四角蛤蜊核苷類(lèi)成分純化工藝研究

張倩，劉睿，3，程建明，3，王欣之，3，杜俊潮，張文英，吳皓，3，*

（1.南京中醫(yī)藥大學(xué)藥學(xué)院，江蘇南京210023；2.江蘇省海洋藥用生物資源研究與開(kāi)發(fā)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室，江蘇南京210023；3.江蘇省中藥資源產(chǎn)業(yè)化過(guò)程協(xié)同創(chuàng)新中心/中藥資源產(chǎn)業(yè)化與方劑創(chuàng)新藥物國(guó)家地方聯(lián)合工程研究中心，江蘇南京210023）

四角蛤蜊核苷類(lèi)成分純化工藝研究

張倩1，2，劉睿1，2，3，程建明1，2，3，王欣之1，2，3，杜俊潮1，2，張文英1，2，吳皓1，2，3，*

（1.南京中醫(yī)藥大學(xué)藥學(xué)院，江蘇南京210023；2.江蘇省海洋藥用生物資源研究與開(kāi)發(fā)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室，江蘇南京210023；3.江蘇省中藥資源產(chǎn)業(yè)化過(guò)程協(xié)同創(chuàng)新中心/中藥資源產(chǎn)業(yè)化與方劑創(chuàng)新藥物國(guó)家地方聯(lián)合工程研究中心，江蘇南京210023）

采用大孔吸附樹(shù)脂與陽(yáng)離子交換樹(shù)脂串聯(lián)純化四角蛤蜊醇沉上清液中核苷類(lèi)成分，以核苷的純度和回收率為指標(biāo)，考察樹(shù)脂的型號(hào)、上樣濃度、水洗體積、洗脫劑濃度及流速對(duì)純化效果的影響，以期得到最佳的純化工藝。確定大孔吸附樹(shù)脂的型號(hào)及最佳工藝為：SP207型，質(zhì)量濃度250 mg/mL，pH值為5.0，水洗除雜體積是3 BV，洗脫液為體積分?jǐn)?shù)5%乙醇。進(jìn)一步通過(guò)離子交換樹(shù)脂純化，確定樹(shù)脂型號(hào)及最佳純化工藝為：001*7陽(yáng)離子交換樹(shù)脂，質(zhì)量濃度6.3 mg/mL，氨水∶乙醇（體積比3∶30）溶液洗脫，洗脫流速是3 BV/h。經(jīng)兩種樹(shù)脂串聯(lián)純化后，四角蛤蜊醇沉上清液中核苷類(lèi)成分的質(zhì)量分?jǐn)?shù)由1.80%提高至50.60%，總回收率為70.32%。工藝驗(yàn)證結(jié)果表明SP207大孔吸附樹(shù)脂與001*7陽(yáng)離子交換樹(shù)脂串聯(lián)純化核苷類(lèi)成分的方法穩(wěn)定可行，能夠用于四角蛤蜊核苷類(lèi)成分的分離純化。

四角蛤蜊；核苷；大孔吸附樹(shù)脂；陽(yáng)離子交換樹(shù)脂；純化

四角蛤蜊（Mactra veneriformis）生長(zhǎng)于灘涂潮間帶，為江蘇沿海重要經(jīng)濟(jì)貝類(lèi)之一[1]。四角蛤蜊屬軟體動(dòng)物門(mén)（Mollusca），瓣鰓綱（Lamellibranchia），真瓣鰓目（Eulamellibranchia），蛤蜊科（Mactridae），始載于《本草經(jīng)集注》，味甘、咸，性寒，具有滋陰利水，化痰軟堅(jiān)等功效。前期研究將四角蛤蜊軟體經(jīng)水提醇沉，得到上清液和沉淀兩部分，其中沉淀部位主要含有粗多糖，具有較好的免疫調(diào)節(jié)及輔助降血糖的功效[2]，已開(kāi)發(fā)相關(guān)功能食品；上清液部位含有氨基酸、寡肽、核苷等成分，具有保肝與抗氧化功能[3-4]。前期研究表明四角蛤蜊中富含次黃嘌呤、黃嘌呤、肌苷等多種核苷類(lèi)成分[5]，現(xiàn)代研究表明核苷具有抗病毒、抗氧化、抗腫瘤、免疫調(diào)節(jié)、基因治療[6-7]等多種生物活性。基于沿海低值貝類(lèi)全值化綜合利用的思路，提升低值貝類(lèi)的附加值，本試驗(yàn)對(duì)四角蛤蜊上清液中的核苷類(lèi)物質(zhì)進(jìn)行富集與純化。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

