標本溶血對生化檢驗結果的影響及處理對策探析

楊永懷

標本溶血對生化檢驗結果的影響及處理對策探析

楊永懷

目的探討標本溶血對生化檢驗結果的影響及處理對策。方法30例健康體檢人員于空腹采血, 將每例研究對象血液標本均分為2份, 分別作為對照組與實驗組, 各30份。對照組標本自然凝固后行離心處理, 實驗組采用人工攪拌溶血后提取血清, 對比兩組標本檢測結果。結果兩組血清尿酸(UA)、血清肌酐(Cr)、尿素氮(BUN)、三酰甘油(TG)水平比較差異無統計學意義(t=0.059、0.431、0.178、0.352, P＞0.05)；實驗組直接膽紅素(DBIL)、總膽紅素(TBIL)更低, 肌酸激酶(CK)、血清總蛋白(TP)、谷丙轉氨酶(ALT)、總膽固醇(CHO)更高, 兩組比較差異具有統計學意義(t=7.476、4.692、2.451、2.650、2.926、2.023, P＜0.05)。結論標本溶血會影響生化檢驗指標的準確性, 對檢驗結果造成干擾, 可通過正確采集靜脈血標本、嚴格遵循檢驗科工作規范、妥善保存標本、嚴格選用試管和注射器等措施進行預防, 臨床檢驗應注意進行控制。

生化檢驗；血生化指標；標本溶血；影響因素；對策

標本溶血現象是抽血負壓偏高、離心分離過快或者水浴箱溫度偏高等情況下導致紅細胞破壞, 細胞內細胞液以及其他物質摻雜在血清中, 對血清物質成分含量與具體種類造成干擾, 容易引起檢驗結果誤差［1-5］。本研究主要探討標本溶血對生化檢驗結果的影響及處理對策, 希望為臨床檢驗工作提供一定參考。現報告如下。

1 資料與方法

1. 1一般資料 選取2015年10月～2016年10月本院送檢的30例健康體檢人員為本次研究對象, 受試對象均于空腹狀態下抽取4 ml靜脈血標本, 標本血清中均無黃疸、脂血以及溶血問題。將每例研究對象采血標本均分為2份,每份2 ml, 分別置入2個試管, 分別作為對照組與實驗組, 每組30份。

1. 2方法 對照組采用自然凝固的方法, 3 min后實施離心處理, 取血清1 ml待測。實驗組采用人工方法溶血, 即標本凝固前攪拌使其溶血, 同樣離心處理后取血清1 ml待測。檢測兩組血生化指標, 檢測儀器為DRI CHEM7000干片全自動生化分析儀, 檢測項目包括DBIL、UA、TBIL、TP、BUN、TG、CK、CHO、Cr、ALT等10項生化指標水平差異。

2 結果

兩組血清UA、Cr、BUN、TG水平比較差異無統計學意義(t=0.059、0.431、0.178、0.352, P＞0.05)；實驗組DBIL、TBIL更低, CK、TP、ALT、CHO更高, 兩組比較差異具有統計學意義(t=7.476、4.692、2.451、2.650、2.926、2.023, P＜0.05)。見表1。

表1兩組血清指標比較

表1兩組血清指標比較

注：與對照組比較,aP＜0.05

組別份數DBIL(μmol/L)TBIL(μmol/L)UA(μmol/L)Cr(μmol/L)CK(U/L)TP(g/L)ALT(U/L)BUN(mmol/L)TG(mmol/L)CHO(mmol/L)對照組304.03±0.3111.25±2.30283.66±60.32 72.71±12.3073.19±21.40 74.09±4.31 21.09±4.33215.22±39.77 1.03±0.214.81±0.50實驗組30 3.01±0.68a8.27±2.61a282.74±60.95 73.99±10.64 84.08±11.59a80.63±12.81a31.14±18.31a217.30±50.26 1.05±0.23 5.11±0.64at 7.4764.6920.0590.4312.4512.6502.9260.1780.3522.023 P＜0.05＜0.05＞0.05＞0.05＜0.05＜0.05＜0.05＞0.05＞0.05＜0.05

