海南黎藥膽木PsbA—trnH—PCR體系的建立與優化

楊衛麗　高新征　鄒園生　姚瑰瑋　黃靜　王勇

摘 要 為了建立適合黎藥膽木的PsbA-trnH-PCR體系來研究不同地理居群膽木遺傳多樣性，本研究以植物基因組試劑盒法提取膽木基因組DNA為模板，采用單因素實驗和正交試驗對PsbA-trnH-PCR過程中的關鍵影響因素進行優化，并對PsbA-trnH-PCR產物進行測序鑒定。結果表明，最佳PsbA-trnH-PCR反應體系（25 μL）為：Taq酶1.0 U，dNTPs 0.4 mmol/L，Mg2+ 0.75 mmol/L，引物0.15 μmol/L，模板20 ng，10×PCR Buffer（不含Mg2+）2.5 μL；采用該最佳體系對膽木基因組DNA進行PCR擴增，獲得擴增產物，經單向測序獲得了膽木PsbA-trnH部分序列；并建立了穩定的PsbA-trnH-PCR體系，為膽木的藥材鑒別及其遺傳多樣性研究奠定了基礎。

關鍵詞 膽木；PsbA-trnH-PCR；優化系統；正交設計

中圖分類號 R284.1 文獻標識碼 A

Abstract The study intended to establish a PsbA-trnH-PCR system and provide technical support to study the genetic diversity of Li Nationality medicine Nauclea officinalis Pierre ex Pitard in different geographical populations. High quality genomic DNA of N. officinalis Pierre ex Pitard was extracted by the plant genome kit method. The main factors in the process of PsbA-trnH-PCR were optimized by single factor and orthogonal design experiments， and PsbA-trnH-PCR products were sequenced. The results showed that the optimal PsbA-trnH-PCR reaction system（25 μL）was Taq DNA polymerase 1.0 U， dNTPs 0.4 mmol/L， Mg2+ 0.75 mmol/L， primers 0.15 μmol/L， template DNA 10 ng， 10×PCR Buffer（free Mg2+）2.5 μL. The genomic DNA of N. officinalis was amplified using the optimal PsbA-trnH-PCR system to obtain the amplification products， which were sequenced to obtain PsbA-trnH partial sequences. The stable PsbA-trnH-PCR system was established， and can be used in the identification and genetic diversity of for the study of N. officinalis.

Key words Nauclea officinalis Pierre ex Pitard； PsbA-trnH-PCR； optimization of system； orthogonal design

doi 10.3969/j.issn.1000-2561.2017.07.020

膽木（Nauclea officinalis Pierre ex Pitard）為茜草科烏檀屬植物，入藥部位是其干燥莖枝及皮，味苦、寒，具有清熱解毒、消腫止痛之功效，我國廣西、廣東和海南民間常用于治療感冒發熱、肺炎、腸炎、痢疾、濕疹、皮疹和膿瘍等疾病，外用治療癰癤膿腫[1]。膽木也是一味黎族同胞常用植物藥，收載于《黎藥學概論》[2]。

2009年，生命條形碼聯盟植物工作組已經決定將葉綠體psbA-trnH基因片段作為植物DNA條形碼鑒別的補充條碼[3]，其在種間及種下居群間具有進化速率快、變異程度高和區分物種能力較強的特點，適用于藥用植物與其近緣種類等較低分類階元的分子鑒定[4-7]，在眾多科屬中具有較高的鑒定效率[8-11]，本課題組于前期研究中也驗證了該序列較其他推薦序列在藥用植物膽木中有較好的鑒別效果。查閱文獻可知，目前有關膽木的研究主要集中在成分[12]以及藥理方面[13]，在種質研究方面僅見膽木種苗栽培、組織培養[14]和生藥學的相關研究[15]。本研究主要是優化和建立了膽木PsbA-trnH-PCR體系，為進一步研究膽木種質資源遺傳多樣性及膽木藥材鑒別研究奠定基礎。

1 材料與方法

1.1 材料

1.1.1 樣品采集 采集海南不同產地的膽木新鮮葉片，立即用硅膠干燥，用于提取基因組DNA。

1.1.2 試劑 植物基因組DNA提取試劑盒、dNTPs、Taq酶、Mg2+、DL 2000均為天根產品；西班牙瓊脂糖；β-巰基乙醇為成都格雷西亞化學技術有限公司產品；GelRed為Biotium公司產品；引物為華大基因合成。