四角蛤蜊：江蘇省海洋水產(chǎn)研究所，批號(hào)為20150714，經(jīng)江蘇省海洋水產(chǎn)研究所萬(wàn)夕和研究員鑒定為蛤蜊科動(dòng)物四角蛤蜊Mactra veneriformisReeve。

次黃嘌呤、黃嘌呤、尿苷、胸腺嘧啶、2-脫氧尿苷、肌苷、鳥(niǎo)苷、2-脫氧肌苷、2-脫氧鳥(niǎo)苷（純度均大于99%）：美國(guó) Sigma公司，；SK1B、PK228、JK008、D113、D001、001×16、001×7 型陽(yáng)離子樹(shù)脂：河北滄州寶恩樹(shù)脂有限公司；SP207、AB-8、HPD100、HPD250、HPD400、HPD500大孔吸附樹(shù)脂：北京綠百草科技發(fā)展有限公司；甲醇（色譜純）：德國(guó)默克公司；水為超純水；其余試劑均為分析純。

1.2 儀器與設(shè)備

Waters 2695高效液相色譜儀、Waters 2489 UV檢測(cè)器：美國(guó)Waters公司；3-16pk高速離心機(jī)：美國(guó)sig ma公司；R-210旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀：瑞士BUCHI公司；UNIQUE-s15超純水機(jī)：美國(guó)Millipore公司；KQ-500DE型數(shù)控超聲波清洗器：昆山市超聲儀器有限公司；BT-125D型電子分析天平：德國(guó)Satrourius公司；THZ-82水浴恒溫振蕩器：江蘇省金壇市榮華儀器制造有限公司。

1.3 方法

1.3.1 四角蛤蜊醇沉上清液的制備

取四角蛤蜊吐沙，去殼，得新鮮軟體，稱(chēng)重，加入3倍量水煎煮，每次45 min，煎煮2次，將濾液濃縮至原軟體質(zhì)量的1/3，10 000 r/min離心10 min，去沉淀，得上清液，加乙醇調(diào)節(jié)體積分?jǐn)?shù)至80%，靜置過(guò)夜，抽濾，濾液減壓回收乙醇至無(wú)醇味，得水提醇沉上清液，備用。

1.3.2 核苷類(lèi)成分的含量測(cè)定

本試驗(yàn)采用HPLC同時(shí)測(cè)定9種核苷類(lèi)成分的含量[8]，方法如下：色譜柱：Waters XBridge C18（4.6 mm×250 mm，5 μm）；柱溫：25 ℃；流動(dòng)相：甲醇（A）-0.1%乙酸水（B），梯度洗脫：0～8 min，0～2%A；8 min～30 min，2%～6%A；30 min～40 min，6%～10%A；40 min～50 min，10%～30%A；流速：0.5 mL/min；檢測(cè)波長(zhǎng)：254 nm，進(jìn)樣體積：10 μL。通過(guò)測(cè)定四角蛤蜊醇沉上清中核苷類(lèi)成分，總含量為1.8%，為9種核苷類(lèi)成分（次黃嘌呤、黃嘌呤、尿苷、胸腺嘧啶、2-脫氧尿苷、肌苷、鳥(niǎo)苷、2-脫氧肌苷、2-脫氧鳥(niǎo)苷）。

1.3.3 大孔吸附樹(shù)脂與陽(yáng)離子樹(shù)脂分離方法比較

大孔樹(shù)脂與離子交換樹(shù)脂常用于物質(zhì)的分離純化[9-10]。且大孔樹(shù)脂與陽(yáng)離子交換樹(shù)脂具有選擇性好、穩(wěn)定性高、使用周期長(zhǎng)等優(yōu)點(diǎn)，本文分別考察了大孔樹(shù)脂與陽(yáng)離子樹(shù)脂這兩種不同的分離介質(zhì)，收集洗脫部位并測(cè)定核苷類(lèi)成分的轉(zhuǎn)移率和純度。

