溫度和限食對花鱸早期幼魚攝食與生長的影響

王 偉, 張凱強, 溫海深, 張美昭, 李吉方

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溫度和限食對花鱸早期幼魚攝食與生長的影響

王 偉, 張凱強, 溫海深, 張美昭, 李吉方

(中國海洋大學水產學院, 海水養殖教育部重點實驗室, 山東青島266003)

為探索北方人工繁育花鱸()幼魚冬季生長最佳溫度及投餌模式, 本實驗首次采用溫度和限食雙因素處理來研究花鱸幼魚的補償生長規律。實驗設置3個溫度水平(20℃、16℃和12℃)和2個投喂水平(100%投喂和50%投喂), 其中A組(20℃和100%投喂)為對照組, B組 (16℃和100%投喂)、C組 (12℃和100%投喂)、D組 (20℃和50%投喂)、E組 (16℃和50%投喂)和F組 (12℃和50%投喂)為處理組。實驗分2個階段: 第一階段為30 d的處理階段; 第二階段為20 d的恢復階段。結果表明, 花鱸幼魚在不同溫度及限食條件下具有不同的補償生長能力和補償生長機制。B組通過提高餌料轉化率實現了超補償生長; C組也是通過提高餌料轉化率達到了完全補償生長; D、E組則通過提高攝食率實現了完全補償生長; F組的花鱸幼魚則通過提高餌料轉化率實現了部分的補償生長。綜合考慮花鱸幼魚冬季培育成本及其生長, 建議北方花鱸幼魚越冬培育溫度為16℃, 投喂模式為100%投喂。

花鱸()幼魚; 溫度; 限食; 攝食; 補償生長

花鱸()隸屬于硬骨魚綱(Osteichsthyes)、鱸形目(Perciformes)、科(Serranidae)、花鱸屬(), 又稱白花鱸、鱸子魚、板鱸、青鱸、鱸魚、寨花[1], 主要分布于中國沿海和朝鮮沿海。花鱸因其肉質細嫩、味道鮮美、營養價值高、廣溫廣鹽性、抗病力強等特點, 深受消費者的歡迎, 具有良好的養殖前景[2]。自然界中水產動物的生存條件易受外界環境的影響, 經常面臨著如餌料不足造成的饑餓[3-5]以及溫度變化[6-7]造成的脅迫等生存問題。花鱸屬于秋末繁殖的魚類, 此季節北方花鱸幼魚生長受環境因素特別是溫度和餌料的影響較為嚴重, 如果魚類攝取的食物或者環境溫度受限制不能維持生長需要, 魚體的形態、攝食行為以及體內代謝過程都將會發生變化, 影響魚類的生長發育及存活。花鱸雖屬于耐饑餓程度很強的魚類, 但其初攝食配合飼料階段對環境變化敏感, 溫度和餌料的變化對此階段幼魚的生長、代謝影響很大, 研究溫度和限食對花鱸幼魚生長的影響機制有助于掌握此時期花鱸幼魚生長的最適宜培養模式。

目前國內外將溫度、限食2個因素作為影響花鱸幼魚補償生長的研究還未見報道。本實驗選擇溫度和限食2個因素來進行花鱸幼魚補償生長的研究, 旨在優化北方地區人工繁育花鱸幼魚培育的最佳溫度以及投餌模式, 進一步探究花鱸在環境變化后補償生長的機制, 也為北方花鱸工廠化育苗和養殖提供科學依據。

1 材料與方法

1.1 實驗材料

本實驗在東營市利津縣雙瀛水產苗種有限責任公司進行, 實驗對象為同一批該公司人工繁育的體質健壯、無外傷、體質量為(0.041±0.001) g、體長為(2.132±0.021) cm的花鱸幼魚。實驗所用容器為18個70 L的塑料圓桶(上外徑: 540 mm; 下外徑: 410 mm;高度: 460 mm)以及6個800 L的長方形塑料槽(157 cm×119 cm×58 cm)。溫度由1 kW大功率加熱棒以及控溫器調節, 上下波動小于0.5℃。實驗飼料來自珠海斗門區河口漁業研究所提供的花鱸全價配合飼料。

