外源物質對新疆紫草毛狀根次生代謝產物含量的影響

葛素囡，張生翾，王 芳，*，魏 歡，謝文磊，謝 建，李 馳，趙 胡*

（1.新疆農業大學農學院，新疆 烏魯木齊 830052；2.阜陽師范學院生物與食品工程學院，安徽 阜陽 236037）

外源物質對新疆紫草毛狀根次生代謝產物含量的影響

葛素囡1，張生翾1，王 芳1，*，魏 歡1，謝文磊1，謝 建1，李 馳1，趙 胡2，*

（1.新疆農業大學農學院，新疆 烏魯木齊 830052；2.阜陽師范學院生物與食品工程學院，安徽 阜陽 236037）

目的：探討不同外源物質對新疆紫草毛狀根中次生代謝產物含量的影響。方法：采用分光光度法測定AgNO3、L-苯丙氨酸、乙酸鈉影響下新疆紫草毛狀根提取物中次生代謝產物的含量。結果：AgNO3質量濃度為5 mg/L時，毛狀根中紫草素、總多酚及總黃酮的含量分別較對照提高了5、0.3 倍和0.8 倍，而花青素的含量在AgNO3質量濃度為3 mg/L時達峰值，較對照提高了0.4 倍。在AgNO3質量濃度為5 mg/L前提下，L-苯丙氨酸質量濃度為25 mg/L時，紫草素、花青素及總黃酮的含量均達峰值，分別較對照提高了0.3、1.4 倍和1.2 倍。而總多酚含量雖然并未高于對照組，但是在各個處理中仍然含量最高。在AgNO3、L-苯丙氨酸質量濃度分別為5、25 mg/L時，總多酚和紫草素含量均在乙酸鈉質量濃度為50 mg/L時達到最高，花青素的含量在乙酸鈉質量濃度為200 mg/L時達到最高，而乙酸鈉不同處理的毛狀根中總黃酮含量均明顯低于對照。結論：外施一定質量濃度的誘導子AgNO3及AgNO3和L-苯丙氨酸的聯合作用均能促進新疆紫草毛狀根次生代謝產物的積累；外施一定質量濃度的AgNO3、L-苯丙氨酸及乙酸鈉可協同促進毛狀根中總多酚、花青素和紫草素的積累，但顯著抑制總黃酮的合成積累。

新疆紫草；毛狀根；次生代謝產物；誘導子；前體物質

毛狀根培養是獲得有用次生代謝產物的重要途徑之一。近年來，培養珍貴藥用植物毛狀根以獲取次生代謝產物已成為研究熱點。楊世海［1］、何含杰［2］、談榮慧［3］等分別培養決明的蒽醌類化合物、三裂葉野葛的總異黃酮和葛根素、丹參的丹酚酸等均獲成功。但利用毛狀根生產藥物依然存在次生代謝產物產量低、生產成本高的問題，因此，深入研究植物細胞中次生代謝產物合成的高產調控機理具有重要的理論和實際意義。

誘導子被認為是提高植物細胞和組織培養中次生代謝產物最有效的途徑之一。茉莉酸可促進長春花毛狀根中吲哚生物堿的生物合成［4］。真菌誘導子可提高黃芩毛狀根中黃芩苷的含量［5］，也可影響人參毛狀根中人參皂苷的生物合成［6］。同時，隨著植物次生代謝產物合成途徑的深入研究，添加前體物質也成為提高目的產物的有效手段。苯丙氨酸是一個代謝中間體，它是合成類黃酮、苯丙素類、香豆素類、木質素類、萘醌類等多種次生代謝物質的前體［7］。Fettneto等［8］在紅豆杉細胞培養中加入前體物質苯丙氨酸能使紫杉醇含量提高5 倍。乙酸鈉是黃酮類化合物合成的前體物質之一，1 mmol/L乙酸鈉能夠促進紅豆杉細胞中紫杉烷的合成［9］。培養基中添加硝酸銀和酵母提取物對不定根中雷公藤甲素的合成具有明顯的促進作用［10］。表明多個誘導子或誘導子與前體物質共同作用，可大大提高毛狀根次生代謝產物的產量。

新疆紫草毛狀根中添加真菌誘導子［11］、茉莉酸甲酯［12］、乙烯［13-14］及Ag+［15］均可促進紫草素及其衍生物的合成，L-苯丙氨酸對紫草細胞中紫草素的積累也有明顯促進作用［16］，但未見誘導子及前體物質的聯合作用對新疆紫草毛狀根次生代謝產物含量影響的研究報道。本研究探討AgNO3、L-苯丙氨酸及乙酸鈉協同作用對新疆紫草毛狀根次生代謝產物含量的影響，為深入研究紫草素合成的代謝調控以及相關分子機制及運用細胞工程技術大量生產紫草素及其衍生物提供理論依據。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