分別量取SP207、AB-8樹(shù)脂各25 mL，用乙醇進(jìn)行預(yù)處理，上樣水提醇沉上清液，用2 BV水進(jìn)行除雜，再用10 BV 10%乙醇洗脫，收集洗脫部位，測(cè)定核苷類(lèi)成分；分別量取PK228、SK1B樹(shù)脂各25 mL，用4%鹽酸與4%氫氧化鈉溶液進(jìn)行預(yù)處理，上樣水提醇沉上清液，用2 BV水進(jìn)行除雜，再用10 BV 5%氨水溶液洗脫，收集洗脫部位，測(cè)定核苷類(lèi)成分。

1.3.4 大孔吸附樹(shù)脂純化工藝考察

準(zhǔn)確稱(chēng)取已預(yù)處理的樹(shù)脂各5 g（濕重），加入樣品液50 mL，置于搖床上室溫振蕩吸附24 h后，吸取上清液，測(cè)定核苷含量，計(jì)算吸附率。將以上飽和吸附的樹(shù)脂過(guò)濾，再加入適量洗脫劑，搖勻，置于搖床上室溫振搖解吸24 h，測(cè)定解吸液中核苷的含量，計(jì)算解吸率。

式中：Q為飽和吸附量，mg/g；A為吸附率，%；D為解吸率，%；C0為起始質(zhì)量濃度，mg/mL；C1為平衡質(zhì)量濃度，mg/mL；C2為解吸后核苷質(zhì)量濃度，mg/mL；V為溶液體積，mL；M為樹(shù)脂重量，g。

式中：Cr為洗脫液中核苷的質(zhì)量濃度，mg/mL；C0為上樣液中核苷的質(zhì)量濃度，mg/mL；Vr為洗脫液體積，mL；V0為上樣液體積，mL；mr為洗脫液總固含，mg；m0為上樣液總固含，mg。

2 結(jié)果與分析

2.1 大孔吸附樹(shù)脂與陽(yáng)離子樹(shù)脂分離效果比較

大孔樹(shù)脂與陽(yáng)離子樹(shù)脂的分離效果比較見(jiàn)表1。

表1 大孔樹(shù)脂與陽(yáng)離子樹(shù)脂的分離效果比較Table 1 Comparison of separation effects of macroporous resin and cation exchange resin

表1顯示，從核苷類(lèi)成分的純度考察，發(fā)現(xiàn)SP207大孔樹(shù)脂的純度最高，達(dá)到了16.13%，其次是SK1B陽(yáng)離子交換樹(shù)脂，為10.01%；從回收率考察，SP207大孔樹(shù)脂的回收率明顯優(yōu)于其他樹(shù)脂，其次仍是SK1B離子交換樹(shù)脂。故在第一步純化過(guò)程中先采用大孔吸附樹(shù)脂，后續(xù)采用陽(yáng)離子交換樹(shù)脂，兩者進(jìn)行串聯(lián)純化四角蛤蜊醇沉上清中核苷類(lèi)成分。

2.2 大孔吸附樹(shù)脂純化工藝考察

2.2.1 樹(shù)脂型號(hào)對(duì)核苷類(lèi)成分富集的影響

不同型號(hào)大孔樹(shù)脂對(duì)核苷類(lèi)成分的靜態(tài)吸附及解吸情況見(jiàn)表2。

表2 不同型號(hào)大孔樹(shù)脂對(duì)核苷類(lèi)成分的靜態(tài)吸附及解吸情況Table 2 Static adsorption and desorption of nucleosides in different types of macroporous resins

篩選了6種大孔樹(shù)脂，分別是SP207、AB-8、HPD100、HPD250、HPD400、HPD500型。其中 SP207 樹(shù)脂的吸附率為66.67%，解吸附能力達(dá)到87.95%，均明顯優(yōu)于其他大孔樹(shù)脂，故選擇SP207型大孔吸附樹(shù)脂為純化四角蛤蜊中核苷類(lèi)成分的樹(shù)脂。

2.2.2 上樣濃度對(duì)大孔吸附樹(shù)脂吸附效果考察

分別加入質(zhì)量濃度為 50.0、100.0、150.0、200.0、250.0 mg/mL四角蛤蜊醇沉上清液通過(guò)大孔樹(shù)脂，測(cè)定吸附后的溶液中核苷類(lèi)成分濃度，計(jì)算吸附率，考察不同的上樣濃度對(duì)SP207型大孔樹(shù)脂吸附效果的影響。上樣濃度對(duì)吸附效果的影響見(jiàn)圖1。

