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不同養殖模式下小反芻獸疫母源抗體消長規律

2018-03-14 06:37:08李文良許寶軍唐朝忠張紋紋李基棕楊蕾蕾侯福銀王建輝陳應江江杰元
江蘇農業科學 2018年3期
關鍵詞:水平

郝 飛, 李文良, 毛 立, 許寶軍, 唐朝忠, 張紋紋, 李基棕, 楊蕾蕾, 侯福銀, 時 凱, 王建輝, 魏 勇, 陳應江, 江杰元

(1.江蘇省農業科學院獸醫研究所/農業部獸用生物制品工程技術重點實驗室/國家獸用生物制品工程技術研究中心,江蘇南京 210014; 2.江蘇省盱眙縣動物疫病預防控制中心,江蘇盱眙 211700; 3.江蘇沿海地區農業科學研究所,江蘇鹽城 224002; 4.江蘇省睢寧縣畜牧獸醫技術指導站,江蘇睢寧 221200)

通信作者:江杰元,博士,研究員,主要從事牛羊傳染病研究。E-mail:1776556843@qq.com。

小反芻獸疫(Peste des petits ruminants,PPR)是由小反芻獸疫病毒(Peste des petits ruminants virus,PPRV)引起山羊和綿羊等小反芻動物的一種急性、烈性傳染病,是嚴重威脅和危害養羊業發展的重要病毒性疾病。PPR是OIE規定的必須報告的傳染病[1],我國將其列為一類動物疫病。該病呈地方流行性,以往主要在撒哈拉以南的非洲、中東及印度流行,近年來呈蔓延趨勢,在我國周邊多個國家均有該病的發生和流行[2-4]。自2007年我國西藏阿里地區首次發生PPR疫情之后,2013年底再次從新疆傳入我國,并迅速蔓延至甘肅、寧夏、內蒙、江蘇等20多個省份,對我國的養羊業造成極為嚴重的損失[5-7]。目前,該病尚未被清除,疫苗免疫是預防該病的有效措施之一,農業部規定我國除北京、福建、海南、湖北及山東(青島)、廣東(深圳)之外所有地區羊群均需免疫PPR弱毒活疫苗[8]。如何監測評價疫苗免疫效果是防制該病的關鍵,同時也是制定科學免疫程序、做好疫病風險評估及考核免疫政策措施落實情況的基礎。當前,國內尚未存在有關小反芻獸疫母源抗體消長規律研究的報道,本研究旨在探討羔羊PPR母源抗體的消長規律,進而明確不同羊群母源抗體消長規律的差異,從而為制定羔羊的最佳免疫程序,提高免疫合格率,有效的預防和控制小反芻獸疫提供依據。

1 材料與方法

1.1 材料

ID Screen?小反芻獸疫抗體檢測試劑盒購自法國ID.vet公司。

1.2 分組

選擇江蘇省不同地區不同飼養模式和飼養條件下的4個自繁自養規模化山羊養殖場及4個規模化湖羊養殖場(表1)進行PPRV母源抗體的消長規律研究。所選羊場母羊于配種前按說明書免疫小反芻獸疫疫苗,血清抗體檢測為陽性。每個養殖場隨機選取6只未免疫過PPRV疫苗的1月齡羔羊進行試驗,試驗期間不進行PPRV免疫,每半個月采血1次,直至4月齡,分離血清,進行PPRV抗體檢測。

表1 試驗羊場基本情況

1.3 抗體檢測及判定方法

PPRV抗體檢測按照ID Screen?小反芻獸疫抗體檢測試劑盒說明書進行。結果判定為:每個樣品阻斷率(1-S/N)≥0.5,判定為陽性;0.4≤1-S/N<0.5,判定為可疑;1-S/N<0.4,判定為陰性。

