周康 韓航 王偉



摘要[目的]研究蟲草參多糖的提取工藝,并考察其抗氧化能力。[方法]采用超聲波輔助提取蟲草參多糖,在單因素試驗的基礎上進行正交試驗,確定蟲草參多糖的最佳提取工藝,并考察蟲草參多糖的抗氧化能力。[結果]蟲草參多糖的最佳提取工藝為超聲功率500 W、提取時間40 min、液料比40∶1,在此條件下多糖提取率為60.94%;各影響因素主次順序依次為超聲功率、液料比、提取時間。所得蟲草參多糖對羥基自由基、超氧陰離子自由基、DPPH·自由基均具有一定的清除能力。[結論]蟲草參多糖具有一定的抗氧化作用,能延緩自由基對人體細胞的損傷。
關鍵詞 蟲草參;多糖;超聲波輔助提取;工藝優化;抗氧化性
中圖分類號 S567.2 文獻標識碼 A 文章編號 0517-6611(2017)03-0135-03
Abstract[Objective] To study the extraction process of polysaccharide from Cordyceps sinensis, and investigate its antioxidant capacity. [Method] Polysaccharides were extracted from C. sinensis assisted by ultrasonic, orthogonal experiment was carried out based on single factor test. The optimum extraction conditions were determined and antioxidant capacity of polysaccharide from C. sinensis were investigated. [Result] The yield of polysaccharide was 60.94% under the optimum conditions of ultrasonic power 500 W, extraction time 40 min, liquidsolid ratio 40∶1;The influencing factors were in order as ultrasonic power, liquidsolid ratio, extraction time. Hydroxyl radicals, superoxide anion radicals and DPPH·radicals can be scavenged by C. sinensis polysaccharide within a certain range.[Conclusion] Polysaccharide from C. sinensis has a certain antioxidant capacity, which can delay free radical damage to human cells.
Key words Cordyceps sinensis;Polysaccharide;Ultrasonic assisted extraction;Process optimization;Antioxidant
蟲草參又名地參,屬唇形科多年生藥食兩用草本植物,是一種地下莖長5~6 cm的肉質環形參,廣泛分布于西南等少數民族地區,喜溫耐寒,素來享有“山中之王”的美譽[1-2]。中醫認為其具有活血調經、祛瘀消癰、利水消腫等功效,在《中藥大辭典》中就有提神醒腦、調血脂、補腎虛的功效記載[3]。蟲草參中糖類及氨基酸等活性物質含量豐富,具有降血糖、降血脂、抗氧化、促消化等功效[1,4-7]。目前,蟲草參多糖的提取方法主要是熱水提取,能耗較高,而超聲技術在中藥活性成分提取分離中的應用將顯著提高提取率,降低能耗。筆者采用超聲波輔助提取蟲草參多糖,在單因素試驗的基礎上進行正交試驗,確定蟲草參多糖的最佳提取工藝,并考察其抗氧化能力,以期為蟲草參加工利用提供數據積累。
1 材料與方法
1.1 試材
蟲草參(中國劍川縣車記地參食品廠),烘干粉碎過60目篩備用。葡萄糖等試劑購自國藥集團化學試劑有限公司,均為分析純。
1.2 儀器
數顯恒溫水浴鍋(HH-4型,常州國華電器有限公司);紫外可見分光光度計(UV-9600型,北京北分瑞利分析儀器有限責任公司);旋轉蒸發儀(RE-52型,上海亞榮生化儀器);循環水式真空泵[SHZ-D(Ш)型,鞏義市予華儀器有限責任公司];植物粉碎機(LG-500A型,瑞安百信藥機械廠);低速自動平衡離心機(DT5-4B型,北京時代北利離心機有限公司)。