1.1.3 儀器 手提式高壓滅菌器（YX-380D-Ⅰ；華泰）、臺式高速冷凍離心機（SIGMA；1-14）、核酸蛋白測定儀（Eppendorf；Biophotometer-puls）、PCR儀[博日；TC-96/T/H（a）]、電泳儀（北京六一；DYY-6D）、凝膠成像系統（Tanon；4100）。

1.2 方法

1.2.1 膽木基因組DNA 依據天根植物基因組DNA試劑盒說明書進行，具體方法如下：（1）取植物新鮮組織200 mg，使用70%乙醇擦洗表面后，加入液氮充分碾磨。（2）取研磨好的粉末100 mg迅速轉移到預先裝有700 μL 65 ℃預熱緩沖液GP1的離心管中（試驗前在預熱的GP1中加入β-琉基乙醇，使其終濃度為0.1%），迅速顛倒混勻后，將離心管放在65 ℃水浴60 min，水浴過程中顛倒離心管以混合樣本數次。（3）加入700 μL氯仿 ∶ 異戊醇（24 ∶ 1），充分混勻，12 000 r/min離心5 min。（4）小心地將上一步所得的上層水相轉入一個新的離心管中，加入700 μL緩沖液GP2，充分混勻。（5）將混勻的液體轉入吸附柱中，12 000 r/min離心30 s，棄掉廢液。（6）向吸附柱中加入500 μL緩沖液GD，12 000 r/min離心30 s，棄掉廢液，將吸附柱放入收集管中。（7）向吸附柱中加入700 μL漂洗液，12 000 r/min離心30 s，棄掉廢液。（8）向吸附柱中加入700 μL漂洗液，12 000 r/min離心30 s，棄掉廢液。（9）將吸附柱放回收集管中，12 000 r/min離心2 min，倒掉廢液。將吸附柱置于室溫放置5 min，以徹底晾干吸附材料中殘余的漂洗液（漂洗液中乙醇的殘留會影響后續的酶反應試驗）。（10）將吸附柱轉入一個干凈的離心管中，向吸附膜的中間部位懸空滴加100 μL洗脫緩沖液，室溫放置5 min，12 000 r/min離心2 min，將溶液收集到離心管中。

最終取所得膽木基因組DNA樣品5 μL于0.8%瓊脂糖凝膠中電泳30 min，電泳結果用凝膠成像系統觀察并照相保存，同時用核酸蛋白分析儀分別于260 nm和280 nm波長下測定膽木DNA樣品（稀釋50倍）的吸收值，根據核酸蛋白分析儀測得A260/A280的值來判斷DNA純度，同時計算DNA產量。DNA量=A260×稀釋倍數（即×50）×DNA總體積，μg。

1.2.2 引物設計 以提取得到的膽木基因DNA為模板，PsbA-trnH為引物，分別為正向引物5′-GTTATGCATGAACGTAATGCTC-3′及反向引物5′-CGCGCATGGTGGATTCACAATCC-3′。

1.2.3 PCR擴增條件的正交設計 對影響膽木PsbA-trnH-PCR擴增體系的引物、DNA模板、Taq 酶、dNTPs、Mg2+共5個因素4個水平進行了考察（表1），按照L16（45）正交試驗表設計試驗。10×PCR Buffer統一添加2.5 μL，每個實驗組合按表2用量添加，最后補足ddH2O至25 μL，進行PCR擴增。取5 μL PCR擴增產物經0.8%的瓊脂糖凝膠電泳25 min，凝膠成像系統觀察電泳結果并拍照。

1.2.4 PsbA-trnH-PCR擴增退火溫度考察 采用單因素方法考察退火溫度，設置4個退火溫度分別為45、50、55、60 ℃，其他因素加入量以正交試驗確定最佳PsbA-trnH-PCR實驗反應體系為準，取5 μL不同溫度PCR擴增產物經0.8%的瓊脂糖凝膠電泳25 min，凝膠成像系統觀察電泳結果并拍照。

1.2.5 膽木基因組DNA的PsbA-trnH-PCR擴增

采用正交試驗確定的最佳PsbA-trnH-PCR擴增體系，然后以膽木樣品提取所得基因組DNA為模板進行PCR擴增。取擴增產物5 μL經0.8%的瓊脂糖凝膠電泳25 min，凝膠成像系統觀察電泳結果并拍照。