2 結果與分析

由圖1可知,江蘇句容試驗點羔羊在1月齡時小反芻獸疫母源抗體維持在較高水平,且整體離散度小,整齊度高。1~2月齡之間抗體水平有所下降,但下降速度較為平緩,至2月齡時所有羔羊的母源抗體仍均為陽性。2.5~3.0月齡母源抗體水平下降速度加快,3/6的羔羊降至臨界值(0.5)以下,至 3.5 月齡時全部轉為陰性。江蘇盱眙試驗點羔羊1月齡母源抗體平均值雖在0.5以上,但離散度較大,整齊度低,個體差異較大,有2只抗體僅為0.172和0.285,至1.5月齡時抗體迅速下降僅剩1只為陽性,此后抗體水平持續下降,至2.5月齡時全部轉為陰性。江蘇泗陽試驗點羔羊1月齡時除1只為可疑,其余羊只的母源抗體水平均在臨界值以上,離散度不大,差異較小。其后抗體水平逐步下降,2月齡抗體均值在 0.5 左右,2.5月齡時大部分降為陰性,至3.5月齡時全部轉陰。睢寧試驗點抗體變化趨勢與泗陽相似,5/6的羔羊在1月齡時母源抗體為陽性,1只可疑,但其離散度相對較大,隨后抗體水平隨月齡的增長逐步下降,2月齡時抗體均值已降至0.5,3月齡全部轉陰,且1.5~2.5月齡間抗體水平離散度都比較大。

由圖2可知,江蘇太倉試驗點羔羊1月齡時母源抗體水平均在臨界值以上,離散度不大,差異相對較小。2.5月齡時抗體均值已降至0.5以下,3月齡全部轉陰。江蘇豐縣試驗點4/6的羔羊在1月齡時母源抗體為陽性,1只可疑,1只為陰性,其離散度相對較大,隨后抗體水平隨月齡的增長逐步下降,2.5月齡時抗體均值已降至0.5,至3.5月齡全部轉陰,且1.5~2.5月齡間抗體水平離散度都比較大。泰州試驗點抗體變化趨勢與豐縣相似,4/6的羔羊在1月齡時母源抗體為陽性,其整體離散度大,差異較大,1.5月齡時抗體均值已降至0.5以下,3.5月齡全部轉陰,且整個過程中抗體水平離散度都比較大。鹽城試驗點羔羊在1~4月齡時小反芻獸疫母源抗體均維持在較高水平,且整體離散度小,整齊度高。

3 討論與結論

小反芻獸疫是由小反芻獸疫病毒引起的一種高度接觸性傳染病,是嚴重制約養羊業發展的烈性傳染病之一。該病2007年曾在中國西藏地區小規模暴發,2013年12月至2014年6月在我國大部分養羊大省暴發疫情,給我國養羊業及其相關產業帶來了嚴重的經濟損失。近年來,由于采取強制免疫小反芻獸疫活疫苗的免疫政策,使得小反芻獸疫在我國境內得到有效的控制。當前規模化羊場對小反芻獸疫的防控均實施了以疫苗接種為主的綜合防制措施,但抗體檢測發現時常存在羔羊免疫失敗現象,這可能是羔羊首免日齡不當受到母源抗體干擾而導致的。羔羊出生后可以通過吮吸母乳獲得母源抗體,母源抗體的存在,可使羔羊在一定時間內被動地得到保護,但又會給免疫接種帶來影響。羔羊母源抗體水平過高,接種小反芻獸疫疫苗會被母源抗體所中和,使得羔羊不產生抗體或產生的抗體水平較低,得不到應有的保護。母源抗體過低接種疫苗,則羔羊在免疫空窗期易受到環境中小反芻獸疫病毒的侵襲。因此,研究羔羊小反芻獸疫母源抗體的消長規律就顯得十分必要。

本研究在江蘇不同地區不同飼養模式的4個規模化山羊養殖場和4個湖羊規模化養殖場進行PPRV母源抗體的消長規律研究,結果表明,不同飼養模式下PPRV母源抗體的持續時間存在較大差異,尤其是放養模式下的差異顯著。江蘇句容試驗點養殖場羔羊母源抗體持續時間較長,因其采取放牧的飼養方式,羔羊未斷奶,在試驗過程中一直與母羊同群,可隨時吮吸母乳,羔羊在1月齡吮乳后對于母源抗體的吸收效率非常高,使得體內的小反芻獸疫抗體效價維持在較高的水平,其后體內的抗體開始逐漸下降,說明此時羔羊已經不能再從母乳中吸收母源抗體進入血液。2月齡后雖然羔羊仍然吮食母乳,但體內小反芻獸疫抗體效價下降最為明顯,推測可能與吮乳量的減少及母乳中抗體水平下降有關。江蘇盱眙試驗點同樣是采取放牧的飼養方式,但是所選羔羊在1月齡時母源抗體水平離散度較大,個體差異明顯,部分羔羊的母源抗體水平已處于臨界值以下,至1.5月齡時僅剩1只為陽性。2處羊場相對應母羊小反芻獸疫抗體檢測結果顯示,其阻斷率均可達0.8以上,表明其抗體水平較高,但其具體滴度可能仍存在較大差異,推測導致羔羊抗體水平差異可能與母羊抗體滴度的不同、羊場飼養管理及衛生條件有關。

