張 寧 ,胡曉悅 ,韓 昱 ,盧軍霞 ,趙志強 ,趙博偉
(1.河北省畜牧獸醫研究所 071000;2.河北北方學院 075000;3.石家莊工程職業學院 050061;4.河北省畜牧站 050031)
雞病毒性關節炎 (Viral arthritis)是由禽呼腸孤病毒(Avian reovirus)引起的,臨床上以跗、趾關節腫大,腱鞘發炎,腓腸肌斷裂,跛行為主要特征。1954年Faheyt Crawley首次從有慢性呼吸道疾病的雞呼吸道內分離到禽呼腸孤病毒。美國、英格蘭、澳大利亞、意大利、日本、荷蘭、匈牙利等國均有報道,1985年我國王錫堃[1]等首次報道了雞病毒性關節炎。目前我國河北、山東、黑龍江、上海、四川、云南、湖北等多個省市地區都有該病的報道。因該病不僅會導致跋行、生長停滯,還可引起免疫抑制,增加霉形體、雞貧血因子、巴氏桿菌、大腸埃希氏桿菌、球蟲等感染的機會,嚴重危害養殖業的發展,故應引起我們的高度重視。
呼腸孤病毒是RNA病毒,呈二十面體對稱的雙層衣殼結構,無囊膜。病毒粒子直徑約為75nm,在氯化銫的浮密度為1.36~1.37g/mL。 ARV 對熱有抵抗力,能耐受 60℃ 8~10h,56℃ 能夠存活 22~24h 、37℃ 15~16周、4℃可以存活 3年以上、-63℃可以保存10年以上。半純化病毒于60℃5h條件下,其毒價降低,但并不完全使病毒失活。氯化鎂能夠增強病毒對熱的穩定性。ARV對乙醚不敏感,70%乙醇、0.5%有機碘和5%過氧化氫溶液可滅活病毒。
禽呼腸孤病毒各毒株之間存在大量的交叉反應,因此有些群不能作為獨立的血清型,病毒通常以抗原亞型存在。Wood[2]等對發現了11個血清型,各血清型毒株之間存在有很大程度的交叉中和關系。
2017年鐘麗[3]研究表明:不同地區、不同時間分離的流行毒株致病性不同。ARV病毒體內復制能力與其致病性存在正相關性;ARV體內復制能力并不是決定其致病性的唯一因素。某些基因片段單基因位點的突變可能會導致其致病性的不同,但具體位點仍需要進一步研究。
初次分離ARV一般用卵黃囊接種,在接種后3~5d雞胚死亡。ARV還可以在綠猴腎細胞(Vero)、豬腎細胞(PK)和貓腎細胞(CRFK)、兔腎(PK)、乳地鼠腎細胞(BHK-21/13)、佐治亞牛腎(GBK)、來自被誘導的纖維肉瘤的日本鴿細胞系(QT35)和雞淋巴母細胞內生長。
雞和火雞是ARV的自然宿主。2017年我國尚麗元[4]報道了莫莫格保護區3例丹頂鶴發生病毒性關節炎的病例。ARV可通過與感染動物接觸水平傳播,也可通過雞胚垂直傳播。潛伏期的長短取決于病毒的致病型、宿主年齡和感染途徑。直接接觸和氣管內接種病毒,發病潛伏期分別為13d和9d。自然感染發病多見于4~7周齡雞,發病率可高達100%,但死亡率通常低于6%。
該病傳播迅速,一年四季均可發生,一般呈散發或地方性流行。有些感染雞群沒有典型的臨床癥狀,但可引起不同程度繼發感染,或使其他病毒、細菌、寄生蟲感染癥狀和病變加重,導致淘汰率和死亡率增加。