1.2 實驗設計

本實驗設置了3個溫度水平, 分別是20、16和12℃; 2個投喂水平, 分別是50%投喂和100%投喂, 每個處理設3個重復。實驗分2個階段進行, 第一階段30 d: 20℃和100%投喂的處理, 即對照組記為A組; 16℃和100%投喂的處理, 記為B組; 12℃和100%投喂的處理, 記為C組; 20℃和50%投喂的處理, 記為D組; 16℃和50%投喂的處理, 記為E組; 12℃和50%投喂的處理, 記為F組。第二階段為恢復實驗階段, 共計20 d, 各組在20℃和100%投喂條件下進行。

1.3 養殖實驗管理

1.3.1 實驗魚的馴化

實驗用魚先進行暫養以使其適應實驗環境, 實驗用水為經過沙濾、加熱后的新鮮海水, 鹽度控制在29.5±0.5。利用1周時間將原來16℃的海水保持或者升、降到各組設置的溫度。在該條件下馴化、暫養5 d,每天早晚兩次投喂配合飼料。光照周期設為12L: 12D, 24 h不間斷充氣。馴化結束后, 挑選健壯活潑、大小相近的個體放入圓桶中進行實驗。

為保證每個處理的3個重復所處的外界環境相同, 實驗開始前先將3個70 L圓桶放在1個800 L的塑料槽中, 然后將挑選出的1 440尾體質健壯、大小相近的花鱸幼魚隨機放入各個圓桶中, 每個圓桶中隨機放入80尾花鱸幼魚。第一階段結束后, 利用5 d的時間將各組溫度升到20℃。

1.3.2 日常管理

實驗設置了3個溫度水平, 分別是20、16和12℃。溫度水平是綜合魚苗培育成本、魚苗生長以及養殖場現實條件而設置的。實驗同時設置了50%投喂和100%投喂兩個日糧水平。日糧的設置方式如下: 在暫養結束前記錄實驗魚的飽食日糧水平, 每次投喂前稱量飼料, 使100%投喂組絕大部分花鱸幼魚不再攝食即為飽食量, 然后根據攝食情況適時調整投喂量。50%投喂水平根據100%投喂水平按比例投喂。每隔1周, 抽樣稱量3個重復圓桶中魚的體質量, 根據體質量調整投喂量。

本實驗選擇8: 00和16: 00 2個時間點進行投喂, 投喂前稱量飼料, 待絕大多數花鱸幼魚不再攝食即停止投喂, 此時稱量剩余的飼料, 差值即為攝食量。投喂前停氣清理糞便。實驗期間每天換水1次, 換水率100%。實驗期間各組溶解氧控制在5 mg/L以上, pH為7.98~8.04, 氨氮及亞硝酸鹽含量均小于0.1 mg/L。

1.4 生長指標的測定

實驗開始前以及各個階段結束后, 均測量體質量、體長并根據它們計算出特定生長率(SG)、餌料轉化率(FC)、攝食率(F)、肥滿度():

SG(%/d)=(ln2–ln1)/(2–1)×100 %

FC(%)=100×(2–1)/%

F(%/d)=100×/[(2–1)×(2+1)/2] %

(%)=/3×100 %

式中,2、1分別表示2(d)、1(d)時花鱸幼魚的體質量(g),為總攝食飼料量(g),是魚體質量(g),為魚體長(cm)。

1.5 樣品的采集以及測定

實驗開始前、實驗第一、二階段結束后, 每組隨機撈取30尾魚, 測定初始體質量和體長以及兩個階段后的體質量和體長。魚由桶中取出, 立即放入盛有200 mg/L MS-222的水中麻醉30 s, 然后進行體質量、體長測量。

1.6 統計分析

實驗數據均以平均值±標準差(M±SD)表示, 實驗前、第一、二階段結束后的數據用Excel和SPSS 19.0統計軟件進行統計處理。運用單因素方差分析(One-way ANOVA)檢驗各組的各項生長指標, 應用Duncan多重比較檢驗各組數據間差異顯著性, 同時用雙因素方差分析(Two-factor ANOVA)對第一階段結束后各組的生長數據進行交互作用的檢驗。以<0.05為顯著性水平, 以<0.01為極顯著性水平。

