鄧碧凡,廖 敏,邱榮敏,高 波,張云桂,馬 燕,龍劍文
?
重樓皂苷Ⅰ對低氧喉癌Hep-2細胞增殖和HIF-1α、VEGF表達的影響
鄧碧凡1,廖 敏1,邱榮敏1,高 波1,張云桂1,馬 燕1,龍劍文2
目的 研究重樓皂苷Ⅰ對低氧喉癌Hep-2細胞增殖及缺氧誘導因子-1α(HIF-1α)、血管內皮生長因子(VEGF)表達的影響。方法 采用MTT法檢測重樓皂苷Ⅰ對細胞增殖的影響,實時定量PCR(RT-PCR)法檢測低氧條件下重樓皂苷Ⅰ對Hep-2細胞HIF-1α mRNA、VEGF mRNA表達的影響。采用Western blot法檢測低氧條件下,重樓皂苷Ⅰ對Hep-2細胞VEGF、HIF-1α、信號傳導與轉錄激活因子3(STAT-3), 磷酸化信號傳導與轉錄激活因子3(p-STAT-3)蛋白表達的影響。結果 重樓皂苷Ⅰ對低氧喉癌Hep-2細胞的增殖有抑制作用;其中,1.5、3、6 μg/ml濃度組重樓皂苷Ⅰ可下調低氧Hep-2細胞HIF-1α、VEGF mRNA和蛋白的表達。同時,重樓皂苷Ⅰ抑制了STAT-3、p-STAT-3的表達。結論 重樓皂苷Ⅰ能抑制低氧條件下喉癌Hep-2細胞增殖和HIF-1α、VEGF的表達,可能與其下調STAT-3表達及抑制STAT-3的磷酸化有關。
重樓皂苷Ⅰ;Hep-2細胞;細胞增殖;HIF-1α; VEGF
喉鱗狀細胞癌為常見頭頸部惡性腫瘤,我國喉癌發病率約占頭頸部腫瘤的13.9%,為全身惡性腫瘤的2.1%[1]。雖然近來喉癌治療方式已有很大提高,但喉癌患者總的生存率仍然很低。喉癌的綜合治療已成為一種治療趨勢。尋找高效、低毒的抗喉癌藥物十分重要。低氧是實體惡性腫瘤增殖中一種常見現象[2],缺氧誘導因子-1α (hypoxia inducible factor 1-α,HIF-1α) 是喉癌腫瘤低氧中的中樞環節,調控相關基因的轉錄[3]。血管內皮生長因子(vascular endothelial growth factor, VEGF)是促血管生成因子,目前是抑制腫瘤血管生成的主要靶點[4]。信號傳導及轉錄激活因子3(signal transducers and activators of transcription3, STAT-3)參與腫瘤細胞的增殖,并可以調節HIF-1α和VEGF的表達[5]。重樓是中醫治療腫瘤的常用藥物之一,目前研究[6]表明,重樓有效成分重樓皂苷Ⅰ對某些腫瘤細胞具有抑制作用,但對喉癌腫瘤細胞作用如何,目前暫無報道。該研究觀察重樓皂苷Ⅰ對低氧條件下喉癌Hep-2細胞增殖活性的影響,以及對低氧Hep-2細胞HIF-1α、VEGF和STAT-3表達的影響,探討重樓皂苷Ⅰ治療喉癌的可能機制。
1.1 主要試劑及儀器 重樓皂苷Ⅰ 粉劑(中國藥品生物制品檢定所);Hep-2喉癌細胞株[中國科學院(上海)];100 U/L青霉素、100 μg/L鏈霉素和MTT試劑盒(武漢博士德生物公司);DMEM培養基、小牛血清和胰蛋白酶(美國 Gibco公司);TRIzol總RNA提取試劑(美國 Invitrogen公司);Quantonestep RT-PCR試劑盒、SYBR green熒光實時定量PCR試劑盒(北京天根生化公司);多克隆兔抗VEGF、多克隆兔抗STAT3、多克隆兔抗HIF-1α、多克隆兔抗p-STAT3、β-actin試劑盒(美國Santa Cruz公司);辣根酶標記抗兔lgG抗體(英國 Abcam公司);辣根酶標記的β-actin抗體(上海興悠生物科技有限公司);ECL試劑盒(瑞典 Amersham Biosciences公司)。分光光度儀(芬蘭 Multiskan MS公司);細胞培養箱(美國 Thermo Electron公司)
1.2 細胞培養 將Hep-2細胞在37 ℃、5% CO2空氣,含100 U/ml青霉素、100 μg/ml鏈霉素和10%胎牛血清的培養基內培養,在細胞聚集達60%~70%時,置于37 ℃,含1%O2、5%CO2、94%N2的低氧培養箱中繼續培養36 h,提取細胞總RNA及總蛋白。