ARV急性感染的主要特征是被感染雞跛行、關節腫脹、腱鞘炎、傳染性滑膜炎、生長停滯。急性感染的雞滑膜內發生充血或存在出血點,腱鞘和關節囊發生充血。慢性感染的雞關節腔內存在較少的滲出物,腱鞘慢性纖維化,趾向后彎曲,跗關節軟骨潰爛,伴發肉芽組織的生成。心肌纖維之間的異嗜細胞浸潤,肝臟、腎臟、脾臟腫大,有些可見壞死灶。
通過感染雞跛行、跗趾關節腫大等癥狀及肝脾腫大、滑膜細胞的萎縮及增生、心臟組織內異嗜細胞浸潤等病理變化可作出初步診斷。但由于有些雞感染ARV后不表現典型的臨床癥狀和病理變化,而且該病與維生素E和硒缺乏癥、痛風等病的臨床癥狀相似,所以確診需要進一步實驗室檢測。
實驗室檢測雞病毒性關節炎主要有以下幾種方法:
病毒分離雖然耗時較長,但檢測結果準確。可用病雞的組織懸液、全血、血漿或其他易感的組織培養物,接種6~7日齡 SPF雞胚卵黃囊,接種后 3~5d雞胚胎出現死亡 ,胚胎明顯出血或紫紅,肝呈綠色,脾臟腫大。若通過尿囊接種10日齡SPF雞胚,接種后,雞胚的死亡規律基本和卵黃囊接種結果基本一致。取接種致死的雞胚絨毛尿囊膜或病變細胞做切片,電鏡下可觀察到胞漿內包涵體和病毒呈晶格狀排列。
從可疑分離物接種或自然感染雞血清中檢測到抗體或ARV抗原,采用ELISA、瓊脂擴散實驗、間接免疫熒光實驗等可從感染雞血清中檢測到特異性抗體。
2007年陳元坤[5]以差速離心純化的雞關節炎病毒(ARV)作為包被抗原,建立了檢測 ARV抗體的間接 ELISA方法,確定了抗原最佳包被濃度為252 ug/mL,1%BSA封閉1.5h,血清最佳工作濃度為1∶160,37℃反應1.5h,酶標兔抗雞的稀釋度為1∶5000,37℃作用1h,底物37℃作用15min。所建立的方法與雞新城疫、傳染性支氣管炎、支原體的陽性血清無交叉反應。
2013年謝志勤[6]等用克隆的雜交瘤細胞株制備 ARV的單克隆抗體,并用此抗體作為包被抗體,成功建立了雙抗夾心ELISA檢測方法,檢測敏感性達到 5×10-5ug/uL的病毒。
2014年尹春紅[7]應用純化的σB和σC蛋白作為包被抗原建立了ELISA檢測方法,能夠準確地檢測到抗體的產生及消長規律,可以用于ARV的臨床診斷和免疫監測。
目前,國內外一些學者利用聚合酶鏈式反應(PCR)對ARV的檢測取得了很大進展。試驗證明,PCR試驗檢測法具有靈敏度高、特異性強的特點,可診斷血清、感染組織中的ARV。
2013 年馬超英[8]根椐 GenBank中禽呼腸孤病毒(ARV)、禽白血病病毒(ALV)基因序列,設計2對引物,建立了兩種病毒的雙重RT-PCR。對同一樣品中的ARV、ALV核酸模板進行雙重RT-PCR擴增,結果可同時擴增ARV 485bp、ALV 673bp的特異性片段,而對其他5種禽病病原的PCR擴增結果均為陰性。敏感性試驗結果表明,該雙重RT-PCR技術能檢出10pg的ALV和10pg的ARV模板。用31份臨床病料對本研究雙重RT-PCR技術和單項RT-PCR技術進行對比驗證,結果顯示,兩者的總符合率為100%。
2014年曹琛福[9]等建立實時熒光RT-PCR方法檢測雞病毒性關節炎病原,針對特異性的禽呼腸孤病毒S1基因設計了1對引物及探針,建立了雞病毒性關節炎實時熒光RT-PCR檢測方法。結果顯示:該方法靈敏度高、特異性強、檢測時間短,可應用于雞病毒性關節炎的普查監測和檢驗檢疫。