新疆紫草毛狀根為1號根系［17］，由新疆農業大學農學院王芳課題組提供。

蘆丁標準品 國藥集團化學試劑有限公司；無水乙醇 新疆烏市化學試劑廠；亞硝酸鈉、硝酸鋁、氫氧化鈉、酒石酸鉀鈉、磷酸氫二鈉、硝酸銀、L-苯丙氨酸、乙酸鈉（均為分析純） 北京化工廠。

1.2 儀器與設備

循環水式真空泵、旋轉蒸發器 上海亞榮生化儀器廠；721型紫外分光光度計 上海隆拓儀器設備有限公司；恒溫水浴鍋 南京科爾儀器設備有限公司。

1.3 方法

1.3.1 毛狀根的生長

稱取0.5 g生長狀況良好的毛狀根接種于裝有50 mL SH培養基［18］的250 mL錐形瓶中，溫度25 ℃、轉速（100±10） r/min條件下暗培養30 d后，待用。

1.3.2 AgNO3處理新疆紫草毛狀根

稱取來自SH培養基中培養的毛狀根5 g，接于M9培養基［18］中，附加AgNO30、1、3、5、7 mg/L，培養30 d后，進行成分測定。

1.3.3 AgNO3及L-苯丙氨酸聯合處理新疆紫草毛狀根

在1.3.2節最佳條件（5 mg/L Ag+）基礎上，將毛狀根接于M9培養基附加L-苯丙氨酸0、25、50、75、100 mg/L的培養基中，培養30 d后進行成分測定。

1.3.4 AgNO3、L-苯丙氨酸及乙酸鈉聯合處理新疆紫草毛狀根

在1.3.3節最佳條件（5 mg/L Ag++25 mg/L L-苯丙氨酸）基礎上，將毛狀根接于M9培養基附加乙酸鈉0、25、50、75、100 mg/L的培養基中，培養30d后進行成分測定。

1.3.5 總黃酮的提取及含量測定

1.3.5.1 蘆丁標準對照品溶液的制備及其標準曲線回歸方程的建立

參照張桂等［19］方法。以蘆丁質量濃度為橫坐標，波長為510 nm的吸光度（A）為縱坐標，繪制標準曲線，并計算回歸方程。蘆丁質量濃度與吸光度的回歸方程式為y=11.227 0x+0.005 8（R2=0.995 6）。結果表明，蘆丁質量濃度在0～0.05 mg/mL范圍內，與吸光度成良好的線性關系。

1.3.5.2 供試品提取溶液的制備及樣品含量測定

參照楊春霞等［20］的方法。在波長510 nm處，以空白溶液校正基線，測定供試液的吸光度，代入回歸方程，計算樣品溶液中總黃酮的含量。

1.3.6 花青素的提取及相對含量的測定

參照Weiss等［21］的方法。以A校表示樣品中花青素的相對含量/（mg/g），樣品質量為干質量。

1.3.7 總多酚的提取及含量測定

總多酚的提取采用水浴提取法?？偠喾雍繙y定采用酒石酸亞鐵分光光度法，在540 nm波長處測定吸光度（A）。

式中：A為樣液的吸光度；V總為供試液總量/mL；V為吸取的供試液體積/mL；m為樣品干質量/g；7.826為吸光度為1.00時的茶多酚含量的經驗值/（mg/mL）。

1.3.8 紫草素的提取及含量測定

采用中國藥典中記載的測定羥基萘醌總色素的方法測定紫草素含量［18］。具體方法：取培養一定時間的愈傷組織適量，于50 ℃烘箱中干燥3 h，粉碎，精密稱取0.5 g，置100 mL容量瓶中，加無水乙醇稀釋至刻度，4 h內不斷振搖，過濾，精密吸取濾液5 mL于25 mL容量瓶中，加無水乙醇稀釋至刻度，搖勻。采用分光光度法在516 nm波長處測定吸光度，按左旋紫草素（C16H16O5）的吸收系數為242計算。

1.4 數據處理

每份樣品各重復3 次提取測定。采用Microsoft Excel和SPSS 16.0統計分析軟件對數據進行處理。

2 結果與分析

2.1 AgNO3對毛狀根次生代謝產物含量的影響

將毛狀根接種于M9培養基中，圖1、2結果顯示，毛狀根中次生代謝產物的含量均隨AgNO3質量濃度的增加呈先升后降趨勢，其中紫草素、總多酚及總黃酮的含量均在AgNO3質量濃度為5 mg/L時達峰值，分別較對照提高了5、0.3 倍和0.8 倍，而花青素的含量在AgNO3質量濃度為3 mg/L時達峰值，較對照提高了0.4倍。當AgNO3質量濃度過高時，毛狀根中紫草素、總多酚、總黃酮及花青素的含量均大幅降低，表明AgNO3對毛狀根次生代謝產物的產出有一定的影響，其中AgNO3質量濃度為5 mg/L時呈現較高的促進作用。

