谷鋒,楊繼宏,李琮,張洪安,康明,段文都,劉巖
(1河北大學附屬醫(yī)院,河北保定071000;2華北油田總醫(yī)院)
肝細胞癌組織中維甲酸相關孤核受體α的表達變化及其意義
谷鋒1,楊繼宏2,李琮1,張洪安1,康明1,段文都1,劉巖1
(1河北大學附屬醫(yī)院,河北保定071000;2華北油田總醫(yī)院)
目的觀察肝細胞癌(HCC)組織中維甲酸相關孤核受體α(RORα)的表達變化,并探討其臨床意義。方法取92例HCC患者,術中獲取HCC組織和癌旁正常肝組織各92例份。分別采用免疫組化法及Western blotting法檢測HCC組織和癌旁正常肝組織中的RORα、VEGF,分析RORα表達與HCC臨床病理參數的關系。結果HCC組織及正常肝組織中RORα陽性分別為31(33.7%)、62(67.3%)例,VEGF陽性分別為74(80.4%)、17(18.5%)例。HCC組織中RORα陽性表達率低于正常肝組織,VEGF陽性表達率高于正常肝組織(P均<0.05)。HCC組織及正常肝組織中RORα相對表達量分別為0.52±0.07、1.70±0.03,VEGF相對表達量分別為1.94±0.08、0.55±0.07。HCC組織中RORα相對表達量低于正常肝組織,VEGF相對表達量高于正常肝組織(P均<0.05)。HCC組織中RORα與VEGF表達無相關性(P>0.05)。RORα陽性表達與HCC患者的年齡、性別、腫瘤直徑、臨床分期、淋巴結轉移情況等無關(P均>0.05)。HCC病理分級為Ⅰ~Ⅱ級者RORα陽性表達比例高于Ⅲ級者(P<0.05)。結論HCC組織中RORα表達下調,且與HCC的病理分級有關。RORα表達異??赡軈⑴c了HCC的發(fā)生發(fā)展。
肝腫瘤;肝細胞癌;維甲酸相關孤核受體α;血管內皮生長因子
原發(fā)性肝癌(PLC)是人類最常見的腫瘤之一,病死率高,其中有90%以上為原發(fā)性肝細胞性肝癌(HCC)。肝癌的發(fā)病較為隱匿,僅有接近30%的患者可在患病初期診斷并得到手術治療機會,多數中晚期患者只能采用非手術治療方式。研究肝癌細胞的分化、增殖、復發(fā)及轉移的分子機制,對HCC的診斷、病程進展及預后評估有重要意義。維甲酸類孤兒核受體(ROR)是孤核因子家族的一個亞科,因其序列與維甲酸受體(RAR)和維甲酸X受體(RXR)相似,由此得名。RORα是第一個被發(fā)現(xiàn)的ROR家族成員。RORα在多種組織和細胞中均有表達,包括大腦、肌肉、腸、心臟、皮膚、肺、肝、脾、白細胞和乳腺上皮細胞等[1]。RORα的異常活化與多種疾病相關,例如骨質疏松癥、自身免疫性疾病、哮喘等[2,3]。RORα在多種人類腫瘤中表達下調,發(fā)揮腫瘤抑制因子的作用。但對于RORα與HCC的關系目前研究較少,且無明確研究成果。本研究觀察了HCC組織中RORα的表達變化,并探討其臨床意義?,F(xiàn)報告如下。
1.1 臨床資料 住院手術治療的HCC患者92例,其中男51例、女41例,年齡24~93歲。病理分級Ⅰ~Ⅱ級患者36例,Ⅲ級患者56例;淋巴結轉移陽性患者40例。術中分別切取非壞死區(qū)HCC組織及距腫瘤邊緣至少1 cm的癌旁組織,各92例份。
