雞傳染性支氣管炎病毒重組N蛋白克隆表達與免疫原性檢測

李 敏，李俐睿，岳建國，周立新，黃 勇

（1.成都市動物疫病預防控制中心，四川 成都 610041；2.四川農業(yè)大學，四川 溫江 611130）

雞傳染性支氣管炎病毒重組N蛋白克隆表達與免疫原性檢測

李 敏1，李俐睿1，岳建國1，周立新1，黃 勇2

（1.成都市動物疫病預防控制中心，四川 成都 610041；2.四川農業(yè)大學，四川 溫江 611130）

本文以IBV N蛋白為研究對象，首先從雞胚培養(yǎng)的IBV ZY3毒株尿囊液中提取基因組RNA，然后利用軟件對其N蛋白抗原表位進行預測分析，設計一對特異性引物對免疫原性好、親水性強、表位可能性大的保守片段進行擴增，片段大小為818bp；將擴增產物與表達載體pET-32a（+）連接并轉入大腸桿菌BL21中誘導表達，用SDS-PAGE檢測表達的重組N蛋白大小為50kDa；用Ni-NTA Superflow純化重組N蛋白后，采用抗雞IBV血清與之進行Western blot反應，檢測其免疫原性，結果顯示重組蛋白免疫原性良好。該結果對進一步研究IBV N蛋白及建立雞傳染性支氣管炎的診斷方法有重要意義。

雞傳染性支氣管炎病毒；N基因；原核表達；Western blot

雞傳染性支氣管炎（IB）由雞傳染性支氣管炎病毒（IBV）引起，是一種急性、高度接觸傳染性呼吸道疾病[1-2]。IBV一直不斷的變異和發(fā)展，盡管疫苗已被廣泛使用，但因其血清型復雜、變異頻繁、不同血清型之間缺乏交叉保護性，使得雞傳染性支氣管炎在世界范圍內廣泛流行[3-6]。近年來，對IBV N蛋白的報道逐漸增多。Ignjatovic等[7]研究發(fā)現(xiàn)，N蛋白免疫動物后能誘導產生高效價的特異性抗體，且與S和M蛋白相比，N蛋白誘導產生的交叉反應性ELISA抗體出現(xiàn)時間更早，效價也更高。Ignjatovic等[8]通過使用單抗對其進行抗原表位檢測，結果8株單抗能與N蛋白上的7個非重疊表位發(fā)生特異性結合，確定了N蛋白上抗原表位不少于7個。Ignjatovic等[9]還發(fā)現(xiàn)N蛋白72～86 aa區(qū)域有一個抗原表位能誘導機體產生細胞免疫，還可以與所有澳大利亞經典IBV分離株發(fā)生交叉反應。Boots等發(fā)現(xiàn)用人工表達的融合N蛋白對小鼠和雞進行免疫，能引起它們對IBV全病毒的免疫應答，而且蛋白免疫對雞淋巴細胞增生、遲發(fā)型超敏反應的產生具有一定的促進作用，還能使機體產生抗體的時間提前[10-11]。研究還表明使用N蛋白首免、全病毒加強免疫的雞，有70%以上能夠避免IBV對氣管環(huán)的損害，說明N蛋白對于激活機體輔助性T細胞，增加體液免疫和細胞免疫協(xié)同作用也具有一定的幫助[12]。

1 材料和方法

1.1 材料

1.1.1 毒株、載體、菌株、血清、實驗動物 IBV ZY3毒株由四川農業(yè)大學預防醫(yī)學實驗室分離鑒定并保存；pMD19-T、表達載體pET-32a（+）由四川農業(yè)大學預防醫(yī)學實驗室保存；E.coli DH5α、E.coli BL21（DE3）由四川農業(yè)大學預防醫(yī)學實驗室保存；雞抗IBV ZY3陽性血清由四川農業(yè)大學預防醫(yī)學實驗室制備并保存；SPF雞胚購于中國農業(yè)科學院哈爾濱獸醫(yī)研究所實驗動物中心。

1.1.2 主要試劑 Trizol A總RNA提取試劑、2×Tap Master Mix、DNA膠回收試劑盒、質粒小量提取試劑盒、Protein Marker均購于北京天根生物技術有限公司；DNA Marker購于北京博邁德科技發(fā)展公司；限制性內切酶 EcoR I、Sal I、xho I、T4 DNA連接酶、IPTG均購于大連寶生物工程公司；瓊脂糖、胰蛋白胨、酵母抽提物、氨芐青霉素、Tris、丙烯酰胺、雙丙烯酰胺、甘氨酸、TEMED、PVDF膜、HRP標記羊抗雞IgG、DAB底物顯色試劑盒均購于成都博瑞克生物技術有限公司；感受態(tài)細胞制備試劑盒為Omega公司產品；SDS、考馬斯亮藍R-250、β-巰基乙醇購于上海生工生物工程技術服務有限公司；其他主要試劑為進口或國產分析純產品。

