高效液相色譜法測定四角蛤蜊、菲律賓蛤仔中呈味核苷酸

張倩，劉睿,3，王欣之,3，程建明,3，張文英，杜俊潮，吳皓,3*

1(南京中醫藥大學 藥學院，江蘇 南京，210023) 2(江蘇省海洋藥用生物資源研究與開發重點實驗室，江蘇 南京，210023) 3(江蘇省中藥資源產業化過程協同創新中心，江蘇 南京，210023)

高效液相色譜法測定四角蛤蜊、菲律賓蛤仔中呈味核苷酸

張倩1,2，劉睿1,2,3，王欣之1,2,3，程建明1,2,3，張文英1,2，杜俊潮1,2，吳皓1,2,3*

1(南京中醫藥大學 藥學院，江蘇 南京，210023) 2(江蘇省海洋藥用生物資源研究與開發重點實驗室，江蘇 南京，210023) 3(江蘇省中藥資源產業化過程協同創新中心，江蘇 南京，210023)

建立高效液相色譜法(high performance liquid chromatography，HPLC)同時測定四角蛤蜊、菲律賓蛤仔中呈味核苷酸5’-尿苷酸(5’-UMP)、5’-鳥苷酸(5’-GMP)、5’-肌苷酸(5’-IMP)和5’-腺苷酸(5’-AMP)含量。采用Waters Atlantis T3(4.6 mm×250 mm,3 μm)色譜柱，以0.01 mol/L KH2PO4溶液-甲醇為流動相梯度洗脫，紫外檢測器在260 nm處進行檢測，外標法進行定量。結果表明：各呈味核苷酸線性關系良好，相關系數R2均為0.999 9，回收率在96.19%～103.25%內，相對標準偏差在1.08%～1.28%內。四角蛤蜊與菲律賓蛤仔中均含有4種呈味核苷酸，其中5’-AMP含量最多，其次是5’-IMP和5’-UMP，而5’-GMP含量最低。該方法簡單，重現性好、靈敏度和準確度高，適用于四角蛤蜊、菲律賓蛤仔中呈味核苷酸含量測定，為研究貝類風味及貝類食品的開發提供一定的依據。

高效液相色譜法(high performance liquid chromatography，HPLC)；四角蛤蜊；菲律賓蛤仔；呈味核苷酸

四角蛤蜊(MactraveneriformisReeve)、菲律賓蛤仔(Ruditapesphilippinarum)是江蘇沿海地區重要的經濟貝類[1]，營養豐富，肉質鮮美。核苷酸是機體體內重要的極性小分子化合物，其中5’-UMP，5’-GMP，5’-IMP，5’-AMP等核苷酸成分具有明顯的呈鮮特點[2]，極大程度上影響著貝類的口感及鮮度。

目前，呈味核苷酸的含量測定方法有分光光度法[3]、高效液相色譜法[4-6]、高效毛細管電泳法[7]及離子交換色譜法[8]等。國內外對肉類、水產品等食用產品中核苷酸進行了大量的研究[9-10]，而對江蘇沿海低值貝類中呈味核苷酸的研究相對較少，本實驗采用高效液相色譜法對江蘇沿海低值貝類四角蛤蜊、菲律賓蛤仔中4種呈味核苷酸進行分析測定，為食用貝類的風味研究及貝類食品的開發提供依據。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

四角蛤蜊、菲律賓蛤仔(江蘇省海洋水產研究所，批號為20150714、20150920，經江蘇省海洋水產研究所萬夕和研究員鑒定為蛤蜊科動物四角蛤蜊MactraveneriformisReeve，簾蛤科動物菲律賓蛤仔Ruditapesphilippinarum)；5’-尿苷酸(5’-UMP)、5’-鳥苷酸(5’-GMP)、5’-肌苷酸(5’-IMP)’5’-腺苷酸(5’-AMP)(純度≥99%，美國Sigma-Aldrich公司)；甲醇(色譜純)，德國默克公司；KH2PO4(分析純)，國藥集團化學試劑公司；水為超純水。