1.3 MTT法檢測細胞增殖實驗 將Hep-2細胞接種于96孔板(5×104個/孔),細胞生長至60%~70%融合狀態時,加入重樓皂苷Ⅰ,各組終濃度分別為0、0.75、1.5、3.0、6.0 μg/ml(預實驗顯示以上濃度對人角質形成細胞無細胞毒作用),每組6個平行孔,低氧培養36 h,加入20 μl 5 mg/ml MTT,培養4 h,再加入DMSO振蕩,調零,于酶標儀570 nm波長處檢測各組的光密度(optical density, OD)值。細胞生長抑制率(IR)=1-OD1/OD2,OD1表示實驗組細胞OD值,OD2表示空白對照組OD值,實驗重復3次。
1.4 測定低氧條件下重樓皂苷Ⅰ對HIF-1α mRNA、VEGF mRNA表達的影響 Hep-2細胞培養同1.3。設計相關基因上、下游引物,HIF-1α上游引物:5′-CAACCGGTTTAAGGACACATTCTG-3′,下游引物:5′-TCTGGGTTGAAACTCAAGCAACTG-3′,擴增產物片段長度150 bp;VEGF上游引物:5′-AAGTGGTCCCAGGCTGCA-3′,下游引物:5′-CTCCAGGCCCTCGTCA-3′,擴增長度為216 bp;GAPDH上游引物:5′-CCTCAAGATCATCAGCAAT-3′,下游引物:5′-CCATCCACAGTCTTCTGGGT-3′,擴增長度為141 bp。提取總RNA,反轉錄合成cDNA;取cDNA 1 μl,加入2.5×RealMasterMix/20×SYBR Solution 11.25 μl,上下游引物各為1 μl,加無Rnase水,反應體積共25 μl;PCR反應條件:95 ℃預變性2 min,循環條件為95 ℃變性15 s,50 ℃退火30 s,68 ℃延伸50 s。采用ΔCt值法計算結果,ΔCt=樣品的Ct均值-內參的Ct均值,2-ΔΔCt即為初始cDNA的相對含量。
1.5 Western blot法檢測 Hep-2細胞培養同1.3,收集細胞,提取細胞總蛋白,用BCA法蛋白定量,上樣,SDS-PAGE凝膠電泳后,轉膜,PBS洗膜,5%脫脂牛奶封閉l h;PBS洗膜,加一抗(兔抗VEGF 1 ∶500、兔抗STAT3 1 ∶500、兔抗HIF-1α 1 ∶500、兔抗p-STAT3 1 ∶400),4 ℃過夜;PBS洗膜;加入二抗(辣根酶標記抗兔IgG抗體1 ∶3 000)孵育0.5 h,洗膜,采用ECL試劑盒檢測。以β-actin為內參校正。
1.6 統計學處理 采用SPSS 17.0軟件進行分析,組間均數比較采用t檢驗。
2.1 MTT法檢測Hep-2細胞的生長活性 低氧條件下培養36 h后,重樓皂苷Ⅰ 6 μg/ml組(t=35.22,P<0.01)、3 μg/ml組(t=21.14,P<0.01)、1.5 μg/ml組(t=9.33,P<0.01)與空白對照組抑制率比較差異有統計學意義;3 μg/ml組(t=12.06,P<0.01)、1.5 μg/ml組(t=23.89,P<0.01)與6 μg/ml組抑制率比較差異有統計學意義。結果表明重樓皂苷Ⅰ對低氧條件下Hep-2細胞的生長有抑制作用,其作用具有濃度依賴性。見圖1。

圖1 重樓皂苷Ⅰ對低氧條件下Hep-2細胞增殖作用的影響 ×400
A:空白對照組;B~E:重樓皂苷Ⅰ 0.75、1.5、3.0、6.0 μg/ml組;與空白對照組比較:**P<0.01
2.2 重樓皂苷Ⅰ對低氧條件下Hep-2細胞HIF-1α mRNA、VEGF mRNA表達的影響 與空白對照組比較, 6 μg/ml組(t=14.89,P<0.01)、3 μg/ml組(t=10.65,P<0.01)和1.5 μg/ml組(t=7.11,P<0.01)重樓皂苷Ⅰ對低氧條件下Hep-2細胞HIF-1α mRNA表達均有抑制作用。與空白對照組比較,6 μg/ml組(t=17.21,P<0.01)、3 μg/ml組(t=12.84,P<0.01)和1.5 μg/ml組(t=7.83,P<0.01)重樓皂苷Ⅰ對低氧條件下Hep-2細胞VEGF mRNA表達均有抑制作用。見圖2。