2 實驗結果

2.1 不同溫度、限食條件下花鱸幼魚體質量、肥滿度、存活率以及總投喂量

溫度對處理階段后花鱸幼魚的體質量有極顯著性影響(<0.01), 而限食、溫度和限食交互作用對其無顯著性影響(圖1和表1)。A組終末體質量最大, 且與其他各組均存在顯著性差異(<0.05)。在限食組中, 花鱸幼魚的終末體質量均隨溫度的升高而增大。在100%投喂組中, 各組終末體質量之間差異顯著(<0.05)。50%投喂組中, F組終末體質量與D、E組間均存在顯著性差異(<0.05), 而D組終末體質量雖然大于E組, 但差異不顯著。恢復階段后, B組花鱸幼魚的終末體質量最大, 且與其他各組存在顯著性差異(<0.05), 圖1)。A組終末體質量與C、D、E組相比存在差異但差異不顯著, 但其顯著高于F組(<0.05)。處理、恢復階段結束后, 各組間肥滿度均無顯著性差異。處理階段結束時, 存活率除F組外, 各組都在80%以上, 且各處理組均顯著低于對照組(<0.05), 恢復階段結束后, 各組的存活率在94%以上, 除D組外, 其他處理組均顯著低于對照組。整個實驗過程中的總投喂量, 各處理組均顯著低于對照組((<0.05), 表2)。

同一階段下, 柱狀圖上字母不同表示差異顯著(<0.05), 否則差異不顯著。下圖同

At the same phase, different letters are significantly different (<0.05), otherwise no significant difference. The same as below

2.2 不同溫度、限食條件下花鱸幼魚的特定生長率

溫度對處理階段后的花鱸幼魚的特定生長率有顯著性影響(<0.05), 而限食、溫度和限食的交互作用對其無顯著性影響(圖2和表1)。特定生長率最大是A組, 且與其他各組差異顯著(<0.05), B、C、D和E組的特定生長率存在差異但差異不顯著, F組特定生長率最小, 與其他各組相比存在顯著性差異(<0.05)。在相同的投喂方式下, 隨著溫度的升高, 特定生長率逐漸上升。恢復階段結束后, B組特定生長率顯著高于A組(<0.05), 而F組特定生長率顯著低于A組(<0.05)。C、D和E組的特定生長率高于A組, 但差異不顯著(圖2)。

2.3 不同溫度、限食條件下花鱸幼魚的攝食率

限食對處理階段后的花鱸幼魚的攝食率有顯著性影響(<0.05), 而溫度、溫度和限食的交互作用對其無顯著影響(圖3和表1)。A組攝食率最大, E、F組攝食率最小且與其他各組間差異顯著(<0.05)。相同投喂條件下, 隨著溫度的升高, 攝食率逐漸增加。同溫度條件下, 各組隨著投喂量的增加(50%~100%), 攝食率逐漸增加。恢復階段結束后, D、E組的攝食率顯著高于A組(<0.05), 而B、C組攝食率與A組之間差異不顯著, 但F組攝食率顯著低于A組((<0.05), 圖3)。

表1 雙因素方差分析不同溫度、限食條件對花鱸幼魚處理階段后末體質量、特定生長率、攝食率以及餌料轉化率的影響

表2 不同溫度、限食條件下花鱸幼魚體質量、肥滿度、存活率以及總投喂量(平均數±標準差)

注: 同一行中標有不同字母的數值表示差異顯著(<0.05)

2.4 不同溫度、限食條件下花鱸幼魚的餌料轉化率

限食對處理階段后的花鱸幼魚的餌料轉化率有極顯著性影響(<0.01), 而溫度、溫度和限食的交互作用對其無顯著性的影響(圖4和表1)。各組餌料轉化率總體情況與末體質量相一致, 只是A、B組之間雖有差異但差異不顯著。相同溫度下, 隨著投喂量的增加(50%~100%), 餌料轉化率逐漸增大, 且差異顯著(<0.05)。恢復階段后, 各組變化趨勢與此時末體質量一致, B、D和E組與處理階段相比餌料轉化率有不同程度的增加, 而D、E組與A組間餌料轉化率差異不顯著。F組餌料轉化率顯著低于A組((<0.05, 圖4)。

