黃亦彤+鐘志勇+呂永慧+藍天美+潘競鏘+武昕
摘要:目的通過觀察腸炎清對免疫復合潰瘍型結腸炎模型(ICUC)大鼠結腸組織Toll樣受體4(TLR 4)和核因子-κB(NF-κB)表達的影響,探討腸炎清治療IBD的作用機制。方法采用三硝基苯磺酸(TNBS)加免疫復合法造模。將大鼠隨機分為空白對照組、模型對照組、腸炎清低、中、高劑量組(833、1667、3333mL/kg)、柳氮磺吡啶(SASP)組(05g/kg)。造模后第2 d,用藥組分別給予相應藥物灌胃7d,給藥7天后麻醉處死大鼠,取新鮮結腸標本,采用免疫組化法檢測TLR 4、NF-κBp65的表達,實時定量PCR法(qRT-PCR)檢測TLR 4mRNA的表達。結果免疫組化結果:NF-κBp65和TLR4在各組各只動物均可見陽性表達,其中腸炎清高劑量組及SASP組可顯著下調NF-κBp65的表達,有統計學差異(P<005)。TLR4在各給藥組與模型組比較未見顯著差異(P>005)。PCR結果:與模型對照組相比,各給藥組大鼠結腸組織TLR4表達均為陽性,但未見統計學差異(P>005)。結論下調TLR4、NF-κBp65的表達,是腸炎清治療IBD的作用機制之一。
關鍵詞:腸炎清;潰瘍性結腸炎;ICUC大鼠;TLR4;NF-κBp65
中圖分類號:R2855文獻標志碼:A文章編號:1007-2349(2016)09-0072-04
【Abstract】Objective: To observe the effect of Changyanqing on the colon tissue Toll-like receptor 4 (TLR 4) and nuclear factorκB (NF-κB) expression of immune complexes ulcerative colitis (ICUC) rats and explore its mechanism to treat IBD. Methods: Trinitrobenzene sulfonic acid (TNBS) plus immune complex was used to make models. Rats were randomly divided into a control group, a model control group, Changyanqing groups with low, medium and high dose (833, 1667, 3333mL/kg) and sulfasalazine (SASP) group (0.5g/kg). In the following the day after modeling, the treatment groups were administered with corresponding drugs for 7 days, and the rats were sacrificed 7 days later to take their fresh colonic samples. Immunohistochemistry was used to detect TLR 4 and NF-κBp65 expression, and RT-PCR method to detect TLR 4mRNA expression. Results: Immunohistochemical results: NF-κBp65 and TLR4 in each group can be seen positive expression, among which the expression of NF-κBp65 of Changyanqing group with high dose and SASP group could be significantly down-regulated, and there are significant differences (P<005). TLR4 in each treatment group and the model group showed no significant difference (P>005). PCR Results, compared with the model group, TLR4 expressions of the colon tissue of each administration group were positive, but there was no significant difference (P>005). Conclusion: Changyanqing can down-regulate TLR4, NF-κBp65 expression, and its mechanism may be related to the regulation of TLR4 / NF-κB signal pathway.