2.2 AgNO3及L-苯丙氨酸聯合作用對毛狀根次生代謝產物含量的影響

在2.1節實驗結果基礎上，考察L-苯丙氨酸對毛狀根次生代謝產物含量的影響，圖3、4結果表明，毛狀根次生代謝產物的含量均隨L-苯丙氨酸質量濃度的增加呈先升高后降低趨勢，當L-苯丙氨酸質量濃度為25 mg/L時，紫草素、花青素及總黃酮的含量均達峰值，均顯著高于對照（P＜0.05），分別較對照提高了0.3、1.4 倍和1.2 倍。而總多酚含量雖然并未高于對照組，但是在各個處理中仍然含量最高。說明在AgNO3質量濃度為5 mg/L前提下，L-苯丙氨酸為25 mg/L時，對毛狀根次生代謝產物的積累有明顯促進作用，高質量濃度起抑制作用。說明添加一定量的AgNO3及L-苯丙氨酸可協同促進毛狀根中次生代謝產物的積累。

2.3 AgNO3、L-苯丙氨酸及乙酸鈉聯合作用對毛狀根次生代謝產物含量的影響

在2.2節實驗結果基礎上，考察乙酸鈉對毛狀根次生代謝產物含量的影響，圖5、6結果表明，在乙酸鈉不同質量濃度處理下，毛狀根中總多酚和花青素的含量均高于對照組，其中總多酚含量隨著乙酸鈉質量濃度增高而增大，在乙酸鈉質量濃度為50 mg/L時達到最高；花青素的含量在乙酸鈉質量濃度為200 mg/L時達到最高，且各個質量濃度處理間存在顯著差異（P＜0.01）。當乙酸鈉質量濃度為50 mg/L時紫草素含量較對照提高1 倍（P＜0.05）。乙酸鈉不同處理的毛狀根中總黃酮含量均明顯低于對照（P＜0.01），說明乙酸鈉抑制毛狀根中總黃酮的積累。綜上所述，同時添加一定量的AgNO3、L-苯丙氨酸及乙酸鈉可協同促進新疆紫草毛狀根中總多酚、花青素和紫草素的積累，但顯著抑制總黃酮的合成積累。

3 討 論

由于紫草素及其衍生物的合成呈非偶聯型，即紫草素及其衍生物在毛狀根生長停止后才進行合成的，故新疆紫草毛狀根的培養采用二階段培養法：第一階段為生長階段，主要目的是為了提高或增加毛狀根的生物學產量，其適宜的培養基為SH［18］，第二階段為生產階段，主要目的是為了促進毛狀根積累紫草素及其衍生物，其適宜的培養基為M9［18］。本研究著重考察了第二階段即毛狀根生產階段，AgNO3、L-苯丙氨酸、乙酸鈉影響下新疆紫草毛狀根提取物中次生代謝產物的含量。

許多研究表明真菌菌絲體等或其他金屬離子等誘導劑可促進植物毛狀根合成和積累次生代謝物［22-24］。尹雅樂等［25］研究發現5 μmol/L Ag+處理能夠顯著促進紫草素的合成。本研究結果表明，5 mg/L的Ag+使得新疆紫草毛狀根的紫草素及其衍生物含量提高了5 倍，結果與前人一致。

前人研究發現，L-苯丙氨酸可促進葡萄細胞中花青素的積累［26］，苯丙氨酸前體與茉莉酸甲酯的聯合作用也可顯著提高葡萄細胞中花青素含量［27］。本研究結果表明，添加一定量的AgNO3及L-苯丙氨酸可協同促進毛狀根中紫草素及其衍生物、總黃酮及花青素含量的提高，進一步闡明了誘導子與前體物質的聯合作用的效應。

研究表明乙酸鈉作為黃酮類化合物合成的前體物質之一可促進甘草細胞中總黃酮的合成積累［28］，但也有研究認為L-苯丙氨酸和乙酸鈉共同使用對銀杏細胞中黃酮的合成無明顯促進作用［29］。本研究中，當AgNO3質量濃度為0 mg/L時，總黃酮含量為0.2 mg/g，當AgNO3質量濃度為5 mg/L時，總黃酮含量為0.329 mg/g，當5 mg/L AgNO3+25 mg/L L-苯丙氨酸時，總黃酮含量為0.731 mg/g，由此可見，單獨添加5 mg/L AgNO3及AgNO3與L-苯丙氨酸共同作用均有利于總黃酮的積累。但是，同時添加一定量的AgNO3、L-苯丙氨酸及乙酸鈉卻顯著抑制總黃酮的合成積累，是否與本實驗選用乙酸鈉質量濃度過高有關，有待進一步研究。