1.3 方法
1.3.1 葡萄糖標準曲線的繪制。
精確稱取葡萄糖標品10 mg,溶解定容于100 mL容量瓶中,配制成0.1 mg/mL的葡萄糖標準溶液。分別取0、0.4、0.6、0.8、1.0、1.2、1.4 mL葡萄糖標準溶液,蒸餾水補齊至2.0 mL,加入1 mL 6%苯酚溶液及5 mL 98%硫酸,搖勻,30 ℃水浴20 min,于490 nm處測定吸光度。以吸光度為縱坐標、葡萄糖含量為橫坐標繪制標準曲線。
1.3.2 蟲草參多糖提取工藝。
稱取一定量蟲草參粉末,采用超聲波輔助提取蟲草參多糖,所得樣品離心后,取上清液定容,依照苯酚硫酸法測定其多糖含量。分別考察超聲功率、提取時間、液料比對蟲草參多糖提取率的影響。并在單因素試驗的基礎上,采用L9(34)正交試驗(表1),得出最佳工藝條件。
1.3.3 清除羥基自由基能力測定[8-12]。
取2支25 mL比色管,加入5 mL 2 mmol/L FeSO4、5 mL 6 mmol/L H2O2,混合均勻后用6 mmol/L水楊酸-乙醇溶液補齊至刻度,于510 nm處立即測定吸光度A0,再加入1 mL蟲草參多糖溶液,搖勻后測定吸光度Ax,并按公式(1)計算羥基自由基清除率。
羥基自由基清除率=(A0-Ax)/A0×100%(1)
式中,Ax為蟲草參多糖組吸光度,A0為空白組吸光度。
1.3.4 清除超氧陰離子自由基能力測定[8-12]。
取2支25 mL比色管,加入4.5 mL 0.05 mol/L pH為8.2的Tris-HCl溶液,于25 ℃水浴20 min后,加入0.5 mL 0.025 mol/L鄰苯三酚溶液及1 mL蟲草參多糖溶液,混勻后放置5 min,再加入1 mL 8 mol/L的HCl,搖勻后于320 nm處測定吸光度,并按公式(2)計算超氧陰離子自由基清除率。
超氧陰離子自由基清除率=(A0-Ax)/ A0×100%(2)
式中,Ax為蟲草參多糖組吸光度,A0為空白組吸光度。
1.3.5 清除DPPH·自由基能力測定[8-12]。
取20 mg DPPH·用無水乙醇溶解并定容至500 mL,取1 mL蟲草參多糖樣品與1 mL DPPH·混合反應30 min后,于517 nm處測定吸光度Ax,并按照公式(3)計算DPPH·自由基清除率。
DPPH·自由基清除率=(Ax-A1)/A2×100%(3)
式中,Ax為蟲草參多糖組與DPPH·反應的吸光度,A1為蟲草參多糖組與溶劑的吸光度,A2為DPPH·與溶劑的吸光度。
2 結果與分析
2.1 葡萄糖標準曲線的繪制
由圖1可知,葡萄糖標準曲線的線性回歸方程為y=6.020 6x+0.007 1(R2=0.999 1),表明葡萄糖含量在0~0.14 mg線性關系良好。
2.2 單因素試驗
2.2.1 超聲功率對蟲草參多糖提取率的影響。
從圖2可看出,隨著超聲功率的增大,蟲草參多糖提取率不斷提高,當超聲功率達到400 W時,提取率為36.31%,隨著超聲功率繼續增大,多糖溶出率上升趨勢減緩。可能是因為在較低超聲功率情況下,超聲波能逐漸破壞細胞壁,致使內容物溶出,而隨著超聲功率的提高,在一定時間內蟲草參細胞能被基本破壞,內容物已充分溶出,所以多糖溶出率上升趨勢減緩,故選擇超聲功率為400 W為宜。
2.2.2 提取時間對蟲草參多糖提取率的影響。
由圖3可知,隨著提取時間的延長,蟲草參多糖提取率不斷提高,當提取時間達到40 min時,提取率為42.59%,隨著提取時間繼續延長,多糖溶出率上升趨勢減緩。可能是因為在較短的提取時間內,超聲波快速破壞細胞壁,使細胞內容物釋放,隨著時間的延長,細胞壁已經被完全破壞,內容物已充分溶解,使得多糖溶出率升高趨勢變緩,因此,超聲提取時間確定為40 min。
2.2.3 液料比對蟲草參多糖提取率的影響。
從圖4可看出,隨著液料比的增大,蟲草參多糖提取率不斷提高,當液料比達到30∶1時,提取率為56.24%,隨著液料比繼續增大,多糖溶出率上升趨勢減緩。可能是因為在一定質量蟲草參粉末情況下,隨著溶劑用量的增加,增大了蟲草參與溶劑接觸面的濃度差,從而提高了多糖傳質速率,隨著溶劑用量繼續增加,內容物已完全溶出,使得多糖溶出率升高趨勢變緩,因此,液料比確定為30∶1。
2.3 正交試驗