1.2 儀器與設備

Waters 2695高效液相色譜儀，Waters 2489 UV檢測器(美國Waters公司)；3-16pk高速離心機(美國Sigma-Aldrich公司)；UNIQUE-s15超純水機(美國Millipore公司)；BT-125D型電子分析天平(德國Sartorius公司)

1.3 實驗方法

1.3.1 混合對照品溶液的制備

分別稱取5’-UMP，5’-GMP，5’-IMP，5’-AMP，精密稱定，加水制成質量濃度為1.0 mg/mL對照品儲備液。將5’-UMP，5’-GMP，5’-IMP配制成質量濃度為0.2、1.0、5.0、10.0、20.0、40.0 μg/mL的系列標準溶液；5’-AMP配制成2.5、5.0、10.0、20.0、40.0、80.0 μg/mL的系列標準溶液。

1.3.2 供試品溶液的制備

取四角蛤蜊、菲律賓蛤仔新鮮軟體適量，稱量，加入3倍質量水煎煮，每次45 min，煎煮2次，將濾液濃縮至軟體質量的1/3，100 00 r/min離心10 min，去沉淀，得上清液，加乙醇調節體積分數至80%，靜置12 h，抽濾，濾液減壓回收乙醇至無醇味，得水提醇沉上清液，超純水定容，過0.45 μm濾膜過濾，高效液相色譜儀進行測定。

1.3.3 HPLC分析條件

色譜柱：Waters T3色譜柱(4.6 mm×150 mm, 3 μm)；流動相A相為甲醇，B相為0.01 mol/L KH2PO4，梯度洗脫(0～10 min，1%～3% A；10～20 min，3%～20% A；20～25 min，20%～25% A；)流速為0.4 mL/min，檢測波長：260 nm，進樣體積：10 μL。

1.4 數據處理

將核苷酸混合標準品溶液和樣品溶液注入高效液相色譜儀中，以每個標準品的保留時間定性，以外標法定量。

2 結果與分析

2.1 HPLC條件的考察

2.1.1 色譜柱的考察

呈味核苷酸是極性大的小分子化合物，在一般的C18色譜柱上不易保留，分別考察了Waters XBridgeTMHILIC色譜柱、Phenomenex Luna C18(2) 色譜柱、Waters Atlantis T3色譜柱對4種呈味核苷酸的分離效果，結果見圖1。

圖1 Waters HILIC(a)、Phenomenex Luna C18(b)、Waters Atlantis T3色譜柱(c)對呈味核苷酸的分離效果圖Fig.1 Separation schematic diagram of flavor nucleotides on Waters HILIC, Phenomenex Luna C18, Waters Atlantis T3

結果顯示T3色譜柱對核苷酸的保留能力明顯強于HILIC色譜柱與Phenomenex Luna C18(2) 色譜柱，且5’-GMP與5’-IMP達到分離度要求，故選擇Waters Atlantis T3色譜柱作為分離呈味核苷酸的色譜柱。

2.1.2 流動相種類的考察

核苷酸類成分在色譜柱的分離中易發生拖尾現象，原因是色譜柱上固定相與核苷酸之間產生氫鍵作用，產生拖尾現象[11]。分別選用了磷酸、乙酸及磷酸緩沖鹽進行實驗(見圖2)，發現在乙酸條件下，5’-GMP與5’-IMP部分重疊且每個峰有拖尾現象。在磷酸條件下，拖尾現象有所改善但5’-GMP與5’-IMP仍沒達到分離要求。而使用KH2PO4磷酸二氫鉀作為流動相，能將4種呈味核苷酸達到基線分離的效果，且能抑制拖尾現象，故選擇磷酸二氫鉀作為流動相。

圖2 不同流動相條件下呈味核苷酸的分離效果圖Fig.2 Separation schematic diagram of flavor nucleotides in different mobile phase conditions