2017年鐘麗[3]等建立的Real-time RT-PCR檢測方法,在1×1011×1010copies/μL范圍內具有良好的線性關系,靈敏度達到10 copies/μL,是常規PCR方法的100倍。
2018年鄭麗[10]等建立了ARV納米PCR檢測方法。結果顯示,該方法特異性好,僅從ARV核酸樣品可檢測到約332bp的特異性目的條帶,而對新城疫病毒、傳染性支氣管炎病毒等其他11種病原的檢測結果均為陰性。敏感性試驗結果顯示,該納米PCR方法能檢測到的最低核酸質量濃度為56pg/L,其靈敏度是普通PCR的10倍。ARV核酸被重復檢測3次,結果均一致。應用建立的納米PCR和病毒分離鑒定方法對臨床送檢的30份樣品進行檢測,兩種方法的符合率為100%。
目前國內外尚沒有用于治療該病的方法,要以“預防為主,防治結合”為原則,做好各種免疫抑制病的預防接種工作,降低機體對禽呼腸孤病毒的易感性。
加強飼養管理,定期更換墊料,對雞舍內外及飼養工具定期進行消毒,消毒液可采用3%的火堿溶液進行舍內外消毒,或用0.5%有機碘液或百毒殺溶液1∶200稀釋帶雞噴霧消毒,飼養工具用10%的百毒殺等消毒藥物進行清洗消毒。
本病應以預防為主,疫苗免疫對預防雞病毒性關節炎效果明顯。中國農業科學院哈爾濱獸醫研究所成功研制雞新城疫、雞傳染性支氣管炎、雞病毒性關節炎、雞傳染性法氏囊炎病四聯油乳劑滅活疫苗,適用于各種不同的蛋雞和肉雞,接種10d后產生免疫力,免疫期可達5個月。
2009年王存偉[11]成功構建了介導禽呼腸孤病毒σC基因疫苗的重組減毒沙門氏菌株,制備出禽呼腸孤病毒σC基因疫苗,應用于雛雞,以 1.0×l09 CFU劑量 1次免疫6日齡雛雞,并于2周后進行二免,結果顯示,免疫2周后 ,可誘導機體產生ARVσC蛋白的特異血清Ig G抗體,差異顯著(P<0.01),二免后 3周進行攻毒試驗,保護率可達 66.7%,重組減毒沙門氏菌株對雛雞具有良好的免疫原性和安全性。
2012年徐延偉[12]等根據已公布的禽呼腸孤病毒 S1133毒株σC基因克隆至p PIC9K酵母表達載體當中,成功構建了重組酵母菌株p PIC9K-σC/GS115。 將畢赤酵母表達的重組σC蛋白用法國佐劑乳化后,免疫3周齡 SPF雞,并進行攻毒實驗,結果顯示,該重組σC蛋白可以阻止 ARV在體內的復制,且能夠對感染病毒進行清除。
2012年謝志勤[13]等構建了含禽呼腸孤病毒S1133毒株的σ3基因重組質粒 pc DNA3.1-σ3,免疫 7日齡SPF雛雞,同時設滅活 S1133、表達σ3蛋白及生理鹽水對照,二次加強免疫2周后,用S1133毒株進行攻毒,結果表明,pc DNA3.1-σ3處理 、滅活S1133處理 、表達σ3蛋白處理和生理鹽水處理的病毒檢出率分別為 7.4%、3.7%、11.1%、29.6% ,pc DNA-σ3處理與生理鹽水處理的差異顯著(P<0.05),但與滅活 S1133處理、表達σ3蛋白處理的差異不顯著(P>0.05)。
另外,在診治時,盡管雞的病毒性關節炎病臨床癥狀明顯,但容易與其他疾病混淆,在診斷時,應綜合流行病學、臨床癥狀、剖檢變化及實驗室診斷的結果作出確診,及時進行處置,減少養殖戶的經濟損失。