圖1 上樣濃度對(duì)吸附效果的影響Fig.1 Effect of sample concentration on adsorption

大孔吸附樹(shù)脂具有較好的吸附效果，以色散力為主的范德華力吸附極性物質(zhì)。在一定范圍內(nèi)，上樣濃度的增大有利于樹(shù)脂對(duì)極性成分的吸附[11]，充分利用單位體積內(nèi)的樹(shù)脂。如圖1所示，在SP207型大孔樹(shù)脂吸附過(guò)程中，隨上樣濃度上升，吸附率不斷增大。當(dāng)濃度為250 mg/mL時(shí)，吸附效果最佳，故在上樣液澄清的前提下，選擇較高的質(zhì)量濃度250 mg/mL進(jìn)行上樣。

2.2.3 上樣pH值對(duì)大孔吸附樹(shù)脂吸附效果影響

經(jīng)測(cè)定，四角蛤蜊醇沉上清液的pH值為5.0。上樣液中pH值是影響樹(shù)脂吸附效果的因素之一，一般可通過(guò)改變pH值，改變物質(zhì)在溶液中存在的狀態(tài)，從而改善樹(shù)脂的吸附率。分別用鹽酸和氫氧化鈉調(diào)節(jié)上樣液 pH 值為 3.0、4.0、6.0、7.0、8.0、9.0，以相同流速通過(guò)層析柱，測(cè)定吸附后溶液中核苷的濃度，計(jì)算吸附率。上樣pH值對(duì)吸附效果的影響見(jiàn)圖2。

圖2 上樣pH值對(duì)吸附效果的影響Fig.2 Effect of sample pH on adsorption

圖2考察了從酸性到堿性的區(qū)間，不同上樣pH值對(duì)SP207樹(shù)脂吸附效果的影響。整體而言，上樣pH值為酸性時(shí)，樹(shù)脂的吸附效果明顯優(yōu)于堿性條件。在SP207樹(shù)脂吸附過(guò)程中，pH 5.0吸附效果最佳，也就是醇沉上清原本的pH值，故不調(diào)節(jié)上樣pH值，直接以“2.1”項(xiàng)下制備的醇沉上清液進(jìn)行上樣。

2.2.4 水洗量對(duì)大孔吸附樹(shù)脂洗脫效果影響

四角蛤蜊醇沉上清液中除了核苷類(lèi)成分，還含有氨基酸、寡糖、寡肽及少量鹽分[5]。在大孔樹(shù)脂的純化過(guò)程中，需用少量水洗去雜質(zhì)。上樣液經(jīng)樹(shù)脂吸附后，用不同柱體積的水（2、3、4、5、6 BV）進(jìn)行洗脫以除去水溶性的雜質(zhì)。通過(guò)考察最佳水洗量去除雜質(zhì)的影響，并達(dá)到減少目標(biāo)成分損失的效果。水洗量對(duì)洗脫效果的影響見(jiàn)圖3。

圖3 水洗量對(duì)洗脫效果的影響Fig.3 Effect of water washing amount on elution result

如圖3所示，隨著水洗倍數(shù)的增加，除雜率呈緩慢上升的趨勢(shì)，而回收率呈下降趨勢(shì)。表明少量的水可除去水溶性的雜質(zhì)，而水洗體積過(guò)多則會(huì)導(dǎo)致核苷類(lèi)成分的損失，故綜合考慮水洗量為3 BV，此時(shí)除雜效果與回收率均較好。

2.2.5 洗脫劑濃度對(duì)大孔吸附樹(shù)脂洗脫效果的影響

核苷類(lèi)成分極性較大，易溶于稀醇、弱堿水等。用體積分?jǐn)?shù)為0%、5%、10%、20%乙醇作為解吸溶劑進(jìn)行動(dòng)態(tài)洗脫，收集洗脫液，HPLC測(cè)定核苷濃度，計(jì)算回收率及純度。乙醇體積分?jǐn)?shù)對(duì)洗脫效果的影響見(jiàn)圖4。

