EvaGreen實時熒光PCR檢測豬繁殖與呼吸綜合征（PRRSV）方法的建立和應用

鄭曉文++饒品彬++蔡曄++楊宗歧++姜永厚

摘要：目前，豬繁殖與呼吸綜合征（PRRS）已成為全球范圍內影響較廣的豬類重要疾病之一，因此建立快速、有效的豬繁殖與呼吸綜合征病毒（PRRSV）檢測技術成為預防和控制PRRS傳播的關鍵。在序列分析的基礎上，設計特異性引物，建立基于熔解曲線分析的EvaGreen實時熒光定量PCR檢測PRRSV方法。該方法能夠特異性擴增PRRSV，并用經熔解曲線分析產生特異性的熔解峰，而非靶標病毒未產生非特異性擴增；PRRSV的檢測靈敏度可達 50 copies/μL；批內、批間重復試驗中變異系數均在2%以內；對118份臨床樣品進行檢測，陽性率為31.4%，與普通PCR檢測結果相符率為100%。結果表明，建立的EvaGreen實時熒光定量PCR檢測PRRSV方法具有較高的特異性、靈敏度和良好的重復性，可用于臨床PRRSV感染的早期診斷及分子流行病學調查。

關鍵詞：豬繁殖與呼吸綜合征病毒（PRRSV）；EvaGreen實時熒光定量PCR；熔解曲線分析；檢測

中圖分類號： S855.3文獻標志碼： A

文章編號：1002-1302（2017）09-0123-04

豬繁殖與呼吸綜合征病毒別稱藍耳病病毒（porcine reproductive and respiratory syndrome virus，簡稱PRRSV），屬動脈炎病毒科動脈炎病毒屬，是一種單股正鏈RNA病毒，全基因組序列約為15 kb，含9個開放閱讀框（ORF），其中ORF1a、ORF1b占整個病毒基因組的80%，ORF1a編碼的非結構蛋白Nsp-2蛋白在病毒復制和致病過程中發揮重要作用，ORF2a、ORF2b、ORFs3～7各自編碼病毒結構蛋白GP2、E、GP3、 GP4、 GP5、M、N[1-3]。PRRSV基因組毒株間具有較大的遺傳變異性，根據PRRSV基因型差異，將PRRSV分為美洲型、歐洲型，兩者序列同源性約為63%[4-5]。

由PRRSV引起的豬繁殖與呼吸綜合征（豬藍耳病）是以仔豬呼吸衰竭和孕豬流產、胎兒畸變、早產、死產及木乃伊胎等繁殖障礙為主要癥狀的傳染病[6]，以高致病率、高死亡率為主要特征，該病于1987年在美國首次被發現，目前遍布世界各個養豬國家[7-8]。1992年世界動物衛生組織（Office International Desepizooties，簡稱OIE）將豬繁殖與呼吸綜合征列為B類動物傳染病，我國將其列為二類動物疫病[9]。我國于1996年首次報道該病，主要為美洲型。2006年，PRRSV的高致病性NA型病毒株（HP-PRRSV）在我國各地養豬業中引起大規模疾病暴發，給我國豬群養殖業帶來了沉重的經濟損失[10-11]。因此，建立及時快速的PRRSV檢測方法，對預防和控制該疫情有重要的作用。

目前用于診斷PRRSV的方法有病毒分離培養、間接免疫熒光試驗（IFA）、酶聯免疫吸附試驗（ELISA）等，這些檢測手段存在耗時長、靈敏度低、對感染早期無法確診等缺點。實時熒光定量PCR（real-time fluorescent quantitative PCR，簡稱real-time PCR）是一種自動化程度高、特異性強、靈敏度好、可以實時監測整個PCR進程的核酸檢測技術，包括熒光雜交探針、熒光染料2類[12]。染料法實時定量PCR省去了設計、標記熒光探針等流程，檢測費用較探針法相對降低，同時適用于各種PCR擴增體系[13-14]。新型飽和染料EvaGreen 具有很強的熒光信號和穩定性，解決了SYBR Green染料重分布等缺點，是一種適用于實時熒光定量PCR的DNA結合熒光染料[15]。本研究擬建立1種基于EvaGreen的PRRSV實時熒光定量PCR檢測方法，應用于豬繁殖與呼吸綜合征的早期診斷，同時也可為豬繁殖與呼吸綜合征的診斷、試劑研發、流行病學研究等奠定基礎。