江蘇泗陽及睢寧試驗點養殖場均采取圈養飼養模式,于羔羊出生后60 d左右斷奶,這造成所生羔羊母源抗體在2月齡之后逐步轉陰。泗陽試驗點羔羊所有時間點抗體整齊度較高,而睢寧試驗點羔羊各時間點抗體離散度較大,個體差異明顯,反映出不同養殖場免疫效果的差異。

太倉、豐縣及泰州試驗點均為湖羊養殖場,采取圈養飼養模式并于羔羊出生后60 d左右斷奶。太倉試驗點羔羊所有時間點抗體整齊度較高,而江蘇豐縣和泰州試驗點羔羊所選羔羊在1月齡時母源抗體水平離散度較大,部分羔羊(2/6)的母源抗體水平在臨界值以下,各時間點抗體離散度較大,反映出不同養殖場免疫效果存在較大差異。鹽城試驗點湖羊采取圈養育肥的飼養模式,羔羊出生后50 d斷奶,所檢羊群在1~4月齡時小反芻獸疫母源抗體均維持在較高水平,且整體離散度小,整齊度高。該試驗場能繁母羊在正常免疫PPRV疫苗的同時,于母羊配種前加強免疫1次,且2次免疫相隔不超過2個月,這可能是造成母源抗體長時間維持較高水平的原因。

綜上所述,雖然PPR疫苗已被證實具有良好的免疫保護效果,但在生產實踐中,母源抗體的變化規律并不一致,須要要做好母羊和羔羊小反芻獸疫抗體水平的監測,根據監測結果調整免疫程序,這樣才能切實提高免疫效果,避免小反芻獸疫的發生。

參考文獻:

[1]World Organisation for Animal Health(OIE). Peste des petits ruminants(PPR)[EB/OL]. (2016-05-20)[2016-08-30]. http://www.oie.int/fileadmin/Home/eng/Media_Center/docs/pdf/Disease_cards/PPR-EN.pdf.

[2]Dhar P,Sreenivasa B P,Barrett T,et al. Recent epidemiology of pestedes petits ruminants virus (PPRV)[J]. Veterinary Microbiology,2002,88(2):153-159.

[3]Banyard A C,Parida S,Batten C,et al. Global distribution of pestedes petits ruminants virus and prospects for improved diagnosis and control[J]. Journal of General Virology,2010,91(12):2885-2897.

[4]Abubakar M,Mahapatra M,Muniraju M,et al. Serological detection of antibodies to pestedes petits ruminants virus in large ruminants[J]. Transboundary and Emerging Diseases,2017,64(2):513-519.

[5]Wang Z,Bao J,Wu X,et al. Peste des petits ruminants virus in Tibet,China[J]. Emerging Infectious Diseases,2009,15(2):299-301.

[6]Banyard A C,Wang Z,Parida S. Peste des petits ruminants virus,eastern Asia[J]. Emerging Infectious Diseases,2014,20(12):2176-2178.

[7]Wu X,Li L,Li J,et al. Peste des petits ruminants viruses reemerging in China,2013—2014[J]. Transboundary and Emerging Diseases,2016,63(5):e441-e446.

[8]中華人民共和國農業部獸醫局.全國小反芻獸疫免疫和非免疫省份/區域[EB/OL]. (2014-07-09)[2016-08-30]. http://www.syj.moa.gov.cn/dwybfk/201407/t20140704_ 3958926.htm.

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