3 討論

3.1 不同溫度和限食處理對花鱸幼魚的補償生長

花鱸幼魚經過溫度及限食處理后, 在恢復階段中各組表現出不同程度的補償生長現象。本實驗中, 處理階段結束后B組花鱸幼魚的末體質量和特定生長率顯著低于A組, 而恢復階段結束后兩值都顯著高于A組, 明顯出現了超補償生長現象, 這種超補償生長現象在曾慶民[8]對花鱸饑餓5和10 d后恢復投喂的研究中出現過, 也在崔闊鵬等[9]對三疣梭子蟹()溞狀Ⅰ期幼體饑餓脅迫8和16 h組出現過, 同時也與饑餓處理的虹鱒()[10]、真鯛()[11]及美國紅魚()[12]研究結果一致, 但與以上研究不同的是本實驗超補償生長是由于溫度恢復而獲得的。魚類中因溫度恢復而達到超補償生長的研究較少, 粉色斑點蝦()[13]中的相關研究發現經過21℃、24℃、27℃、30℃和33℃5個不同溫度處理的粉色斑點蝦在溫度恢復至30℃補償生長15 d后, 各處理組粉色斑點蝦體質量均相應的增加, 其中前期21℃處理的粉色斑點蝦在溫度恢復至30℃生長15 d后, 出現了超補償生長的現象。B組超補償生長的獲得可能與花鱸幼魚的攝食行為相關。處理階段, B組花鱸幼魚對飼料的敏感程度遠遠不及A組, 沒有出現成群游動現象。而恢復階段, B組花鱸幼魚的搶食現象與A組相比更加明顯, 群游現象顯著, 此狀況一直持續到實驗結束。C、D和E組的花鱸幼魚在處理階段結束后其末體質量及特定生長率顯著低于A組, 而恢復階段結束后與A組無顯著性差異, 說明花鱸幼魚經過恢復階段后達到了完全補償生長, 這與朱藝峰等[14]進行的花鱸饑餓再投喂實驗所獲得的結果相似, 這種現象在受環境脅迫的魚類中經常出現, 如異育銀鯽()、長吻()[15], 亞馬遜石脂鯉()[16]及腹石脂鯉()[17], 而有的魚類如大西洋鮭()[18]在6周的50%投喂及6周的恢復飽食投喂后僅達到了部分補償生長, 推測本實驗D、E組溫度的恢復可能是其達到完全補償生長的重要原因。F組處理、恢復階段末體質量和特定生長率均顯著低于A組, 但末體質量、特定生長率與A組之間的差值有明顯的減小, 因此F組的花鱸幼魚屬于部分補償生長。受環境脅迫后, 在恢復適宜條件時表現出部分補償生長的魚類很常見, 比如大西洋鮭[18]、黃鰭金槍魚()[19]、紅點鮭()[20]、大西洋庸鰈()[21]及許氏平鲉()[22]。本實驗的結果表明, 北方地區花鱸幼魚培育的最佳溫度是16℃, 投喂水平是100%投喂。

3.2 不同溫度和限食處理對花鱸幼魚的補償生長的機制

目前有關補償生長理論某種觀點認為, 魚類受環境因素脅迫后其體內基礎代謝降低, 當條件恢復后, 較低的代謝水平會維持一段時間, 這種較低的代謝水平使得魚類用于支出的能量降低而用于生長的能量隨之增加, 從而提高了餌料轉化率, 魚類出現了補償生長[10, 23]。在本實驗中, B、C、F組補償生長的機制皆是通過提高餌料轉化率來實現, 支持上述觀點。經過溫度和限食處理后B組餌料轉化率與A組差異不顯著, 而經過恢復階段后B組餌料轉化率顯著高于A組, 經過溫度和限食處理后C組餌料轉化率值顯著低于A組, 而恢復階段后C組餌料轉化率值與A組差異不再顯著。而B、C兩組兩階段的攝食率均與A組無顯著性差異, 因此B、C組是通過提高餌料轉化率實現了補償生長。F組兩階段餌料轉化率、攝食率均顯著低于A組, 但恢復階段結束后F組餌料轉化率與A組相比差值有明顯的減小, 而恢復階段結束后攝食率與A組的差距沒有明顯減小,因此推測F組是通過提高餌料轉化率來實現了補償生長。與本實驗研究結果相似的魚類也有報道, 例如美國紅魚[12]、紅大馬哈魚()[24]及虹鱒[10]。同時, 還有一種觀點認為, 魚類受環境因素脅迫后恢復適宜條件時, 魚類體內立即進行大量的合成作用, 代謝水平迅速升高, 補償生長的產生是魚類在適宜條件恢復后食欲增強, 大幅度提高攝食水平實現的[25]。本實驗中, 恢復階段后D、E組的花鱸幼魚攝食率顯著高于A組, 而餌料轉化率與A組相比差異不顯著, 因此D、E組是通過提高攝食率, 實現了補償生長, 與上述觀點相一致。短周期饑餓處理后恢復投喂的水產動物通常是通過提高攝食量, 增加代謝水平來實現補償生長, 如雜交太陽魚 ()[26]、斑點叉尾()[25]、南方鲇()[27]、三刺魚()[28-29]、異育銀鯽[15, 30]以及皺紋盤鮑()[31]等。