圖4 乙醇體積分?jǐn)?shù)對(duì)洗脫效果的影響Fig.4 Effect of ethanol volume fraction on elution efficiency

如圖4所示，低濃度的醇能達(dá)到較好的解吸效果，隨著乙醇濃度的增大，核苷類(lèi)成分的純度和回收率均呈先上升后穩(wěn)定的趨勢(shì)。試驗(yàn)表明體積分?jǐn)?shù)5%乙醇洗脫效果最佳，核苷純度為33.32%，回收率為85.50%。綜合考慮工業(yè)生產(chǎn)成本，優(yōu)先選擇體積分?jǐn)?shù)5%乙醇作為大孔吸附樹(shù)脂的洗脫劑。

2.3 陽(yáng)離子樹(shù)脂的條件優(yōu)化

2.3.1 陽(yáng)離子樹(shù)脂型號(hào)篩選

將上述大孔吸附樹(shù)脂的洗脫部位進(jìn)行適量濃縮，繼 續(xù) 分 別 上 樣 JK008、D113、D001、001*16、001*7、SK1B型陽(yáng)離子交換樹(shù)脂，準(zhǔn)確稱(chēng)取已預(yù)處理的樹(shù)脂各5 g（濕重），加入樣品液50 mL，置于搖床上室溫振蕩吸附24 h后，過(guò)濾，再加入適量洗脫劑，置于搖床上室溫振搖解吸24 h，測(cè)定其吸附率與解吸附率。如表3所示。

表3 不同型號(hào)陽(yáng)離子樹(shù)脂對(duì)核苷類(lèi)成分的靜態(tài)吸附及解吸情況Table 3 Static adsorption and desorption of nucleosides in different types of cation exchange resins

結(jié)果表明強(qiáng)酸性的陽(yáng)離子交換樹(shù)脂的吸附效果明顯優(yōu)于弱酸性樹(shù)脂。其中001*7樹(shù)脂的吸附率、解吸率均最高。故選擇001*7陽(yáng)離子交換樹(shù)脂與大孔吸附樹(shù)脂進(jìn)行串聯(lián)分離純化貝類(lèi)中核苷類(lèi)成分。

2.3.2 上樣濃度對(duì)陽(yáng)離子交換樹(shù)脂吸附效果的影響

四角蛤蜊醇沉上清經(jīng)過(guò)大孔樹(shù)脂純化后，其洗脫部位進(jìn)行適量濃縮，制備質(zhì)量濃度為3.2、6.3、17.1、25.2 mg/mL，分別通過(guò)陽(yáng)離子樹(shù)脂，考察吸附率變化。上樣質(zhì)量濃度對(duì)吸附效果的影響見(jiàn)圖5。

圖5 上樣質(zhì)量濃度對(duì)吸附效果的影響Fig.5 Effect of mass concentration of sample on adsorption

如圖5所示，在001*7離子交換樹(shù)脂吸附過(guò)程中，隨上樣濃度增加，吸附效果呈先上升后下降的趨勢(shì)。當(dāng)濃度為6.3 mg/mL，陽(yáng)離子交換樹(shù)脂對(duì)核苷類(lèi)成分的吸附效果最佳。故第二步001*7離子交換樹(shù)脂純化過(guò)程中，選擇適宜的上樣質(zhì)量濃度為6.3 mg/mL。

2.3.3 洗脫流速對(duì)陽(yáng)離子交換樹(shù)脂洗脫效果的影響

洗脫流速是影響洗脫效果的因素之一。分別以1、2、3、4 BV/h的流速進(jìn)行洗脫，收集洗脫液，測(cè)定核苷的濃度，計(jì)算回收率及純度，考察不同洗脫流速對(duì)001*7陽(yáng)離子樹(shù)脂洗脫效果的影響。洗脫流速對(duì)洗脫效果的影響見(jiàn)圖6。

圖6 洗脫流速對(duì)洗脫效果的影響Fig.6 Effect of elution velocity on elution result

一般情況下，洗脫溶劑在樹(shù)脂柱層析中流速越快，溶劑與樹(shù)脂吸附交換的時(shí)間越少，越少的成分被置換出來(lái)，則洗脫回收率降低。由圖6可知，洗脫流速越快，核苷類(lèi)成分的回收率越低。結(jié)果表明當(dāng)流速為3 BV/h時(shí)有較好的洗脫效果，且生產(chǎn)效率較高。故選擇此流速為最佳流速。