【Key words】Changyanqing, ulcerative colitis, ICUC rats, TLR4, NF-κBp65
屬非特異性的自發免疫性疾病,病變主要累及結腸黏膜和黏膜下層,臨床主要表現為反復腹痛、腹瀉、黏液血便等。其病因和發病機理至今仍不清楚,既往研究認為,細胞因子網絡的失衡在IBD的發生發展中占有極其重要的地位。近年來不少研究發現,炎癥介質及細胞因子可導致機體多條信號通路活化,直接或間接地影響炎癥介質的表達,導致腸黏膜受損產生。
腸炎清是由我院自行研制的純中藥制劑,臨床用于口服和灌腸治療IBD、慢性腹瀉、結腸息肉電切術后致腸黏膜受損、腸道菌群失調及腸功能障礙等。該藥主治以濕熱內蘊型為多見的腸炎,或兼有脾胃虛弱、氣滯血淤,對受損腸黏膜有顯著的治療作用。腸炎清[1]經結腸途徑治療,對UC尤其是輕到中度UC 能夠顯著縮短療程,減少或避免使用激素及SASP,減輕病人的痛苦。腸炎清在動物炎癥模型中表現出良好的抗炎效應[2-3]。
本研究采用免疫復合潰瘍型結腸炎(ICUC)大鼠模型,通過觀察腸炎清對ICUC大鼠TLR4、NF-κBp65表達的影響,探討腸炎清的作用機制。
1材料與方法
11材料
111實驗藥物腸炎清:廣州市中醫醫院自制,2~8℃保存,批號:151128。柳氮磺吡啶腸溶片:上海信誼天平藥業有限公司,批號:09141109生產日期:20141024;有效期至:201610。
112動物SD大鼠48只,雌性180~200g;SPF級;新西蘭兔,雄性3kg左右;普通級,由廣東省醫學實驗動物中心提供。大鼠實驗動物質量合格證明編號44007200024500,兔實驗動物質量合格證明編號44411600001758、44411600001799。
113試劑石蠟:茂名市大川特種蠟廠有限公司。環保透明劑:上海宏茲實業有限公司。無水乙醇、95%乙醇、曙紅(水溶):廣州中南化學試劑有限公司。蘇木素:GEMADA,Biological Stain Commission,Inc。PBS緩沖液:pH72~76、枸櫞酸鹽緩沖液:pH60,武漢博士德生物工程有限公司。
NF-κB p65 抗體:Arigo Biolaboratories集團公司,TLR4 抗體:羅福斯生物制劑公司,GTVisionTM Ⅲ檢測系統/Mo&Rb:基因技術(上海)公司,正常山羊血清:Jackson ImmunoResearch實驗公司,定量PCR用的SYBR Green qPCR SuperMix購自Invitrogen公司,
114儀器TS-12C型生物組織全自動脫水機:湖北孝感醫用儀器有限公司。EG1150型生物組織包埋機:LEICA,德國。RM2235型輪轉切片機:LEICA,德國。CS-VI型攤片烤片機:湖北孝感醫用儀器有限公司。BX43型生物顯微鏡:OLYMPUS,日本。定量PCR儀:ABI PRISM 7500 Sequence Detection System。
CellSens Standard顯微圖像軟件:OLYMPUS,日本。Image-Pro Plus version 60圖像分析軟件:Image-Pro 美國。
12方法
121模型建立健康SD大鼠適應性飼養一周后建模,造模前禁食24h。:取50g/L TNBS溶液與50%乙醇溶液以體積比1∶1混合配成25g/L三硝基苯磺酸(TNBS)乙醇溶液;刮取新西蘭兔結腸黏膜制成組織勻漿,以3000r/min速度離心30min,取上清液,檢測其蛋白含量并調節至20g/L,與等量完全弗氏佐劑混合配成抗原乳化液,-20℃保存備用。
動物免疫:模型組大鼠全部于第1天、第14天在大鼠頸、背部注射抗原乳化液(體積為08mL/只動物,含抗原8mg)。第21天,所有大鼠禁食不禁水24h,第22天,各組大鼠TNBS乙醇溶液灌腸造模。
造模方法:大鼠戊巴比妥鈉麻醉,將一直徑20 mm、長約12 cm的塑膠管由肛門輕緩插入大鼠體內深約8cm,按照TNBS 75mg/kg的劑量,03mL/100g體重的給藥體積緩慢注入25g/LTNBS乙醇溶液,然后注入約01mL的空氣,將留在塑膠管內的藥物排入腸內。給藥完畢,緩慢拔出塑膠管,用手捏住肛門,提起大鼠尾部,持續倒置1min,使造模劑充分滲入大鼠腸腔內。空白對照組注入等量的生理鹽水。驗證模型:造模后第2天隨機選取4只模型組大鼠麻醉后放血處死,剖腹取直腸和結腸,生理鹽水清洗后肉眼觀察結腸充血水腫情況,驗證模型。