2.3 重樓皂苷Ⅰ對低氧條件下Hep-2細胞HIF-1α、VEGF、p-STAT3、STAT3表達的影響 與空白對照組比較, 6 μg/ml組(t=23.97,P<0.01)、3 μg/ml組(t=14.04,P<0.01)和1.5 μg/ml組(t=9.51,P<0.01) 重樓皂苷Ⅰ對低氧條件下Hep-2細胞p-STAT3蛋白表達有明顯抑制作用。與空白對照組比較, 6 μg/ml組(t=8.36,P<0.01)和3 μg/ml組(t=4.33,P<0.01)重樓皂苷Ⅰ對低氧條件下Hep-2細胞STAT3蛋白表達有明顯抑制作用。與空白對照組比較, 6 μg/ml組(t=23.03,P<0.01)、3 μg/ml組(t=18.58,P<0.01)和1.5 μg/ml組(t=13.21,P<0.01) 重樓皂苷Ⅰ對低氧條件下Hep-2細胞HIF-1α蛋白表達有抑制作用。與空白對照組比較, 6 μg/ml組(t=22.56,P<0.01)、3 μg/ml組(t=13.00,P<0.01)和1.5 μg/ml組(t=9.09,P<0.01) 重樓皂苷Ⅰ對低氧Hep-2細胞VEGF蛋白表達有抑制作用。見圖3。

圖2 重樓皂苷Ⅰ對低氧條件下Hep-2細胞HIF-1α mRNA、VEGF mRNA表達的影響
A:空白對照組;B~E:重樓皂苷Ⅰ 0.75、1.5、3.0、6.0 μg/ml組;與空白對照組比較:**P<0.01
由于喉癌腫瘤組織生長過快,腫瘤細胞往往存在低氧情況。研究[7]顯示,隨著低氧時間的延長,Hep-2細胞計數會逐漸增高。這說明一定程度的低氧會促進喉癌Hep-2細胞的增殖。經過重樓皂苷Ⅰ處理后,抑制了低氧誘導的Hep-2細胞的增殖,提示重樓皂苷Ⅰ具有抑制喉癌腫瘤細胞增殖的活性。以往研究[6]表明重樓皂苷Ⅰ對多種腫瘤細胞具有抑制作用,并能通過線粒體途徑誘導耐藥性肝癌細胞的凋亡。但在喉癌Hep-2細胞中,重樓皂苷Ⅰ是通過何種途徑發揮抑制作用還需要進一步研究。

圖3 重樓皂苷Ⅰ對低氧條件下Hep-2細胞HIF-1α、VEGF、 p-STAT3、STAT3蛋白表達的影響
A:空白對照組;B~D:重樓皂苷Ⅰ 1.5、3.0、6.0 μg/ml組;與空白對照組比較:**P<0.01
研究[8]表明HIF-1α在細胞低氧中發揮重要作用,HIF-1是一種由HIF-1α和HIF-1β組成的異源二聚體。在正常情況下,HIF-1α通過羥基化而降解,低氧條件下,HIF-1α羥基化降解被抑制,與HIF-1β組成異源二聚體,轉入核內調節靶基因的轉錄[8]。靶基因包括VEGF、促紅細胞生成素、轉鐵蛋白、內皮素1、誘導型一氧化氮合酶和胰島素樣生長因子等[9],從而促進腫瘤細胞的生長。VEGF是血管內皮細胞的特異性絲裂原,能夠介導新生血管的形成,在喉癌的生長、侵襲中發揮重要作用[10]。且與喉癌的分化程度、淋巴結有無轉移和TNM分期有關[11]。研究[12]表明重樓皂苷Ⅰ能夠抑制低氧情況下Lewis腫瘤細胞HIF-1α、VEGF mRNA和蛋白的表達。本研究也表明重樓皂苷Ⅰ對低氧Hep-2細胞HIF-1α mRNA和蛋白的表達均有抑制作用。
在腫瘤中,各種蛋白激酶的活化已被證實,雖然不同的激酶轉導途徑不同,但STAT3在多數信號通路中發揮重要作用[13],STAT3蛋白通過上調細胞凋亡抑制基因(如MCL1等)的轉錄和細胞周期調節蛋白(如MYC等)的表達,參與和促進腫瘤的發生[14]。STAT3的活化是許多惡性腫瘤的重要特征[15]。先前的一些研究[5]表明,STAT3對于HIF-1α表達是非常重要的,STAT3抑制劑能下調HIF-1α表達。STAT3也可通過誘導VEGF的產生參與腫瘤進展[16]。STAT3抑制劑能有效抑制VEGF生產與腫瘤血管的形成[5]。 Zhang et al[17]發現STAT3抑制劑AG490能明顯抑制喉癌Hep-2細胞的增殖。本研究結果表明重樓皂苷Ⅰ能夠下調低氧狀態下喉癌Hep-2細胞STAT3的表達,并抑制STAT3的磷酸化。這可能是重樓皂苷Ⅰ抑制低氧喉癌Hep-2細胞增殖和HIF-1α、VEGF表達的原因之一。