1.2 RORα、VEGF檢測 ①免疫組化法:對組織切片進行免疫組化染色。步驟如下:60 ℃烘烤切片2 h,4 μm厚度石蠟切片脫蠟至水;雙氧水阻斷內源性過氧化物酶,在0.01 mol/L的枸櫞酸緩沖液中90 ℃微波抗原修復8 min;5%二抗正常血清室溫孵育封閉1 h;RORα(1∶100)或VEGF(1∶150)一抗稀釋后室溫孵育1 h;聚合物增強劑室溫孵育20 min,酶標抗鼠聚合物室溫孵育20 min,常規(guī)DAB顯色。以磷酸緩沖液PBS代替一抗作為陰性對照,同時做空白對照。每張切片選取5個視野,以細胞核或細胞質染成棕黃或棕褐色且大于5%的細胞著色判斷為蛋白表達陽性。②Western blotting法:取新鮮冰凍HCC組織和癌旁正常肝組織按照重量體積比1∶3加入組織裂解液(10 mmol/L的Tris-Cl,pH 8.0,150 mmol/L的NaCl,1 mmol/L的EDTA,1% NP-40,10%甘油及蛋白酶抑制劑)進行裂解,BCA法測定總蛋白濃度。配置10%分離膠和8%濃縮膠,取50 μg組織總蛋白進行十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(32 mA,60 min);110 V條件下轉膜120 min;5%脫脂奶粉封閉1 h后,加抗RORα(1∶1 000)及抗VEGF(1∶1 000)抗體室溫孵育1 h;TBST漂洗,二抗(1∶5 000)室溫孵育1 h;TBST漂洗,電化學發(fā)光法檢測。掃描蛋白條帶灰度值,用Image J軟件軟件進行分析。以目的蛋白條帶灰度值與內參GAPDH條帶灰度值的比值表示目的蛋白的相對表達量。
1.3 統(tǒng)計學方法 采用SPSS17.0軟件進行統(tǒng)計學分析。計量資料采用t檢驗。計數資料采用χ2檢驗。RORα與VEGF的相關性分析采用Pearson相關分析。P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。
2.1 HCC組織及正常肝組織中RORα、VEGF表達比較 免疫組化染色示RORα主要定位于肝細胞核,呈棕色顆粒狀或灶性分布;正常肝組織大部分能被染色,HCC組織只有少部分被染色,且正常肝細胞均著色較深,呈深棕色;VEGF表達于細胞質中,正常肝組織中細胞染色為陰性或淺棕色,HCC組織均能被染色,且部分病例著色顏色較深,呈深棕色。詳見圖1。HCC組織及正常肝組織中RORα陽性分別為31(33.7%)、62(67.3%)例,VEGF陽性分別為74(80.4%)、17(18.5%)例。HCC組織中RORα陽性表達率低于正常肝組織,VEGF陽性表達率高于正常肝組織(P均<0.05)。HCC組織及正常肝組織中RORα相對表達量分別為0.52±0.07、1.70±0.03,VEGF相對表達量分別為1.94±0.08、0.55±0.07。HCC組織中RORα相對表達量低于正常肝組織,VEGF相對表達量高于正常肝組織(P均<0.05)。見圖2。進一步分析結果顯示HCC組織中RORα與VEGF表達無顯著相關性(P>0.05)。

注:T為HCC組織;N為癌旁正常肝組織。
圖1HCC組織和癌旁正常肝組織中RORα、VEGF表達情況(免疫組化法)

圖2 HCC組織與正常肝組織中RORα、VEGF表達情況(Western blotting法)
2.2 RORα表達與HCC臨床病理參數的關系 RORα陽性表達與HCC患者的年齡、性別、腫瘤直徑、臨床分期、淋巴結轉移情況無關(P均>0.05)。HCC病理分級為Ⅰ~Ⅱ級者RORα陽性表達比例高于Ⅲ級者(P<0.05)。詳見表1。

表1 RORα陽性表達與HCC臨床病理參數的關系
注:與Ⅰ~Ⅱ級者相比,*P<0.05。
RORα是家族成員之一,參與多種重要生理功能的調節(jié),在細胞分化、生物體發(fā)育、神經調控等方面發(fā)揮重要作用[4]。RORα從N端到C端包含多個結構域,可執(zhí)行多種功能,其中的鋅指模序1和鋅指模序2可與特殊DNA序列ROR反應元件(RORE)進行特異性結合,從而調節(jié)靶基因轉錄[5]。經鑒定發(fā)現(xiàn),生物體中多種腫瘤相關基因也含有RORE,如N-myc、Nm23。因此,ROR在腫瘤的發(fā)生發(fā)展中同樣發(fā)揮重要作用[6,7]。