2.1.3 緩沖鹽濃度的考察

針對緩沖KH2PO4的濃度進一步考察，分別選用0.01、0.02、0.05 mol/L進行實驗(見圖3)，結果表明隨著緩沖鹽濃度的上升，每個物質的保留時間逐漸減小，而對分離效果的影響不大。高濃度的緩沖鹽溶液對色譜柱及色譜儀有一定的危害，故在達到核苷酸分離效果的前提下，選擇低濃度0.01 mol/L的KH2PO4。

圖3 緩沖鹽濃度對呈味核苷酸分離的影響Fig.3 Chromatogram of effect of buffer concentration on the separation of flavor nucleotides

2.2 方法學考察

2.2.1 專屬性考察

在色譜條件下，混合對照品溶液與四角蛤蜊、菲律賓蛤仔供試品溶液的色譜圖見圖4，樣品中4種呈味核苷酸均達到基線分離。

2.2.2 線性關系考察

分別將質量濃度為0.2、1.0、5.0、10.0、20.0、40.0 μg/mL的5’-UMP，5’-GMP，5’-IMP系列標準溶液；2.5、5.0、10.0、20.0、40.0、80.0 μg/mL的5’-AMP系列標準溶液，按照上述色譜條件取10 μL注入高效液相色譜儀，以峰面積Y對核苷酸濃度X進行回歸計算，繪制標準曲線，回歸方程見表1。

圖4 呈味核苷酸對照品(標樣)及樣品(A四角蛤蜊、B菲律賓蛤仔)色譜圖Fig. 4 HPLC chromatogram of flavor nucleotides(Std) and samples(A,B)

表1 4種呈味核苷酸的線性關系和線性范圍

2.2.3 精密度考察

取“1.3.2”項下的供試品溶液，將同一份樣品在色譜條件下平行測定6次，樣品中5’-UMP，5’-GMP，5’-IMP，5’-AMP經過測定后，相對的標準偏差分別是0.31%、0.37%、0.39%、0.42%，符合精密度要求。

2.2.4 重復性與穩定性考察

取四角蛤蜊(批號20150714)、菲律賓蛤仔(批號20150920) 100g，按供試品溶液制備方法平行制備6份，按1.2.3色譜條件下進樣分析，測定相應峰面積，計算RSD。結果表明5’-UMP，5’-GMP，5’-IMP，5’-AMP的RSD為2.30%、2.22%、1.98%、1.92%，表明該方法的重復性良好。

對樣品中核苷酸的穩定性進行考察，分別考察0、2、4、8、12、24 h的峰面積，結果表明5’-UMP，5’-GMP，5’-IMP，5’-AMP的RSD為1.72%、2.25%、1.89%、1.51%，表明四角蛤蜊、菲律賓蛤仔中4種核苷酸在24 h內穩定。

2.2.5 加樣回收率考察

取2.2.4中的四角蛤蜊(批號20150714)共6份，根據標準曲線得到各核苷酸含量，分別加入等量的混合對照品，密塞，搖勻，按照1.3.2供試品溶液制備方法進行處理，在1.3.3色譜條件進樣，平行3次，結果見表2。結果顯示，5’-UMP，5’-GMP，5’-IMP，5’-AMP的平均加樣回收率在96.19%～103.25%，相對標準偏差在1.08%～1.28%之間，表明該測定方法的準確度符合要求，研究方法可靠。

表2 樣品中呈味核苷酸的回收率(n=6)

2.3 樣品中呈味核苷酸的測定

取四角蛤蜊與菲律賓蛤仔適量，按照1.3.2供試品溶液制備方法進行處理，在1.3.3色譜條件進樣，平行3次，結果見表3。由表3可知，四角蛤蜊與菲律賓蛤仔中均含有4種呈味核苷酸，且5’-UMP，5’-IMP及5’-AMP均含量相似，而5’-GMP在這兩種貝類中含量差異明顯(P<0.05)。在四角蛤蜊與菲律賓蛤仔中，5’-AMP的含量明顯高于其他呈味核苷酸，而5’-GMP的含量最低。