1材料與方法

1.1試驗材料

1.1.1病毒和臨床樣品PRRSV、豬瘟病毒（classical swine fever virus，簡稱CSFV）及豬圓環病毒2型（porcine circovirus type 2，簡稱PCV2）疫苗株由筆者所在實驗室保存；豬細小病毒（porcine parvovirus，簡稱PPV）疫苗干粉，購自北京中海保健科技有限公司；偽狂犬病病毒（pseudorabies virus，簡稱PRV）、日本腦炎病毒（Japanese encephalitis virus，簡稱JEV）疫苗干粉，購自武漢科前動物生物制品有限公司。收集來自湖北省、福建省、安徽省、廣東省、河南省、浙江省及天津等地豬場的共58份血清樣品和在杭州市內不同豬肉市場收集的共60份包括豬肺、淋巴結、肝、腎等組織樣品。

1.1.2主要試劑及儀器Taq DNA聚合酶、dNTPs、蛋白酶K等，購自Sangon公司；Ezol、RNase A、pMD18-T vector、RNase inhibitor、M-MuLV反轉錄酶、Agarose等，購自TaKaRa公司；EB固體，購自Boehringer Mannheim公司；EvaGreen，購自 Biotum 公司；DNA Gel Extraction Kit，購自Axygen公司。主要儀器：Bio-Rad S1000PCR擴增儀；Tanon 1600凝膠成像分析系統；Nanodrop 2000紫外分光光度計；Fresco 21離心機；ABI 7300熒光PCR儀。

1.2試驗方法

1.2.1引物設計從GenBank下載現有的PRRSV全基因組序列，利用DNAstar軟件進行序列比對后，結合文獻報道，選出PRRSV的特異性保守區域，借助Primer Premier 5.0設計1對引物1，對應擴增產物長度為451 bp，用于構建重組質粒，并在此擴增產物序列范圍內再設計1對用于EvaGreen 實時熒光定量PCR的引物2，對應擴增產物長度為88 bp（表1）。引物由Sangon公司合成。

1.2.2PRRSV重組質粒標準品制備

1.2.2.1PRRSV核酸提取及普通PCR擴增根據RNA提取試劑盒要求進行病毒RNA提取。以提取的RNA為模板，按照反轉錄試劑盒說明將提取產物反轉錄成cDNA；以獲得的cDNA為模板進行PCR反應，在0.2 mL PCR管中依次加入2.5 μL 10× Buffer，2.0 μL 25 mmol/L MgCl2，各0.5 μL上下游引物1，0.5 μL 2.5 mmol/L dNTP，0.3 μL Taq DNA聚合酶（5 U/μL），1.0 μL cDNA（約100 ng），加入ddH2O至總體積為25.0 μL。反應程序：95 ℃ 3 min；94 ℃ 30 s，56 ℃ 30 s，72 ℃ 30 s，30個循環；72 ℃ 10 min。反應結束后，使用DL2000 Marker對PCR產物的目的片段進行1%瓊脂糖凝膠電泳檢測。

1.2.2.2標準品模板構建根據DNA Gel Extraction Kit操作說明書進行產物割膠回收。回收產物參照TaKaRa pMD 18-T Vector試劑盒說明書連接到pMD18-T載體中。將重組質粒轉化到感受態細胞DH5α內，通過氨芐青霉素（Amp+）培養基篩選，提取重組質粒進行PCR鑒定，并將電泳檢測正確的重組質粒委托Sangon公司進行序列測定，將經測序驗證后正確的重組質粒用紫外分光光度計Nanodrop 2000 測定濃度，根據阿弗加德羅常數將濃度轉換為拷貝數，再按10倍梯度進行系列稀釋，制成PRRSV重組質粒標準品。

1.3PRRSV EvaGreen實時熒光定量PCR方法建立

EvaGreen實時熒光PCR反應體系總體積為10 μL，反應體系組成：1.2 μL 25 mmol/L Mg2+，1 μL 10×Buffer，0.8 μL 2.5 mmol/L dNTP Mix，0.5 μL 20×EvaGreen，0.5 U Taq酶，各0.2 μL上下游引物2，1 μL PRRSV重組質粒標準品（模板），加滅菌ddH2O補足體積至10 μL。擴增完成后進行熔解曲線制作過程，擴增程序：95 ℃ 3 min；95 ℃ 15 s，60 ℃ 1 min，40個循環。熔解曲線程序：95 ℃ 15 s，60 ℃ 1 min，95 ℃ 15 s，60 ℃開始收集熒光信號，制作熔解曲線。

