01 mol/L的固定條件下,分別設置柱溫為25、30℃和35℃,探討了柱溫對7種有機酸分離效果的影響,其結果如圖5所示。
由圖5可知,柱溫的改變對7種有機酸分離效果的影響并不大,但隨著溫度的升高,色譜柱損傷亦隨之增大。綜上所述,本試驗最后選擇的柱溫為25℃。
2.1.6 流動相流速的選擇
在色譜柱為Inertsil ODS-SP C18柱(150 mm×4.6 mm,5 μm),柱溫為 25 ℃,pH 值為 2.30,流動相中不添加乙腈,磷酸二氫鉀濃度為0.01 mol/L的固定條件下,分別設置流速 0.5、0.8、1.0、1.2 mL/min,探討了流動相流速對7種有機酸分離效果的影響,其結果如圖6所示。
由圖6可知,隨著流速的增加,有機酸的保留時間隨之提前。在保證分離效果和壓力適中的前提下,應盡可能快的使待檢測組分被檢出,進而達到縮短檢測時間的目的。綜上所述,本試驗最后選擇的流動相流速為1.0 mL/min。

圖5 柱溫對7種有機酸分離效果的影響Fig.5 Effect of column temperature on the separation of 7 kinds organic acids

圖6 流動相流速對7種有機酸分離效果的影響Fig.6 Effect of flow rate of mobile phase on the separation of 7 kinds organic acids
2.2.1 標準回歸方程
按照1.2.3.2中方法,分別以草酸、酒石酸、蘋果酸、乳酸、乙酸、檸檬酸和琥珀酸7種有機酸的濃度為自變量x,色譜峰面積為因變量y,進行標準曲線回歸方程的計算,結果如表1。
由表1可知,7種有機酸線性回歸方程的相關系數均在0.9960以上。由此可見,各有機酸的濃度和峰面積之間具有良好的線性關系,這亦可間接證明本研究所采用的色譜條件可以實現米酒樣品中7種有機酸的精確定量。

表1 7種有機酸的回歸方程Table 1 Linear regression equations of detection for 7 kinds organic acids
2.2.2 米酒中7種有機酸含量的測定
取2 mL樣品加入0.2 mL 1 mol/L磷酸后,用流動相定容,12 000 r/min離心10 min后,上清液過0.45 μm濾膜后上機,按照1.2.3.2中的色譜條件對米酒中7種有機酸的含量進行測定,結果如表2所示。
2.3.1 重復性試驗結果
按照1.2.1制作MJ5米酒樣品5份,5份樣品分別進樣,色譜條件同1.2.3.2,測定樣品中7種有機酸的含量,同時計算RSD。結果如表3所示。

表2 10個米酒樣品中7種有機酸的含量(n=3)Table 2 Contents of 7 kinds organic acids in 10 rice wine samples(n=3)

表3 重復性試驗Table 3 Result of repetitive test
由表3可知,7種有機酸的RSD值均在1.0%以下,由此可知,本試驗所采用的研究方法在測定上述7種有機酸時具有良好的重復性。
2.3.2 精密度試驗結果
準確吸取1.2.2.1節中7種有機酸的混合供試溶液,按照1.2.3.2節中的色譜條件進行測定,不間斷進樣5次,分別測量7種有機酸的峰面積和相對標準偏差值,其結果如表4。
由表4可知,7種有機酸的RSD值均在1.0%以下,由此可知,本試驗具有較好的精密性,可以滿足試驗要求。

表4 精密度試驗結果Table 4 Results of precision test
2.3.3 加標回收率試驗結果
按照1.2.4.3的樣品處理方法制作MJ5米酒供試樣品,同時按1.2.3.2中的色譜條件對樣品中7種有機酸的含量進行測定,其含量和加樣回收率結果如表5所示。

表5 加樣回收率試驗結果Table 5 Results of spike recovery test
由表5可知,7種有機酸的平均回收率在98.74%和101.00%之間,由此可見,HPLC法對米酒中7種有機酸含量測定時回收率較高,在試驗允許的范圍內,可以很好的滿足定量分析的要求。
本研究建立了高效液相色譜法測定米酒中草酸、酒石酸、蘋果酸、乳酸、乙酸、檸檬酸和琥珀酸7種有機酸的方法,其中檢測器為二極管陣列紫外-可見光檢測器,檢測波長215 nm,Inertsil ODS-SP C18色譜柱(150 mm×4.6 mm,5 μm),柱溫為 25℃,流動相為0.01 mol/L的磷酸二氫鉀溶液,pH值為2.30,流速為1.0 mL/min。
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