3 討論

3. 1標本溶血的影響因素 從本研究結果分析來看, 兩組血清UA、Cr、BUN、TG水平比較差異無統計學意義(t=0.059、0.431、0.178、0.352, P＞0.05)；實驗組DBIL、TBIL更低, CK、TP、ALT、CHO更高, 兩組差異具有統計學意義(t=7.476、4.692、2.451、2.650、2.926、2.023, P＜0.05), 與任桂梅［6］研究類似, 說明標本溶血已經明顯干擾了生化檢驗結果。標本溶血的影響因素較多, 可見于標本從采集、運送、分離處理到保存血液的每一個環節中, 任何操做不當行為都有可能導致紅細胞體外破裂, 大量細胞液以及細胞內物質摻進血漿,并引起血漿稀釋等變化, 造成溶血現象的發生。常見的標本溶血因素主要包括如下：①真空管采血。由于真空管具有較高的負壓, 采血管內的血樣標本承受壓強較高, 紅細胞之間碰撞較為激烈, 很容易導致細胞破裂。②采血器具。檢驗科室常用的采血器具大多為一次性塑料制品, 如果未按照標準添加增塑劑穩定劑, 或添加劑種不合格、聚合不完全導致毒性滲出, 都有較大幾率引起血樣標本溶血的問題［7-9］。③促凝劑。一般來說塑料管凝血效果相對較差, 血液標本在塑料試管內存放時間≥2 h的情況下方可徹底凝固, 難以滿足臨床檢驗工作效率的需求, 因此應適量加入相應的促凝劑。如果促凝劑配方不合理, 血液標本急劇凝血或者難以在相應時間內快速凝血, 就會導致血細胞破裂, 出現溶血現象［10］。④血清分離處理。離心處理時如果套管底部存在硬物或者提速過快, 都會過度擠壓紅細胞, 造成溶血問題。除此之外,采血過程中止血帶綁扎過緊、采血時空氣進入采血管、采血標本量過少等會引起溶血問題［11］。一般情況下血清或者血漿中蛋白水平＞300 mg/L就會影響標本檢驗結果準確度。

3. 2標本溶血問題的處理對策 ①正確采集靜脈血標本。臨床采血時應以貴要靜脈以及肘正中靜脈為主, 如果患者為嬰幼兒可選擇股靜脈、頸外靜脈, 不要選取管徑過細的靜脈。如果預采血點周圍有輸液管穿刺, 則應更換采血點。采血困難病例切忌長時間綁扎止血帶, 不可對穿刺部位反復拍打,避免機械性刺激引起溶血問題。采集靜脈血的正確方法為對穿刺部位實施熱敷處理, 確認血管充盈后方可采集血樣標本。如果無法抽取合格標本, 應立即將待泡沫的血樣標本送檢, 以免干燥后對檢測結果造成影響［12］。②嚴格遵循檢驗科工作規范。采血時合理選擇穿刺點, 對皮膚表面消毒、自然干燥后采集標本, 抽取過程中緩慢轉動針栓, 沿試管壁將血液緩慢注入, 注意試管內不可有泡沫［13］。③妥善保存標本。檢驗科收到送檢標本后應在室溫環境下保存, 避免溶血。運輸過程中避免過度震蕩引起溶血問題［14］。④嚴格選用試管和注射器, 把好質量關。對于一次性試管以及注射器械的進貨渠道應予以嚴格控制和管理, 以免檢驗結果因器械問題受到不良影響。采血以及檢驗操作過程中務必細心操作, 保證注射器、試管以及注射針頭質量。提交檢測報告結果時充分考慮溶血因素, 并標注在相關數據中。

綜上所述, 標本溶血會影響生化檢驗指標的準確性, 對檢驗結果造成干擾, 可通過正確采集靜脈血標本、嚴格遵循檢驗科工作規范、妥善保存標本、嚴格選用試管和注射器等措施進行預防, 臨床檢驗應注意進行控制。

［1］ 張瑩, 周鐵成, 岳喬紅, 等.探討測量不確定度在臨床生化檢驗中的應用.現代檢驗醫學雜志, 2012, 27(5):92-94.