1.2 引物設計 采用DNASTAR軟件對ZY3毒株N蛋白（Genbank No.HQ315777）的B細胞表位、親水性、抗原性、表位可能性等參數(shù)進行綜合分析，利用ProPred服務器對N蛋白的CTL抗原表位和Th抗原表位進行預測，參照ZY3 N基因序列設計引物，用于擴增免疫原性好、親水性強、表位可能性大的N基因保守序列，片段長度為818 bp。引物由大連寶生物工程有限公司合成，引物信息見表1。

表1 引物信息表

1.3 IBV N蛋白基因擴增與克隆

1.3.1 病毒N蛋白基因擴增 將毒株IBV ZY3接種于雞胚尿囊腔內，盲傳后無菌收集尿囊液。將尿囊液用Trizol A提取病毒總RNA，用Prime ScriptTMRT reaqent Kit試劑盒反轉錄cDNA，以反轉錄cDNA為模板進行PCR擴增，反應體系50μL，反應完成后取5μL PCR產物于1%瓊脂糖凝膠中電泳，并用凝膠成像系統(tǒng)對結果進行檢測。

1.3.2 N蛋白表達載體的構建 使用DNA膠回收試劑盒回收凝膠上的目的條帶，并連接到pMD19-T載體中，轉化到DH5α感受態(tài)細胞后，從平板上挑取若干單個菌落，提取質粒DNA，用限制性內切酶EcoR I、Sal I對質粒進行雙酶切鑒定。將鑒定為陽性的質粒pMD19-T-N和pET-32a（+）分別用限制性內切酶EcoR I和xho I進行雙酶切鑒定，回收N蛋白基因和pET-32a（+）質粒DNA，用T4 DNA連接酶連接回收的目的片段與載體，將連接產物轉化到DH5α感受態(tài)細胞中。提取轉化后的質粒DNA，然后再次進行EcoR I、xho I雙酶切鑒定，以得到陽性重組表達質粒。1.3.3 N蛋白的誘導表達及鑒定 取鑒定正確的陽性重組質粒，轉化到BL21（DE3）中，挑取單個菌落接種于含Amp（100μg/mL）的LB液體培養(yǎng)基中培養(yǎng)過夜；菌液再以1∶100比例接種于相同培養(yǎng)基中，37℃振蕩培養(yǎng)至OD600達到0.4～0.6，加入IPTG至終濃度為1mmol/L，37℃誘導培養(yǎng)4h；同時設空載體和未誘導對照，誘導完后取出1mL菌液進行SDS-PAGE分析。

大量誘導表達重組菌，用包涵體洗滌液勻漿洗滌3次，初純蛋白樣品經0.45μm濾膜過濾后，使用Ni-NTA Superflow進行親和層析純化，將最佳洗脫條件下收集的洗脫液裝入已處理的透析袋中，置于復性緩沖液中透析。透析完后，用核酸蛋白儀測定蛋白含量，取10μL進行SDS-PAGE電泳檢測。1.3.4 重組蛋白Western Blot分析 對純化蛋白進行SDS-PAGE電泳，然后放于半干式電轉移槽內以1 V/cm2恒壓轉移2～3 h到PVDF膜上，轉印后取出PVDF膜放于平皿中，用TBST洗膜，加入封閉液封閉1 h；然后加入雞抗IBV陽性血清，37℃孵育1 h后洗膜3次，再加入HRP標記的羊抗雞IgG，37℃孵育1 h，TBST洗膜3次后用DAB顯色試劑盒避光顯色5～10min至可看到藍紫色條帶，立即加雙蒸水終止反應，觀察結果。

2 結果

2.1 N基因的擴增與克隆

2.1.1 N基因生物信息學分析 采用DNASTAR軟件預測IBV ZY3 N蛋白B細胞表位，當抗原指數(shù)＞0，親水性指數(shù)≥0，表面可能性指數(shù)≥1，如果其內部或附近具有柔性結構，則較有可能是B細胞表位。結果表明B細胞表位可能存在于以下氨基酸位置：120～140，200～220，240～260，300～310，320～340，350～370，380～390。

利用ProPred服務器（http：//www.imtech.res.in/）對N蛋白CTL抗原表位和Th抗原表位進行預測（各結構蛋白分別選取了軟件分析所得出的分值最高的前4個表位），結果顯示：T細胞表位主要存在于77～391之間。見表2。

表2 IBV N蛋白CTL和Th抗原表位預測

2.1.2 N蛋白基因RT-PCR結果 經RT-PCR擴增后，通過瓊脂糖凝膠電泳得到一條特異性條帶，與預期N基因（818bp）大小一致，見圖1。

圖1 N基因PCR擴增與重組質粒pMD19-T-N酶切鑒定電泳圖

2.1.3 重組質粒pMD19-T-N的鑒定 將N基因PCR產物進行膠回收后連接到pMD19-T載體上，經限制性內切酶EcoR I、Sal I雙酶切，于瓊脂糖凝膠中電泳,分別得到約2600bp和818bp的兩條目的片段，與預期一致。見圖2。