由表2可知,超聲波輔助提取蟲草參多糖最佳工藝為A3B2C3,即超聲功率為500 W,提取時間為40 min,液料比為40∶1,在此條件下多糖提取率為62.65%,經此條件驗證,蟲草參多糖提取率為60.94%。通過極差分析可知,各影響因素主次順序依次為超聲功率、液料比、提取時間。
2.4 清除羥基自由基能力測定
由圖5可知,隨著蟲草參多糖濃度的增加,其清除羥基自由基能力不斷提高,當多糖濃度為40 μg/mL時,其清除率達80.33%,同等濃度下的維生素C溶液清除率為68.67%,蟲草參多糖對羥基自由基清除能力明顯優于維生素C溶液。
2.5 清除超氧陰離子自由基能力測定
從圖6可看出,隨著蟲草參多糖濃度的增加,其清除超氧陰離子自由基能力不斷提高,當多糖濃度為50 μg/mL時,清除率達52.33%,同等濃度下的維生素C溶液清除率為47.67%,蟲草參多糖對超氧陰離子自由基清除能力明顯優于維生素C溶液。
2.6 清除DPPH·自由基能力測定
由圖7可知,隨著蟲草參多糖濃度的增加,其清除DPPH·自由基能力不斷提高,當多糖濃度為50 μg/mL時,清除率達50.33%,同等濃度下的維生素C溶液清除率為44.67%,蟲草參多糖對DPPH·自由基清除能力明顯優于維生素C溶液。
3 小結
圍繞蟲草參多糖提取工藝進行研究,并考察其抗氧化能力,在單因素試驗的基礎上進行正交試驗,得出蟲草參多糖最佳提取工藝為A3B2C3,即超聲功率500 W、提取時間40 min、液料比40∶1,在此條件下多糖提取率為62.65%,經此條件驗證,蟲草參多糖提取率為60.94%;各影響因素主次順序依次為超聲功率、液料比、提取時間。所得蟲草參多糖對羥基自由基、超氧陰離子自由基和DPPH·自由基均有一定的清除作用,在一定的范圍內,多糖濃度越高,抗氧化效果越好,且蟲草參多糖對羥基自由基、超氧陰離子自由基和DPPH·自由基清除能力明顯優于維生素C溶液。由此可知,蟲草參多糖具有一定的抗氧化作用,能延緩自由基對人體細胞的損傷。
參考文獻
[1] 羅孟禹,董開居.淺析名特珍稀野菜“地參”種植與開發[J].中國野生植物資源,2006,25(5):64-65.
[2] 胡旗輝.藥食兩用蟲草參栽培技術[J].農村新技術,2006(11):9.
[3] 許泳吉,鐘惠民,楊波,等.野生植物地參中營養成分的測定[J].光譜實驗室,2003,20(4):528-529.
[4] 張賽男.蟲草參多糖提取工藝研究[J].北京農業,2015(12):15-16.
[5] 林春榕,左紹遠,熊偉,等.地參多糖對D-半乳糖所致衰老小鼠的抗氧化作用研究[J].安徽農業科學,2012,40(18):9646-9647.
[6] 熊偉,陳貴元,譚德勇,等.野生地參多糖對四氧嘧啶致糖尿病小鼠血糖和血脂的影響[J].生物加工過程,2011,9(6):45-48.
[7] LAWRENCE J M,REID J,TAYLOR G J,et al.The effect of high dose atorvastatin therapy on lipids and lipoprotein subfraction in overweight patients with type 2 diabetes [J].Atherosclerosis,2004,174(1):141-149.
[8] 張賽男.蟲草參多糖抗氧化性研究[J].遼寧農業職業技術學院學報,2015,17(3):9-10.
[9] 李平,王艷輝,馬潤宇.山茱萸多糖PFCAIII抗氧化性能研究[J].北京化工大學學報,2003,30(3):35-38.
[10] 秦慧民,朱思明,于淑娟.橙皮苷及銅配合物的抑菌抗氧化活性研究[J].食品科技,2006,31(6):81-83.
[11] YEN G C,DUH P D,TSAI C L.Relationship between antioxidant activity and maturity of peanut hulls [J].J Agric Food Chem,1993,41(1):67-70.
[12] BERKER K I,GL K,TOR I,et al.Total antioxidant capacity assay using optimized Ferricyanide/Prussian Blue method [J].Food analutical methods,2012,3(3):154-168.