122動物分組及給藥選取40只成模大鼠,隨機分為5組。造模后第3天各組開始灌胃給藥:腸炎清低、中、高劑量組按照833、1667、3333mL/kg(按照人臨床用量的5、10、20倍折算);SASP組按05g/kg;給藥體積17mL/100g體重,2次/d,連續7天;空白對照組和模型對照組給予等體積的生理鹽水。
123標本處理末次給藥后24h,戊巴比妥鈉麻醉、放血處死大鼠,開腹,取自肛門向上約10cm結腸段,沿腸系膜縱軸剪開,生理鹽水沖洗,取一半用4%中性甲醛固定,用于組織病理和免疫組化檢查,另一半液氮速凍,用于PCR檢測。
124觀察指標及檢測方法
1241免疫組化法檢測TLR4和NF-κBp65表達組織標本經取材、固定、修切、流水沖洗、脫水、透明、浸蠟、石蠟包埋、石蠟切片(防脫)、脫蠟至水、抗原修復(微波法)、封閉內源性過氧化物酶、血清封閉、一抗孵育、二抗孵育、DAB顯色、蘇木素復染、脫水透明、封片。
每張切片放大400倍隨機選取3個視野觀察,細胞呈棕黃色為陽性,定位以細胞核為主。用圖像分析軟件分別測定各個視野的平均光密度值,取均值作為每張切片的平均光密度值。
1242qRT-PCR法檢測TLR4mRNA表達[4]Trizol 法提取結腸組織RNA進行qRT-PCR擴增。樣品1μl,1%瓊脂糖凝膠電泳80V×20min,用凝膠成像系統觀察總RNA的5s rRNA,18s rRNA和28s rRNA條帶,三條條帶完整可證明RNA抽提比較完整。
逆轉錄:RNase free的PCR管中配置溶液Total RNA10μg+H2O總體積12μl,將溶液吹打均勻,置85℃保溫5min,使RNA變性。隨后立即冰上致冷,以防止RNA復性;在該PCR管中加入下列試劑Oligo(dT)15 05μl、Random primer(6-mer)05μl、二者濃度都是10uM、dNTP20μl、RNase inhibitor 05μl、5 x buffer 40μl、M-MLV 05μl總體積80μl。將上述20μl反應溶液30℃保溫10min;42℃保溫60min;85℃保溫10min。
定量PCR:檢測序列片段。內參片段:GAPDH-200bp,目的片段:TLR4-386bp
引物序列見表1。
并列表說明,各組數據以均數加減標準差表示(x±s),采用SPSS210統計軟件,計量資料數據若方差齊,則采用單因素方差分析,組間比較用LSD法,若方差不齊,數據經轉換后方差仍不齊,采用秩和檢驗進行統計分析。
2結果)PCR表達結果(x±s,n=8):空白對照組:(274±164);模型對照組:(311±199);腸炎清低劑量組:(249±156);腸炎清中劑量組:(318±185);腸炎清高劑量組:(359±173);SASP組:(362±236)。
與空白對照組相比,模型對照組大鼠結腸組織TLR4的表達有所增加,但未見統計學差異(P>005)。與模型對照組相比,各給藥組大鼠結腸組織TLR4的表達均有不同程度的降低,但未見統計學差異(P>005)。
3小結
免疫組化法結果顯示:NF-κB和TLR4在各組各只動物均可見陽性表達,具體情況如下:
NF-κB:主要表達部位為黏膜層頂端上皮細胞胞漿、腸腺近腸腔側上皮細胞胞漿、黏膜固有層及黏膜下層結締組織以及炎性細胞胞漿。模型對照組表達量顯著高于空白對照組。各給藥組較模型對照組NF-κB表達下調,腸炎清高劑量組及SASP組NF-κB表達量顯著低于模型對照組。
TLR4:主要表達部位與NFκB的表達部位一致,模型對照組表達量顯著高于空白對照組,各給藥組較模型對照組表達下調,但未見顯著差異。
qRT-PCR結果顯示:造模后動物結腸組織TLR4mRNA的表達量有所升高,但未見顯著差異。與模型組相較,各給藥組TLR4mRNA表達均有不同程度的下調,但未見顯著差異。
4討論