味道強度值(taste activity value, TAV)=滋味物質的含量/該滋味物質的閾值。當呈味物質的TAV值大于1時，說明該呈味物質對滋味有貢獻，其值越大表明貢獻越大，反之則對味道貢獻不大[12]。結果表明四角蛤蜊與菲律賓蛤仔中鮮味的來源主要是5’-AMP，其次是5’-IMP和5’-GMP。

表3 四角蛤蜊、菲律賓蛤仔中4種呈味核苷酸的含量及呈味強度值

注：同一行中字母相同表示均值間差異不顯著(P>0.05)，字母不同則表示差異顯著(P<0.05)。

3 討論

本文建立了高效液相色譜法同時測定四角蛤蜊、菲律賓蛤仔中呈味核苷酸含量的方法，該方法快速簡便，重現性、準確性良好，可應用于江蘇低值貝類四角蛤蜊、菲律賓蛤仔中核苷酸的含量測定。測定結果表明四角蛤蜊、菲律賓蛤仔中均含有4種呈味核苷酸 (見表3)，其中5’-AMP含量最多，其次是5’-IMP和5’-UMP，5’-GMP含量相對較低。

在呈味強度上，5’-AMP是提供四角蛤蜊與菲律賓蛤仔鮮味的主要來源，其次是5’-IMP和 5’-GMP，這與四角蛤蜊、菲律賓蛤仔作為鮮食貝類密切相關。造成不同呈味核苷酸含量和鮮味的差異可能與貝類攝食的藻類，海洋的環境及采收期等有關，后續將開展不同產地及采收期的貝類中核苷酸動態變化規律研究，為貝類食品或保健品開發提供依據。

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Determination of flavor nucleotides inMactraveneriformisandRuditapesphilippinarumby high performance liquid chromatography

ZHANG Qian1,2,LIU Rui1,2,3,WANG Xin-zhi1,2,3,CHENG Jian-ming1,2,3, ZHANG Wen-ying1,2,DU Jun-chao1,2,WU Hao1,2,3*

1(College of Pharmacology, Nanjing University of Chinese Medicine, Nanjing 210023, China) 2(Jiangsu Key Laboratory of Research and Development in Marine Bio-resource Pharmaceutics, Nanjing 210023, China) 3(Jiangsu Collaborative Innovation Center of Chinese Medicinal Resources Industrialization, Nanjing 210023, China)

A method was established for determination of flavor nucleotides inMactraveneriformisandRuditapesphilippinarumby high performance liquid chromatography. Methods: Separation and quantization were perfored by using a Waters Atlantis T3 column, with 0.01 mol/L KH2PO4- methanol as the mobile phase in gradient elution. The detection wavelength was 260 nm. Results: The external standard calibration curves were used for quantization. A good linear correlations for flavor nucleotide was shown withR2>0.999 9. The average spike recovery of flavor nucleotides was 96.19%-103.25%, with relative standard deviations of 96.19%-103.25%. Conclusion: The method is simple, with good reproducibility, sensitivity and high accuracy. It is suitable for determining flavor nucleotides inMactraveneriformisandRuditapesphilippinarum. The method provideds a basis for the research of shellfish flavor and the development of shellfish food.

high performance liquid chromatography(HPLC);Mactraveneriformis;Ruditapesphilippinarum; flavor nucleotides

10.13995/j.cnki.11-1802/ts.201703039

碩士研究生(吳皓教授為通訊作者，E-mail：whao5795@vip.sina.com)。

國家公益性海洋行業專項基金(201305007，201405017)；國家高技術研究發展計劃(863計劃，2013AA093003)；江蘇省高校優勢學科建設工程項目(PAPD)；江蘇省青藍工程；江蘇省“333”工程

2016-05-27，改回日期：2016-08-15