2.3.4 洗脫濃度對(duì)陽(yáng)離子交換樹(shù)脂洗脫效果的影響

核苷類(lèi)成分屬于極性大的成分，在低濃度的乙醇及堿性溶劑中溶解度較好。本試驗(yàn)用不同濃度的乙醇和氨水溶液作為001*7陽(yáng)離子樹(shù)脂的解吸溶劑，考察洗脫濃度對(duì)樹(shù)脂的解吸效果。

首先，在001*7陽(yáng)離子樹(shù)脂中選擇氨水與乙醇作為洗脫劑，比較洗脫效果，發(fā)現(xiàn)氨水與乙醇兩者混合時(shí)，洗脫效果最佳。故進(jìn)一步對(duì)洗脫劑的濃度進(jìn)行考察，結(jié)果見(jiàn)圖7A、圖7B。當(dāng)氨水∶乙醇（體積比為3∶30）時(shí)，核苷類(lèi)成分的回收率最大，核苷含量最高，故在此條件下富集純化效果最佳。

2.4 工藝驗(yàn)證

取四角蛤蜊軟體制備醇沉上清液，分別經(jīng)過(guò)大孔吸附樹(shù)脂和陽(yáng)離子交換樹(shù)脂的分離純化，得到總核苷類(lèi)部位。將核苷對(duì)照品與純化后部位分別注入高效液相色譜系統(tǒng)進(jìn)行分析，結(jié)果見(jiàn)圖8。

圖7 氨水與乙醇洗脫濃度對(duì)洗脫效果的影響Fig.7 Effect of elution concentration of ammonia and ethanol on the elution

試驗(yàn)采用大孔樹(shù)脂與陽(yáng)離子交換樹(shù)脂串聯(lián)來(lái)純化四角蛤蜊醇沉上清中核苷類(lèi)成分。通過(guò)動(dòng)態(tài)吸附、解吸實(shí)驗(yàn)確定最佳工藝條件：第一步純化樹(shù)脂型號(hào)為SP207型大孔樹(shù)脂，質(zhì)量濃度為250.0 mg/mL，pH值為5.0，體積分?jǐn)?shù)為5%乙醇的洗脫劑，此時(shí)核苷質(zhì)量分?jǐn)?shù)為33.32%，回收率為85.50%。第二步純化的樹(shù)脂型號(hào)為001*7陽(yáng)離子樹(shù)脂，此時(shí)質(zhì)量濃度6.3 mg/mL，流速3 BV/h，洗脫劑是氨水∶乙醇∶水（體積比3∶30∶67）溶液。經(jīng)過(guò)兩次樹(shù)脂純化后質(zhì)量分?jǐn)?shù)高達(dá)50%，提高了26倍多，且總回收率為70.32%。

3 結(jié)論

目前，對(duì)于富集貝類(lèi)中核苷類(lèi)成分的文獻(xiàn)報(bào)道較少。本試驗(yàn)將大孔吸附樹(shù)脂與陽(yáng)離子交換樹(shù)脂進(jìn)行串聯(lián)，純化四角蛤蜊中核苷類(lèi)成分。核苷類(lèi)成分極性較大，含有較多的共軛雙鍵，在大孔吸附樹(shù)脂的篩選中，結(jié)果表明SP207型弱極性的大孔吸附樹(shù)脂對(duì)核苷類(lèi)成分吸附效果明顯優(yōu)于極性樹(shù)脂，推測(cè)其吸附力主要是色散力與分子篩作用；在陽(yáng)離子交換樹(shù)脂的吸附過(guò)程中，核苷類(lèi)成分通過(guò)酸性離子鍵的作用進(jìn)行吸附。