基因微陣列研究數據表明,多種腫瘤組織中RORα mRNA表達水平顯著下調[8,9]。其中胃癌細胞中RORα基因存在甲基化沉默現(xiàn)象,提示甲基化可能導致RORα表達下調[10]。RORα在結腸癌、乳腺癌和前列腺癌組織中表達也下調。研究[11]顯示,RORα過量表達可抑制Wnt/β-Catenin信號通路功能,后者在多種腫瘤中均存在異常激活,提示RORα可能通過調控Wnt/β-Catenin信號通路功能進而影響腫瘤的發(fā)生發(fā)展。目前有關RORα在肝癌發(fā)展中的作用研究較少[12]。最近報道顯示,肝癌患者外周血中檢測到RORα異常表達,RORα可能參與肝癌的腫瘤血管生成。因此,本研究不僅觀察了HCC組織中RORα的表達變化,同時檢測了與腫瘤血管生成密切相關的VEGF,期望探討RORα在腫瘤血管生成中的作用。
本研究結果顯示,RORα在HCC組織中的陽性表達率及表達水平較癌旁正常肝組織明顯下降,且隨著HCC病理分級增加,RORα表達下調越明顯,提示RORα在HCC發(fā)生發(fā)展過程中發(fā)揮抑制腫瘤生長的作用。本研究結果還顯示,VEGF在HCC組織中表達顯著上調,但RORα和VEGF在HCC組織中的表達無相關性,提示RORα可能并不參與對VEGF的直接調控。最新研究結果顯示,在NP細胞中抑制RORα表達可調節(jié)HIF1α-TAD的活性,但與HIF1α的靶基因VEGF、PFKFB3、Eno1的表達變化無直接關系[13]。還有研究者發(fā)現(xiàn),RORα可促使p53蛋白穩(wěn)定表達;利用最新合成的一種ROR激動劑作用于腫瘤細胞后,可使得p53穩(wěn)定表達并誘導腫瘤細胞凋亡[14]。ROR激動劑有望應用于相關腫瘤的臨床治療[15]。
Wnt/β-Catenin信號通路是維持肝臟正常生理功能的關鍵通路,也與多種肝病的發(fā)病有關。最新研究顯示,在肝癌中,Wnt/β-Catenin和Notch信號通路可提高肝癌干細胞的干細胞活性,并且Notch1作為Wnt/β-Catenin的下游蛋白對該通路有反饋調節(jié)作用。我們推測RORα可通過Wnt/β-Catenin通路調控肝癌進展。Cyclin D1、MMP7、c-MYC和E-cadherin等腫瘤相關蛋白均為Wnt/β-Catenin通路的下游靶蛋白,在肝癌細胞的增殖、侵襲和凋亡等過程中發(fā)揮重要作用。還有有學者發(fā)現(xiàn),RORα可顯著抑制胃癌MGC803細胞中E-cadherin表達和EMT過程。因此,在肝癌中,RORα是否參與Wnt/β-Catenin信號通路、EMT和腫瘤血管生成過程調節(jié)是進一步研究的焦點。
綜上所述,HCC組織中RORα表達下調,且與腫瘤病例分級有關。對RORα深入研究有助于進一步闡述HCC的形成和演變機制,有望為HCC的臨床診斷及治療相關研究提供新的方向。同時,HCC組織中RORα與VEGF表達無相關性,提示RORα在HCC發(fā)生發(fā)展過程中并不參與腫瘤血管生成的直接調控,也為下一步研究提供了參考。
[1] Hamilton BA, Frankel WN, Kerrebrock A W, et al. Disruption of the nuclear hormone receptor RORalpha in staggerer mice[J]. Nature, 1996,377(6567):736-739.