［2］ 肖寶敏. 標本溶血對臨床檢驗結果的影響. 中國社區醫師(醫學專業), 2011, 13(35):223.

［3］ 朱江艷. 試論標本溶血對生化檢驗結果的影響與對策. 健康必讀(月刊), 2011(11):260.

［4］ 宋菁. 標本溶血對生化檢驗結果的影響與對策. 醫藥前沿, 2014(29):157.

［5］ 張愛華, 肖中華, 王小芳. 紅細胞溶解液部分生化指標結果及其影響. 實驗與檢驗醫學, 2012, 30(4):396-397.

［6］ 任桂梅.標本溶血對生化檢測結果的影響.中外醫學研究, 2011, 9(35):65.

［7］ 冼育成. 淺論血液標本發生溶血對檢驗結果的影響. 當代醫藥論叢, 2016, 14(6):22-24.

［8］ 喻梅. 血液標本溶血對生化各項指標結果的影響探討. 醫藥, 2015(1):188.

［9］ 杜昌存.不同促凝管對生化結果影響的比較.臨床輸血與檢驗, 2012, 14(2):174-175.

［10］ 陳燕, 黃澤玉, 許喆, 等.生化分析儀交叉污染發現和消除方法探索.標記免疫分析與臨床, 2015, 22(3):215-218, 223.

［11］ 龔正.溶血現象對臨床生化檢驗項目的影響及預防措施研究.檢驗醫學與臨床, 2016, 24(3):406-407.

［12］ 張峰.標本溶血在生化檢驗中對結果的影響及對策.吉林醫學, 2013, 34(33):6901-6902.

［13］ 黃妍, 王甜甜, 杜小霞, 等.國家行業標準ALT、AST、ALP、GGT參考區間的驗證試驗.標記免疫分析與臨床, 2014, 21(4): 471-473.

［14］ 盧霞.標本溶血對生化檢驗結果的干擾和影響.臨床合理用藥雜志, 2013, 6(28):109.

Investigation of influence by sample hemolysis on biochemical detection outcomes and its treatment countermeasures

YANG Yong-huai. Department of Laboratory Medicine, Shanwei City People’s Hospital, Shanwei 516600, China

ObjectiveTo investigate influence by sample hemolysis on biochemical detection outcomes and its treatment countermeasures.MethodsFast blood samples were collected from 30 physical examination personnel, and the blood samples of each subject were divided into 2 parts respectively as control group and experimental group, with 30 samples in each group. The control group was taken into centrifugal treatment after natural coagulation, and the experimental group

serum extraction after manual mixing and hemolysis. Detection outcomes of samples were compared between the two groups.ResultsThere was no statistically significant difference of serum uric acid (UA), serum creatinine (Cr), blood urea nitrogen (BUN), and triacylglycerol (TG) levels between the two groups (t=0.059, 0.431, 0.178, 0.352, P＞0.05). The experimental group had lower direct bilirubin (DBIL), total bilirubin (TBIL), and higher creatine kinase (CK), serum total protein (TP), alanine transaminase (ALT), total cholesterol (CHO) than the control group, and the difference between the two groups had statistical significance (t=7.476, 4.692, 2.451, 2.650, 2.926, 2.023, P＜0.05).ConclusionInfluence by sample hemolysis on accuracy of biochemical detection indexes will disturb detection outcomes, and prevention can be made through correct venous blood sample collection, strict detection work standard following, proper sample preservation, and strict test tube and injector selection. Detection requires clinical control.

Biochemical detection; Blood biochemical indexes; Sample hemolysis; Influencing factors; Countermeasures

10.14164/j.cnki.cn11-5581/r.2017.13.019

2017-03-29］

516600 汕尾市人民醫院檢驗科