前期對(duì)四角蛤蜊醇沉上清中核苷類(lèi)成分進(jìn)行了鑒別，發(fā)現(xiàn)其中次黃嘌呤、黃嘌呤、肌苷等嘌呤類(lèi)的物質(zhì)較多[8]，這與四角蛤蜊作為海鮮貝類(lèi)，其生長(zhǎng)環(huán)境及攝食藻類(lèi)有關(guān)。HPLC圖結(jié)果對(duì)比顯示，次黃嘌呤、黃嘌呤、肌苷、鳥(niǎo)苷等堿基與核苷類(lèi)成分經(jīng)過(guò)兩次樹(shù)脂串聯(lián)純化后，其回收率均較高，而其他核苷類(lèi)成分回收率低，推斷其可能原因是在樹(shù)脂上吸附過(guò)強(qiáng)，洗脫不完全或在水洗除雜的過(guò)程中損失。采用HPLC共檢測(cè)9種核苷類(lèi)成分：次黃嘌呤、黃嘌呤、肌苷、鳥(niǎo)苷、胸腺嘧啶、2-脫氧肌苷、2-脫氧鳥(niǎo)苷。在試驗(yàn)中發(fā)現(xiàn)該純化部位還含有核苷酸類(lèi)成分，如腺苷酸（AMP）、肌苷酸（IMP）等。

圖8 核苷類(lèi)成分混合標(biāo)準(zhǔn)品HPLC圖（A）及未純化（B）、純化HPLC圖（C）Fig.8 HPLC chromatograms of Mixed standards（A）and unpurified（B），purification（C）

通過(guò)工藝放大驗(yàn)證，結(jié)果表明本試驗(yàn)的純化方法較好地富集了四角蛤蜊醇沉上清中核苷及核苷酸類(lèi)成分，且該工藝可操作性強(qiáng)，生產(chǎn)周期短，成本低，環(huán)保性強(qiáng)，制備純度較高天然核苷類(lèi)成分，為后續(xù)進(jìn)一步開(kāi)發(fā)貝類(lèi)核苷類(lèi)成分提供了理論基礎(chǔ)。

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Purification of Nucleosides and Nucleobases from Mactra veneriformis

ZHANG Qian1，2，LIU Rui1，2，3，CHENG Jian-ming1，2，3，WANG Xin-zhi1，2，3，DU Jun-chao1，2，ZHANG Wen-ying1，2，WU Hao1，2，3，*
（1.College of Pharmacology，Nanjing University of Chinese Medicine，Nanjing 210023，Jiangsu，China；2.Jiangsu Key Laboratory of Research and Development in Marine Bio-resource Pharmaceutics，Nanjing 210023，Jiangsu，China；3.Jiangsu Collaborative Innovation Center of Chinese Medicinal Resources Industrialization/National and Local Collaborative Engineering Center of Chinese Medicinal Resources Industrialization and Formulae Innovative Medicine，Nanjing 210023，Jiangsu，China）

The nucleosides were purified by macroporous adsorption resin and cation exchange resin from Mactra veneriformis，the purity and recovery rate of nucleosides were determined.The influence of the resin model，sample concentration，washing volume，concentration and flow rate on the purification efficiency were investigated in order to obtain the best purification process.The type and optimum process of macroporous resin was SP207，sample concentration was 250 mg/mL，pH value was 5.0，removal of impurities with water was 3 BV，and the eluent was the ethanol of 5%volume fraction.While the further purification of ion exchange resin determined that the resin type and the best purification process was to use 001*7 cation exchange resin，sample concentration was 6.3 mg/mL，elution solution was prepared with ammonia，ethanol and water（the volume ratio was 3∶30），elution flow rate was 3 BV/h.After tandem and purification of the two resins，the nucleosides in the alcohol precipitation supernatant of mactra quadrangularis were increased from 1.80%to 50.6%，with a total recovery of 70.32%.The process validation showed that the way to use SP207 macroporous resin and 001*7 cation exchange resin to purify nucleosides was stable and feasible，which could be adopted in the separation and purification of nucleosides in Mactra veneriformis.

Mactra veneriformis；nucleosides；macroporous resin；cation exchange resin；purification

2016-12-15

10.3969/j.issn.1005-6521.2017.18.007

國(guó)家公益性行業(yè)專(zhuān)項(xiàng)基金（201305007、201405017）；國(guó)家高技術(shù)研究發(fā)展計(jì)劃（863計(jì)劃）；江蘇省高校優(yōu)勢(shì)學(xué)科建設(shè)工程項(xiàng)目（PAPD）；江蘇省青藍(lán)工程（2016）

張倩（1992—），女（漢），碩士研究生，研究方向：海洋藥物研究。

*通信作者：吳皓（1957—），女，教授，研究方向：海洋藥物及中藥炮制學(xué)研究。