2 結果與分析

2.1 膽木樣品基因組DNA提取結果

由圖1和表3可知，提取所得的膽木基因組DNA條帶明亮整齊，未見明顯降解。由此可以確定提取的膽木基因組DNA可用于進行下一步PCR擴增實驗。

2.2 PCR擴增條件的確定

根據電泳條帶有無、是否清晰明亮、是否存在非特異性擴增條帶等作為依據，確定PsbA-trnH-PCR正交設計試驗最佳反應體系。由圖2可知，PsbA-trnH-PCR 擴增獲得16個產物，其電泳結果為：編號為7、12、14的體系擴增結果不理想，其條帶不明顯或無條帶；編號為3、4、8、9、10、11、15、16 的體系可擴增出目標產物，但其非特異性擴增條帶較多；編號為1、2、5、6、13 的體系擴增效果較好，目標產物條帶清晰，條帶之間區分度較好。根據以上分析，初步確定PsbA-trnH-PCR正交設計試驗最佳反應體系為編號5，即：模板DNA 20 ng，引物0.15 μmol/L，Taq酶1.0 U，Mg2+ 0.75 mmol/L，dNTPs 0.4 mmol/L，不含Mg2+ 的10×PCR Buffer 2.5 μL，滅菌ddH2O補足至總體積25 μL。

2.3 膽木PsbA-trnH-PCR退火溫度優化

考察了45、50、55、60 ℃ 4個退火溫度對PsbA-trnH-PCR體系影響，由圖3可知，4個退火溫度均可擴增出目標產物，60 ℃擴增產物較少，效果不理想，因55 ℃擴增效果最佳，最終確定PsbA-trnH-PCR退火溫度為55 ℃。

2.4 膽木的PsbA-trnH-PCR擴增產物分析

根據最優PsbA-trnH-PCR擴增體系擴增而得的產物經測序獲得了PsbA-trnH部分序列，其序列長為287 bp，將該序列導入NCBI數據庫并進行同源檢測，與該數據庫中已有膽木PsbA-trnH序列（KP095461.1）進行了相似度考察，其相似度達100%。由此可見，以上確定的PsbA-trnH-PCR擴增體系可準確地擴增出膽木PsbA-trnH序列。本實驗結果為今后利用膽木PsbA-trnH序列來研究膽木種質資源的遺傳多樣性及藥材鑒別奠定了基礎。

3 討論

相關研究發現PsbA-trnH序列在植物中進化速率較快，長度適宜，兩端存在保守序列，容易設計通用引物，且該片段的引物具有高通用性、高擴增成功率等特點，適用于藥用植物及其近緣種類等較低分類階元的分子鑒定[16]。該片段已廣泛地被應用于中藥鑒定[17-18]。

目前，關于黎藥膽木遺傳多樣性研究及PsbA-trnH-PCR體系的相關影響因素優化研究尚未見報道；因此，適當調整PCR擴增的主要參數，從而保證膽木PsbA-trnH-PCR擴增結果的穩定性、重復性和可靠性是非常有必要的。本實驗采用單因素試驗和正交設計方法優化膽木PsbA-trnH-PCR體系，實驗結果證實，引物、Mg2+和模板DNA用量Taq酶、dNTPs等均能影響PsbA-trnH-PCR的擴增結果，退火溫度對PsbA-trnH-PCR擴增結果影響較小。其中，Taq酶量、引物和Mg2+濃度三者對PsbA-trnH-PCR擴增結果影響較大，濃度過低會導致PCR擴增產物量減少，濃度過高會使PCR擴增產物出現非特異性擴增，從而影響后續測序的準確性。由正交試驗設計優化獲得PCR擴增反應體系為：DNA模板20 ng，引物0.15 μmol/L，Taq酶1.0 U，dNTPs 0.4 mmol/L，Mg2+ 0.75 mmol/L，不含Mg2+的10×PCR Buffer 2.5 μL，滅菌ddH2O補足至總體積為25 μL。

研究結果表明，可采用單因素試驗和正交設計優化膽木PsbA-trnH-PCR反應體系，建立可用于膽木PsbA-trnH-PCR擴增的最佳反應體系。利用該最佳反應體系已成功擴增出膽木的葉綠體部分序列，為今后研究膽木遺傳多樣性及其藥材的鑒定研究奠定了堅實的基礎。

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