綜上所述,重樓皂苷Ⅰ能夠抑制低氧喉癌Hep-2細胞增殖和HIF-1α、VEGF表達,這可能與其下調Hep-2細胞STAT3的表達,并抑制STAT3的磷酸化有關。
[1] 孔維佳.耳鼻咽喉頭頸外科學[M].2版.人民衛生出版社,2010:460.
[2] Weljie A M, Jirik F R. Hypoxia induced metabolic shifts in cancer cells: moving beyond the Warburg effect[J]. Int J Biochem Cell Biol, 2011, 43(7):981-9.
[3] Yu L,Liu Y,Cui Y. Expression of hypoxia inducible factor-1alpha and its relationship to apoptosis and proliferation in human laryngeal squamous cell carcinoma[J]. J Huazhong Univ Sci Technolog Med Sci, 2004, 24(6):636-8.
[4] Grunstein J, Roberts W G, Mathieu-Costello O, et al. Tumor-derived expression of vascular endothelial growth factor is a critical factor in tumor expansion and vascular function[J]. Cancer Res,1999, 59(7): 1592-8.
[5] Xu Q, Briggs J, Park S, et al. Targeting Stat3 blocks both HIF-1 and VEGF expression induced by multiple oncogenic growth signaling pathways[J]. Oncogene,2005,24(36):5552-60.
[6] Cheung J Y, Ong R C, Suen Y K, et al. Polyphyllin D is a potent apoptosis inducer in drug-resistant HepG2 cells[J]. Cancer Lett, 2005, 217(2):203-11.
[7] Xu O, Li X M, Qu Y T, et al. Regulation of glucose transporter protein-1 and vascular endothelial growth factor by hypoxia inducible factor 1α under hypoxic conditions in Hep-2 human cells[J]. Mol Med Rep,2012,6(6):1418-22.
[8] Wang G L, Jiang B H, Rue E A, et al. Hypoxia-inducible factor 1 is a basic-helix-loop-helix-PAS heterodimer regulated by cellular O2 tension[J]. Proc Natl Acad Sci,1995,92(12):5510-4.
[9] Elson D A, Ryan H E, Snow J W, et al. Coordinate up-regulation of hypoxia inducible factor (HIF)-1alpha and HIF-1 target genes during multi-stage epidermal carcinogenesis and wound healing[J]. Cancer Res,2000,60(21):6189-95.