總之, 經過溫度和限食處理后恢復適宜條件的花鱸幼魚得到了不同程度的補償生長。從生長方面考慮, B組最終體質量比A組高20%, 且存活率較高, B組是生長最快的處理組。從成本方面考慮, F組飼料投喂量最少, 與A組相比節約了近50%飼料量, 且節約了電能。F組為最經濟的處理組, 但F組因低溫和低投喂量造成的花鱸幼魚死亡率較高, 從存活率方面考慮, F組不是最佳選擇。C、D、E組各方面情況介于A、F組之間。可以根據不同的需要, 綜合利弊, 選擇不同的溫度條件和投喂模式。

[1] 溫海深, 錢焜, 張美昭, 等. 花鱸繁殖生理及人工養殖模式探析[J]. 現代農業科技, 2013, 5: 281-282. Wen Haishen, Qian Kun, Zhang Meizhao, et a1. Analysis on reproductive physiology and artificial cultivation model of[J]. Modern Agricultural Science and Technology, 2013, 5: 281-282.

[2] 張璐, 李靜, 譚芳芳, 等. 飼料中不同維生素A含量對花鱸生長和血清生化指標的影響[J]. 水產學報, 2015, 39(1): 88-96. Zhang Lu, Li Jing, Tan Fangfang, et a1Effects of different dietary vitamin A levels on growth and serum biochemical parameters for Japanese sea bass ()[J]. Journal of Fisheries of China, 2015, 39(1): 88-96.

[3] 錢周興, 徐永清, 方一峰. 饑餓對魚類的影響[J]. 生物學通報, 2006, 41(6): 9-11. Qian Zhouxing, Xu Yongqing, Fang Yifeng. Effects of starvation on fish[J]. Biological Bulletin, 2006, 41(6): 9-11.

[4] 高鵬程, 周朝生, 吳洪喜, 等. 饑餓及恢復投喂對刺參生長、耗氧率和排氨率的影響[J]. 漁業科學進展, 2014, 35(1): 125-132.Gao Pengcheng, Zhou Chaosheng, Wu Hongxi, et al. Effects of starvation on growth, oxygen consumption and ammonia excretion rate of sea cucumber[J]Progress in Fishery Sciences, 2014, 35(1): 125-132.

[5] 賈瑞錦, 陳超, 孔祥迪, 等. 饑餓對條紋鋸鮨仔魚的存活、攝食及生長的影響[J]. 海洋科學, 2014, 38(4): 44-49. Jia Ruijin, Chen Chao, Kong Xiangdi, et al. Effects of starvation on suriving, feeding and growth of the Yolk-sac larval of[J]. Marine Sciences, 2014, 38(4): 44-49.

[6] 紀利芹, 蔣克勇, 韓龍江, 等. 連續降溫對大菱鲆成魚代謝機能的影響[J]. 海洋科學, 2014, 38(5): 46-53. Ji Liqin, Jiang Keyong, Han Longjiang, et al. Effect of continuous cooling on metabolic function of adultL.[J]. Marine Sciences, 2014, 38(5): 46-53.

[7] 徐奇友, 黃金鳳. 環境溫度和蛋白質水平對魚類生長和代謝的影響[J]. 東北農業大學學報, 2011, 42(12): 1-8. Xu Qiyou, Huang Jinfeng. Effect of environmental temperature and protein level on growth and metabolism of fish[J]. Journal of Northeast Agricultural University, 2011, 42(12): 1-8.