1.4PRRSV EvaGreen實時熒光定量PCR方法評價

1.4.1特異性試驗按照EvaGreen實時熒光PCR反應體系配制7份試劑，1份加入1 μL PRRSV的cDNA（約100 ng）作為模板，其余6份為對照組，模板中分別加入其他5種豬病毒，包括CSFV、PCV2、PPV、PRV和JEV的DNA/cDNA 1 μL（約100 ng），另1份加入1 μL ddH2O為陰性對照，按實時熒光定量PCR反應程序擴增，驗證其特異性。

1.4.2靈敏度試驗將PRRSV標準品質粒進行10倍梯度系列濃度稀釋，進行EvaGreen實時熒光定量PCR反應。通過能夠檢測出陽性結果的最高稀釋度的拷貝數，確定PRRSV在EvaGreen實時熒光定量PCR中的靈敏度。

1.4.3重復性試驗選用同一次制備的PRRSV的3個濃度梯度（104、103、102 copies/μL）的質粒標準品分別進行批內、批間重復試驗。批內重復試驗是將每個濃度在同一次EvaGreen實時熒光中重復3次；批間重復試驗是在3個不同時間段進行試驗，對3個濃度梯度標準品進行EvaGreen實時熒光PCR反應。

1.5臨床樣品檢測

對118份臨床樣品分別進行EvaGreen實時熒光定量PCR、常規PCR檢測，比較其檢測結果。

2結果與分析

2.1重組質粒標準品的制備

PRRSV疫苗經總RNA提取、反轉錄和PCR擴增，將產物克隆至pMD18-T載體；以獲得的重組質粒為模板，用構建病毒標準品的引物（表1）進行普通PCR擴增，經凝膠電泳檢測分析得到條帶大小為451 bp，與預期目的片段大小相符（圖1）。對含PRRSV目的片段的重組質粒測序后，經BLAST在線比對分析，表明該克隆插入的DNA序列確實為PRRSV部分核酸序列，表明PRRSV重組質粒構建成功。

2.2PRRSV EvaGreen實時熒光PCR特異性

應用構建好的EvaGreen實時熒光定量PCR反應體系，用PRRSV熒光引物2（表1）同時對PRRSV核酸、非靶病毒核酸（CSFV、PCV2、PPV、PRV、JEV）和ddH2O進行實時熒光PCR擴增，發現PRRSV的引物2只能特異性擴增PRRSV核酸，呈現特異熔解峰，其熔解峰值對應Tm為81.1 ℃，而對其他非目標病毒及ddH2O均不能擴增（圖2），表明建立的檢測方法具有較好的特異性。

2.3PRRSV實時熒光PCR標準曲線和檢測靈敏度

將PRRSV重組質粒稀釋成系列濃度標準品（106、105、104、103、102 copies/μL）進行實時熒光PCR反應，對實時熒光PCR反應條件進行優化，建立檢測PRRSV的PCR標準曲線及相應擴增曲線（圖3），可以看出其中標準品濃度在100～106 copies/μL內有良好線性關系，其中擴增效率為98.7%（R2>0.99）。PRRSV系列濃度梯度標準品在實時熒光PCR體系中，所能檢測到的最高稀釋度的標準品，即能夠產生相應特異熔解峰的最低拷貝數模板即為相應靈敏度。PRRSV標準品（50～106 copies/μL）為模板時熔解曲線均有明顯目的峰產生，25 copies/μL時無目的峰，表明PRRSV重組質粒靈敏度可達50 copies/μL。

2.4PRRSV EvaGreen實時熒光定量PCR重復性

PRRSV在EvaGreen實時熒光PCR中（104、103、102 copies/μL）3個濃度循環閾值Ct重復性檢測（表2）。其批間重復變異系數分別為0.40%、1.32%、1.68%，批內重復變異系數分別為0.37%、0.93%、0.93%；2種重復試驗中的變異系數均小于2%，表明重復性良好。

2.5臨床樣品檢測

應用本研究所建立的PRRSV EvaGreen 實時熒光定量PCR方法、常規PCR方法同時對118份臨床樣品進行PRRSV檢測，結果表明，用實時熒光定量PCR方法共檢測出37份PRRSV陽性樣品（20份陽性血清樣品、17份陽性組織樣品），陽性率為31.4%，與普通PCR方法檢測結果完全一致。