[2] Wang NS, Mcheyzerwilliams LJ, Okitsu SL, et al. Divergent transcriptional programming of class-specific B cell memory by T-bet and ROR[alpha][J]. Nat Immunol, 2012,13(6):604-611.
[3] Wong SH, Walker JA, Jolin HE, et al. Transcription factor ROR[alpha] is critical for nuocyte development[J]. Nat Immunol, 2012,13(3):229-236.
[4] Shin D, Kim IS, Lee JM, et al. The hidden switches underlying RORα-mediated circuits that critically regulate uncontrolled cell proliferation[J]. J Mol Cell Blol, 2014,6(4):338-348.
[5] Aranda A, Pascual A. Nuclear hormone receptors and gene expression[J]. Physiol Rev, 2001,81(3):12-69.
[6] Paravicini G, Steinmayr M, André E, et al. The metastasis suppressor candidate nucleotide diphosphate kinase NM23 specifically interacts with members of the ROR/RZR nuclear orphan receptor subfamily[J]. Biochem Bioph Res, 1996,227(1):82-87.
[7] Dussault I, Giguère V. Differential regulation of the N-myc proto-oncogene by ROR alpha and RVR, two orphan members of the superfamily of nuclear hormone receptors[J]. Mol Cell Biol, 1997,17(4):1860-1867.
[8] Du J, Xu R. ROR, a Potential Tumor Suppressor and Therapeutic Target of Breast Cancer[J]. Int J Mol Scl, 2012,13(12):15755-15766.
[9] Xiao L, Wang J, Li J, et al. RORα inhibits adipocyte-conditioned medium-induced colorectal cancer cell proliferation and migration and chick embryo chorioallantoic membrane angiopoiesis[J]. Am J Physiol Cell Physiol, 2015,308(5):385-396.
[10] Kim H S, Hong J P, Yang M. Abstract 3814: Signet-ring cell gastric carcinoma has different epigenetic signature from poorly differentiated gastric carcinoma[J]. Cancer Res, 2011,71(8):3814-3814.
[11] Ji M L, Kim I S, Kim H, et al. RORα Attenuates Wnt/β-Catenin Signaling by PKCα-Dependent Phosphorylation in Colon Cancer[J]. Mol Cell, 2010,37(2):183-195.
[12] Ou Z, Shi X, Gilroy R K, et al. Regulation of the human hydroxysteroid sulfotransferase (SULT2A1) by RORα and RORγ and its potential relevance to human liver diseases[J]. Mol Endocrinol, 2013,27(1):106-115.
[13] Suyama K, Silagi ES, Choi H, et al. Circadian factors BMAL1 and RORα control HIF-1α transcriptional activity in nucleus pulposus cells: implications in maintenance of intervertebral disc health[J]. Oncotarget, 2016,7(17):23056-23071.
[14] Wang Y, Solt LA, Kojetin DJ, et al. Regulation of p53 Stability and Apoptosis by a ROR Agonist[J]. PLS One, 2012,7(4):34921.
[15] Kojetin DJ, Burris TP. REV-ERB and ROR nuclear receptors as drug targets[J]. Nat Rev Drug Discov, 2014,13(3):197-216.
10.3969/j.issn.1002-266X.2017.35.030
R735.7
B
1002-266X(2017)35-0090-03
2017-03-06)
劉巖(E-mail: sanbenyange@sina.com)