[8] 曾慶民. 饑餓對花鱸生長效果的比較研究[J]. 集美大學學報(自然科學版), 2004, 9(2): 122-126. Zeng Qingmin. A comparative study on intermittent feeding and compensatory growth of sea bass[J]. Journal of Jimei University (Natural Science), 2004, 9(2): 122-126.

[9] 崔闊鵬, 馬甡. 三疣梭子蟹溞狀Ⅰ期幼體的饑餓實驗[J]. 海洋科學, 2009, 33(8): 40-43. Cui Kuopeng, Ma Shen. Starvation experiments with the larvae ofin zoea stage[J]. Marine Sciences, 2009, 33(8): 40-43.

[10] Dobson S H, Holmes R M. Compensatory growth in the rainbow trout,Richardson[J]. Journal of Fish Biology, 1984, 25(6): 649-656.

[11] 張波, 孫耀. 饑餓對真鯛生長及生化組成的影響[J]. 水產學報, 2000, 24(3): 206-210. Zhang Bo, Sun Yao. The effects of starvation on growth and biochemical composition in[J]. Journal of Fisheries of China, 2000, 24(3): 206-210.

[12] 姜志強, 賈澤梅. 美國紅魚繼饑餓后的補償生長及其機制[J]. 水產學報, 2002, 26(1): 67-72. Jiang Zhiqiang, Jia Zemei. The compensatory growth and its mechanism of red drum,after food deprivation[J]. Journal of Fisheries of China, 2002, 26(1): 67-72.

[13] Hostins B, Braga A, Lopes D L A, et al. Effects of temperature on nursery and compensatory growth of pink shrimpreared in a super-intensive biofloc system[J]. Aquacultural Engineering, 2015, 66: 62-67.

[14] 朱藝峰, 林霞, 關文靜, 等. 花鱸在短期周期性饑餓下的補償生長[J]. 水產科學, 2007, 26(11): 597-600. Zhu Yifeng, Lin Xia, Guan Wenjing, et al. Compensatory growth in Japanese sea perchduring short period starvation[J]. Fisheries Science, 2007, 26(11): 597-600.

[15] Zhu X, Xie S, Zou Z, et a1Compensatory growth and food consumption in gibel carp,and Chinese longsnout catfish,experiencing eye’s of feed deprivation and refeeding[J]. Aquaculture, 2004, 241(1): 235-247.

[16] Urbinati E C, Sarmiento S J, Takahashi L S. Short-term cycles of feed deprivation and refeeding promote full compensatory growth in the Amazon fish matrinx? ()[J]. Aquaculture, 2014, 433: 430-433.

[17] Kojima J T, Leit?o N J, Menossi O C C, et alShort periods of food restriction do not affect growth, survival or muscle development on pacu larvae[J]. Aquaculture, 2015, 436: 137-142.

[18] Stefansson S O, Imsland A K, Handeland S O. Food- deprivation, compensatory growth and hydro-mineral balance in Atlantic salmon () post-smolts in sea water[J]. Aquaculture, 2009, 290(3): 243-249.

[19] Paul A J, Paul J M, Smith R L. Compensatory growth in Alaska yellowfin sole,following food deprivation[J]. Journal of Fish Biology, 1995, 46(3): 442-448.

[20] Jobling M, J?rgensen E H, Siikavuopio S I. The influence of previous feeding regime on the compensatory growth response of maturing and immature Arctic charr,[J]. Journal of Fish Biology, 1993, 43(3): 409-419.

[21] Heide A, Foss A, Stefansson S O, et al. Compensatory growth and fillet crude composition in juvenile Atlantic halibut: Effects of short term starvation periods and subsequent feeding[J]. Aquaculture, 2006, 261(1): 109- 117.

[22] Oh S Y, Noh C H, Kang R S, et al. Compensatory growth and body composition of juvenile black rockfishfollowing feed deprivation[J]. Fisheries Science, 2008, 74(4): 846-852

[23] Mlglavs I, Jobling M. Effects of feeding regime on food consumption, growth rates and tissue nucleic acids in juvenile Arctic charr,, with particular respect to compensatory growth[J]. Journal of Fish Biology, 1989, 34(6): 947-957.

[24] Bilton H T, Robins G L. The Effects of starvation and subsequent feeding on survival and growth of fulton channel sockeye salmon fry ()[J]. Journal of the Fisheries Research Board of Canada, 1973, 30(1): 1-5.