[10]Bonhin R G,Rocha V B,de Carvalho G M, et al. Correlation between vascular endothelial growth factor expression and presence of lymph node metastasis in advanced squamous cell carcinoma of the larynx[J]. Braz J Otorhinolaryngol,2015,81(1):58-62.
[11]瞿 帥,宋 楊,梅金玉,等. IL-17及其受體調控JAK/STAT3信號通路促進喉癌血管生成的作用[J].安徽醫科大學學報,2015,50(10):1464-7.
[12]Ma D D, Lu H X, Xu L S,et al. Polyphyllin D exerts potent anti-tumoureffects on Lewis cancer cells under hypoxic conditions[J]. J Int Med Res,2009,37(3):631-40.
[13]Bowman T, Garcia R, Turkson J, et al. STATs in oncogenesis[J]. Oncogene, 2000,19(21):2474-88.
[14]Darnell J E Jr. STATs and gene regulation[J].Science,1997,277(5332):1630-5.
[15]Catlett-Falcone R, Dalton W S,et al. STAT proteins as novel targets for cancer therapy. Signal transducer an activator of transcription[J]. Curr Opin Oncol,1999,11(6):490-6.
[16]Niu G, Wright K L, Huang M, et al. Constitutive Stat3 activity up-regulates VEGF expression and tumor angiogenesis[J]. Oncogene,2002,21(13):2000-8.
[17]Zhang H,Zhang D,Luan X, et al. Inhibition of the signal transducers and activators of transcription(STAT) 3 signaling pathway by AG490 in laryngeal carcinoma cells[J]. J Int Med Res,2010,38(5):1673-81.
Effect of Polyphylin I on proliferation and expressions of HIF-1α,VEGF in laryngeal carcinoma cell line Hep-2 under hypoxia
Deng Bifan, Liao Min, Qiu Rongmin, et al
(DeptofOtolaryngologyHeadandNeckSurgery,HezhouPeople′sHospital,Hezhou542899)
ObjectiveToinvestigatetheeffectsofPolyphyllinIonproliferationandexpressionsofHIF-1α,VEGFinlaryngealcarcinomacelllineHep-2underhypoxia.MethodsMTTassaywasperformedtoinvestigatetheeffectofPolyphyllinIontheproliferationofHep-2cellsunderhypoxicconditions.Real-timequantitativereversetranscriptasepolymerasechainreactionwasusedtodetecttheeffectofPolyphyllinIontheexpressionsofHIF-1αmRNAandVEGFmRNA.WesternblotwasusedtodetecttheeffectofPolyphyllinIontheexpressionsofVEGF,HIF-1α,STAT-3andp-STAT-3.ResultsPolyphyllinIinhibitedHep-2cellsproliferationunderhypoxiacondi-tion.PolyphyllinItreatment(1.5,3,6μg/ml)down-regulatedthemRNAandproteinexpressionsofHIF-1α,VEGFinHep-2cellsunderhypoxia.Meanwhile,PolyphyllinItreatmentinhibitedtheproteinexpressionsofSTAT-3andp-STAT-3inHep-2cellsunderhypoxia.ConclusionPolyphyllinIinhibitsHep-2cellsproliferationanddown-regulatestheexpressionsofHIF-1αandVEGFinHep-2cellsunderhypoxia.ItmayberelatedtoreducedSTAT-3expressionandinhibitionofthephosphorylationofSTAT-3inHep-2cellsunderhypoxia.
PolyphyllinI;Hep-2cell;cellproliferation;HIF-1α;VEGF
湖北省衛生計生委中醫藥、中西醫結合科研指導性項目(編號:2013Z-B05)
1賀州市人民醫院耳鼻喉頭頸外科,賀州 5428992湖北中醫藥大學臨床醫學院,武漢 430061
鄧碧凡,男,碩士,副主任醫師,責任作者,E-mail:ljwhbzyy@qq.com
http://www.cnki.net/kcms/detail/34.1065.R.20161012.1323.013.html
R 767.1
A
1000-1492(2016)11-1613-05
10.19405/j.cnki.issn1000-1492.2016.11.013
2016-06-15接收