2.2 N蛋白表達載體的構建 提取構建成功的重組表達質粒pET-32a-N質粒DNA后，進行EcoR I、xho I雙酶切鑒定，約有5900bp和818bp兩條目的片段（見圖2），結果說明N基因已經成功克隆于表達載體中。

圖2 重組表達質粒pET-32a-N酶切鑒定電泳圖

2.3 重組N蛋白的表達、純化及抗原性檢測結果

2.3.1 重組N蛋白表達產物SDS-PAGE鑒定結果 將鑒定為陽性的重組質粒pET-32a-N轉化到大腸桿菌BL21（DE3）中，經IPTG誘導4h后，進行SDS-PAGE分析，結果顯示在凝膠的50kDa處出現(xiàn)特異性蛋白帶，與預期大小一致，結果如圖3所示。

圖3 重組N蛋白表達產物SDS-PAGE鑒定結果

2.3.2 重組蛋白的純化效果鑒定 將大量誘導表達的重組菌通過包涵體洗滌法初提純后，用Ni-NTA Superflow親和層析對其進一步純化，核酸蛋白儀測得蛋白含量為1.66mg/mL，經SDS-PAGE分析后，得到單一特異的蛋白條帶，與預期一致，結果見圖4。

2.3.3 重組蛋白Western Blot分析結果 將純化的蛋白條帶轉移到PVDF膜上與雞抗IBV陽性血清進行Western blot反應，結果顯示雞抗IBV多克隆血清能夠識別重組N蛋白（見圖4）。

圖4 重組蛋白的純化和Western blot分析結果

3 小結

IB是由傳染性支氣管炎病毒引起的雞的一種急性、高度接觸性呼吸道傳染病。由于IBV基因組的突變和重組，不同血清型IBV毒株之間缺乏交叉保護，雖然疫苗一直在使用，但IB仍不斷暴發(fā)與流行。

IBV N蛋白作為一種病毒內部蛋白，占病毒蛋白總量的40%。其誘導的ELISA抗體出現(xiàn)最早，效價也最高，說明N蛋白上有更多的交叉反應表位，或者說N蛋白具有更高的免疫原性。

本實驗利用軟件對IBV N蛋白的抗原表位進行預測分析，對免疫原性好、親水性強、表位可能性大的保守片段（114～386aa）進行了擴增，通過特異性引物擴增出了818bp的目的條帶，且無非特異性條帶出現(xiàn)，表明引物的特異性較高。因pET表達系統(tǒng)的T7強轉錄及翻譯信號控制、T7 RNA聚合酶高效誘導、目的蛋白的高表達量以及表達蛋白帶有His標簽等特點，故利用原核表達載體pET-32a對IBV N蛋白進行重組表達具有可行性，能滿足實驗要求。通過對誘導時間和誘導劑濃度的篩選，得到了較為優(yōu)化的表達條件，表達后對重組IBV N蛋白進行SDS-PAGE分析，在50kDa處得到一條清晰的誘導表達條帶，為重組N蛋白。將大量誘導表達的重組菌通過包涵體洗滌法初提純之后，用Ni-NTA Superflow親和層析，通過不同的Ni離子濃度梯度洗脫對其進一步純化，再經SDS-PAGE分析，同樣得到單一特異的蛋白條帶。隨后我們采用抗雞傳染性支氣管炎病毒血清與純化后的重組IBV N蛋白進行了Western blot反應，結果表明此重組N蛋白具有良好的免疫原性，并能反映天然蛋白的生物學活性，為下一步的疫病診斷和基因工程疫苗的制備打下了良好的基礎。■

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The Expression and Characterization of Highly Antigenic Region of Nucleoprotein of Prevalent Infectious Bronchitis Virus in Escherichia coli

Li Min1，Li Lirui1，Huang Yong2，et al.
（1.Animal Disease Prevention and Control Center of Chengdu City，Sichuan Chengdu 610041；2.Sichuan Agricultural University，Sichuan Wenjiang 611130，China）

IBV N protein was regarded as a target protein in our study，IBV genomic RNA was extracted from chicken embryo allantoic fluid，using software to predict and analyse the epitope of N protein.A pair of specific primers were designed to amplify the fragments which showed good immunogenic，hydrophilicity and epitope possibility，amplified fragment was 818 bp.It ligated into the vector pET-32a（+）and then transformed into E.coli BL21，after induction of expression，the SDS-PAGE results showed that the protein was about 50 kDa.Purified on a column packed with Ni-NTA His·Bind superflow，the recombinant protein then reacted with chicken anti-IBV serum by western blot to test its antigenicity，the results showed that the recombinant protein had good antigenicity.It was important to further research on IBV N protein and the diagnosis of avian infectious bronchitis.

Infectious bronchitis virus；N gene；Prokaryotic expression；Western blot

S858.315.3

：B

：1001-8964（2017）04-0024-04

2017-02-21

李敏（1986-），女，四川成都人，獸醫(yī)師，碩士，現(xiàn)在成都市動物疫病預防控制中心從事實驗室檢測工作。