[25] Kim M K, Lovell R T. Effect of restricted feeding regimens on compensatory weight gain and body tissue changes in channel catfishin ponds[J]. Aquaculture, 1995, 135(4): 285-293.

[26] Robert Hayward, Douglas Noltie, Ning Wang. Use of compensatory growth to double hybrid sunfish growth rates[J]. Transactions of the American Fisheries Society, 1997, 126(2): 316-322.

[27] 鄧利, 張波, 謝小軍. 南方鲇()繼饑餓后的恢復生長[J]. 水生生物學報, 1999, 23(2): 168-173. Deng Li, Zhang Bo, Xie Xiaojun. The recovery growth in the southern catfish () following starvation[J]. Journal of Aquatic Biology, 1999, 23(2): 168-173.

[28] Ali M, Wootton R J. Capacity for growth compensation in juvenile three-spined sticklebacks experiencing cycles of food deprivation[J]. Journal of Fish Biology, 2001, 58(6): 1531-1544.

[29] Wu L, Xie S, Cui Y, et al. Effect of cycles of feed deprivation on growth and food consumption of immature three-spined sticklebacks and European minnows[J]. Journal of Fish Biology, 2003, 62(1): 184-194.

[30] Xie S, Zhu X, Cui Y, et al. Compensatory growth in the gibel carp following feed deprivation: temporal patterns in growth, nutrient deposition, feed intake and body composition[J]. Journal of Fish Biology, 2001, 58(4): 999-1009.

[31] 任黎華, 張繼紅, 王文琪, 等. 周期性斷食對皺紋盤鮑生長、攝食、排糞和血細胞組成的影響[J]. 漁業科學進展, 2012, 33(2): 86-91. Ren Lihua, Zhang Jihong, Wang Wenqi, et al. Effects of periodic starvation on growth, feeding, defecation and granulocyte of Pacific abaloneIno[J]. Progress in Fishery Sciences, 2012, 33(2): 86-91.

Temperature and food restriction effect on ingestion and growth in early-stagejuveniles

WANG Wei, ZHANG Kai-qiang, WEN Hai-shen, ZHANG Mei-zhao, LI Ji-fang

(The Key Laboratory of Mariculture, Ministry of EducationCollege of Fisheries, Ocean University of China, Qingdao 266003, China)

This study aims to find the optimum growth temperature and feeding mode for the artificial breeding ofjuveniles in the northern region during winter. This is the first instance in which different temperature and food restriction treatments were used to study the compensatory growth regularities ofjuveniles. We set up three levels of temperature (20, 16, 12℃) and two levels of food restriction (50% and 100%). Group A (20℃ and 100%) was the control group; B (16℃ and 100%), C (12℃ and 100%), D (20℃ and 50%), E (16℃ and 50%), and F (12℃ and 50%) were the treatment groups. The experiment was divided into two phases in which phase 1 comprised treatment for the duration of 30 days and phase 2 comprised recovery for the duration of 20 days. The results showed that after different temperature and food restriction treatments,juveniles obtained different degrees of compensatory growth ability and compensatory growth mechanism. Group B achieved over-compensatory growth by improving food conversion efficiency. Group C achieved full compensatory growth by also increasing food conversion efficiency. Both groups D and E achieved full compensation growth by increasing the feeding ratio. In addition, the results showed that thejuveniles of group F achieved compensation growth by increasing food conversion efficiency. Considering the cultivation cost and growth ofjuveniles, it is suggested that the culturing optimum temperature ofjuveniles in the northern region is 16℃, and that the feeding mode is satiation.

juveniles; temperature; food restriction; ingestion; compensatory growth

(本文編輯: 譚雪靜)

Aug. 11, 2016

[Science and Technology Support Program, No.2011BAD13B03; Fisheries Science and Technology of Dongying City, No.20150217]

S917.4

A

1000-3096(2017)06-0001-08

10.11759//hykx20160811001

2016-08-11;

2016-10-25

國家“十二五”國家科技支撐計劃課題(2011BAD13B03); 東營市漁業科技資助項目(20150217)

王偉(1990-), 男, 安徽蕪湖人, 碩士研究生, 主要從事魚類繁殖生理學研究, E-mail: wwscyz1213@163.com; 溫海深, 通信作者, 教授, E-mail: wenhaishen@ouc.edu.cn