TLR4是人類發現的第一個TLR相關蛋白,主要表達在參與宿主防御功能的細胞上。TLR4最突出的生物學功能是促進細胞因子的合成與釋放,引發炎癥反應。其介導炎癥發生的相關機制目前已經研究得比較透徹,TLR4識別病原相關分子模式(pathogen-associated molecule pattern,PAMPS)并與之結合,經下游的信號轉導通路最終導致 NF-κB 的激活,引發白 細 胞 介 素-1(IL -1)、腫瘤壞死因子-α(TNF-α)等炎性因子的釋放,介導炎癥的發生。
TLR4通過兩條經典的信號轉導通路激活 NF-κB:My D88 依賴性和My D88 非依賴性信號轉導路徑。MyD88 是含有TLR 結構域的接頭蛋白,是TLR 信號通路的下游信號因子,在TLR 信號通路中有關鍵性的作用[5-6]。其結構上有3 個功能區域:N 端的死亡區(deathdomain,DD);與Toll 樣受體同源結構域結合的羧基末端及C 端的類似于IL-1 受體胞質區的Toll 區。DD與白細胞介素-1 受體相關激酶(interleukon-1 receptorassociated kinase,IRAK)的死亡結構域結合,并引起IRAK 的自身磷酸化,再經過一系列的激活反應,最終引起I-κB 的活化,導致NF-κB 的激活和轉位,造成炎性細胞因子的合成與釋放,從而誘發機體本身的炎癥反應過程。
NF-κB在UC的發生、發展中是一種重要的轉錄因子,是多種信號轉導途徑的匯聚點,在調節炎性反應的基因中起關鍵作用[7]。實驗研究發現各種與UC相關的細胞因子如TNF-α、IL-1β、IL-6和IL-8可通過啟動NF-κB等轉錄因子誘發或加劇機體的炎癥反應[8]。NF-κB的激活導致TNF-α、IL-1β轉錄增加,而TNF-α、IL-1β的釋放又進一步激活NF-κB。后者通過正反饋進一步增加TNF-α、IL-1β的分泌,同時使IL-6和IL-8等的表達亦增加。由此產生級聯反應,使炎癥不斷放大,形成“瀑布效應”。有研究表明[9]應用NF-κB抑制劑能改變患者的炎癥狀態。
本研究結果顯示,與模型組比較,腸炎清對TLR4、NF-κBp65蛋白表達、TLR4mRNA表達出現不同程度下調,其中,腸炎清高劑量組與SASP組顯著下調NF-κBp65表達,證明腸炎清高劑量組與SASP組一樣,對ICUC大鼠可以抑制炎癥反應,減少結腸黏膜損傷。
由此判斷,下調TLR4、NF-κBp65蛋白表達、TLR4mRNA表達,是腸炎清的作用機制之一。但要明確腸炎清治療IBD的作用靶點,還需要做更為深入和全面的研究。
參考文獻:
[1]呂永慧腸炎清對大鼠潰瘍性結腸炎腸黏膜介素-10 和細胞間黏附分子-1 的影響[J].南方醫科大學學報,2008,28(10):1891-1896
[2]呂永慧,胡品津,陳文紅中藥腸炎清治療小鼠葡聚糖硫酸鈉所致結腸炎的機制[J].世界華人消化雜志,2006,14:1283-7
[3]呂永慧,陳文紅,胡品津腸炎清治療葡聚糖硫酸鈉結腸炎的實驗研究[J].廣州中醫藥大學學報,2003,20:140-2
[4]程曉磊,杜立陽,劉清芳復方青黛顆粒對潰瘍性結腸炎模型大鼠結腸toll 樣受體2,4基因表達的影響[J].中國中西醫結合消化雜志,2011,19(1):14-17
[5]Nagpal K,Plantinga TS,Wong J,et alA TIR domain variant of MyD88adapter-like(Mal)/TIRAP results in loss of MyD88 binding and reduced TLR2/TLR4signaling[J].J Biol Chem,2009,284(38):25742-25748
[6]Takeuchi O,Takeda K,Hoshino K,et alCellular responses to bacterial cellwall components are mediated through MyD88-dependent signaling cascades[J].Immunol,2000,12(1):113-117
[7]陳吉,高美麗,白曉茹,等核因子-κB和細胞因子在潰瘍性結腸炎中的表達及其意義[J].世界華人消化雜志,2009,17(2):209-212