3討論與結論

自2006年，高致病性PRRSV在中國南方部分地區豬場暴發，并逐漸蔓延擴散到北方各地區，給養豬業帶來了巨大的經濟損失。豬繁殖與呼吸綜合征潛伏期短，從感染到出現病癥間隔大約為3～37 d，不同年齡、品種的豬均可感染，具有傳播速度快、發病率高、病死率高的特征，屬于一旦發現必須向世界動物衛生組織通報的烈性傳染病。PRRSV常與偽狂犬病病毒、豬圓環病毒Ⅱ型、日本腦炎病毒、豬瘟病毒及豬細小病毒等病毒混合感染，在臨床上常呈現出相似的病狀，增加了臨床診斷的難度。因此，建立一種能夠快速、有效、準確地早期檢測方法在PRRS的防控上具有重要意義。

本研究構建的PRRSV EvaGreen 實時熒光定量PCR方法在特異性、重復性及靈敏度等方面都取得了比較理想的效果。本試驗得到直線性較好的標準曲線，其擴增效率達到了 98.7%，說明PRRSV在EvaGreen實時熒光PCR中得到較好的擴增效果，而引物只能擴增相應的靶序列說明該方法具有較好的特異性。此外，EvaGreen實時熒光定量PCR也呈現了較高的靈敏度。PRRSV的檢測極限可達到50 copies/μL，較Shin等建立的PRRSV定量PCR方法檢測極限 100 copies/μL[16]的靈敏度要好。吳憶春建立的PRRSV SYBR Green Ⅰ實時熒光PCR靈敏度達到13 copies/μL[17]，稍高于本試驗的靈敏度，但本研究所使用的EvaGreen是種新型熒光染料，其原理與SYBR Green Ⅰ相同，實際操作中對PCR擴增的抑制作用更小，且不容易產生非特異性擴增[18]。而較高濃度的EvaGreen亦能消除SYBR Green Ⅰ溶解曲線中常見的“染料重分布”的缺陷，并具備更強的熒光信號及穩定性，尤其適于開發多重PCR檢測技術[15]。吳海港等建立的TaqMan 探針熒光定量PCR檢測PRRSV的靈敏度達到 5 copies/μL[19]，但TaqMan探針的成本較高，須要設計相應的探針，且容易受探針結合位點序列突變的影響導致假陰性結果[20]，而EvaGreen染料實時熒光PCR相對簡單，只須設計目的引物，更適用于PRRSV的基礎研究及流行病學調查。

在臨床樣品檢測中，對118份臨床樣品（收集自湖北省等地豬場的共58份血清樣品和杭州市內不同豬肉市場的共60份組織樣品）進行PRRSV檢測，其中用實時熒光定量PCR方法共檢測出37份PRRSV陽性樣品，陽性率為31.4%，與普通PCR方法檢測結果符合率為100%。血清樣品中PRRSV的陽性檢出率為34.5%，稍高于組織樣品中PRRSV的陽性檢出率28.3%，檢測結果與李蕾對2010年全國10個省1 375份和2011年12個省1 707份生豬屠宰場組織樣品利用普通PCR進行檢測得出的28.7%、16.75% PRRSV陽性率相類似[21]。而韓慶安等采用逆轉錄PCR（RT-PCR）方法對河北不同地區收集的2 159份商品豬的肺臟或肺門淋巴結進行PRRSV檢測，結果表明，PRRSV樣品陽性率為1190%[22]；范仲鑫等用RT-PCR方法對采自湖南地區不同屠宰場的50份豬肺門淋巴結進行PRRSV的檢測，結果表明，陽性率為16%[23]；刁有祥等應用PCR方法對125份臨床健康豬肺臟進行PRRSV檢測，結果表明有12份PRRSV陽性樣品，陽性率為9.6%[24]，均低于本研究中的PRRSV檢出率。以上結果表明，PRRSV在豬體內不同組織器官中分布不同，且不同地域的流行率也存在差異，可能由于樣品收集橫跨多個省（市、區），不同地區飼養模式及感染情況不同。這些結果還表明，PRRSV在我國豬群中相當流行，是養豬業健康發展的一大潛在危險，應當引起足夠的重視，加強對PRRSV的防御和控制，規范養豬業和科學合理用藥。

本研究采用新型飽和染料EvaGreen成功建立了PRRSV熒光定量PCR檢測方法，具有快速、準確、簡便等優點，為PRRSV早期診斷、流行病學調查及其防控措施研究提供了技術支持。

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