本研究明確了一定質量濃度的誘導子AgNO3及AgNO3和前體物質L-苯丙氨酸的聯合作用均能夠促進新疆紫草毛狀根次生代謝產物的積累；添加一定質量濃度的AgNO3、L-苯丙氨酸及乙酸鈉可協同促進毛狀根中總多酚、花青素和紫草素的積累。本結果為進一步深入研究誘導子及前體物質對新疆紫草毛狀根有效成分及次生代謝物的影響以及相關分子機制提供了理論依據和實驗基礎，對工廠化生產新疆紫草毛狀根有價值的藥用成分具有重要意義。

［1］ 楊世海， 劉曉峰， 果德安， 等. 決明毛狀根誘導及激素與誘導子對毛狀根生長和蒽醌類化合物合成的影響［J］. 中草藥， 2005， 36（5）： 752-756. DOI：10.3321/j.issn：0253-2670.2005.05.047.

［2］ 何含杰， 梁朋， 施和平. 蔗糖和光對三裂葉野葛毛狀根生長及次生物質產生的影響［J］. 生物工程學報， 2005， 21（6）： 1003-1007. DOI：10.3321/j.issn：1000-3061.2005.06.027.

［3］ 談榮慧， 張金家， 趙淑娟. 丹參毛狀根的誘導及培養條件的優化［J］.中國中藥雜志， 2014， 39（16）： 3048-3052.

［4］ RIJHWANI S K， SHANKS J V. Effect of elicitor dosage and exposure time on biosynthesis of indole alkaloids by Catharanthus roseus hairy root cultures［J］. Biotechnology Progress， 1998， 14（3）： 442-449. DOI：10.1021/bp980029v.

［5］ 齊香君， 郭樂康， 陳微娜. 誘導子對黃芩毛狀根生長及黃芩苷合成的影響［J］. 中草藥， 2009， 40（5）： 801-803. DOI：10.3321/ j.issn：0253-2670.2009.05.041.

［6］ LIU Jun， DING Jiayi， ZHOU Qianyun， et al. Studies on influence of fungal elicitor on hairy root of Panax ginseng biosynthesis ginseng saponin and biomass［J］. China Journal of Chinese Materia Medica，2005， 29（4）： 302-305.

［7］ 王升， 李璇， 蔣超， 等. 紫草素及其衍生物合成相關基因及信號傳導研究進展［J］. 中草藥， 2012， 43（6）： 1219-1225.

［8］ FETTNETO A G， MELANSON S J， NICHOLSON S A. Improved taxol yield by aromatic carboxylic acid and amino feed to cell cultures of Taxus cuspidate［J］. Biotechnology and Bioengineering， 1994， 44（8）：967-971. DOI：10.1002/bit.260440813.

［9］ ZHOU Zhongqiang， MEI Xingguo. Enhancement of Taxanes production in cell suspension cultures of Taxus chinensis by precursorfeeding［J］. Chemistry and Industry of Forest Products， 2005， 25（3）：51-54.

［10］ 李琰， 趙磊， 崔蕾， 等. 誘導子對雷公藤不定根生長和次生代謝產物含量的影響［J］. 生物工程學報， 2015， 31（8）： 1-10. DOI：10.13345/ j.cjb.140449.

［11］ 張璞， 王芳， 朱查山. 真菌誘導子與吸附樹脂對新疆紫草毛狀根中萘醌積累的影響［J］. 生物工程學報， 2013， 29（2）： 214-223. DOI：10.13345/j.cjb.2013.02.006.

［12］ YAZAKI K， TAKEDA K， TABATA M. Effects of methyl jasmonate on shikonin and dihydroechinofuran production in Lithospermum cell cultures［J］. Plant and Cell Physiology， 1997， 38（7）： 776-782. DOI：10.1093/oxfordjournals.pcp.a029235.

［13］ TOUNO K， TAMAOKA J， OHASHI Y， et al. Ethylene induced shikonin biosynthesis in shoot culture of Lithospermum erythrorhizon［J］. Plant Physiology and Biochemistry， 2005， 43（2）：101-105. DOI：10.1016/j.plaphy.2005.01.004.

［14］ 方榮俊， 趙華， 廖永輝， 等. 乙烯對植物次生代謝產物合成的雙重調控效應［J］. 植物學報， 2014， 49（5）： 626-639. DOI：10.3724/ SP.J.1259.2014.00626.

［15］ 黃文虎， 葛鋒， 劉迪秋， 等. 紫草次生代謝物生物學活性研究進展［J］.安徽農業科學， 2010， 38（28）： 15592-15593； 16074. DOI：10.3969/ j.issn.0517-6611.2010.28.056.

［16］ 胡立勇. 紫草細胞培養生產紫草素的研究［J］. 中藥材， 2004， 27（5）：313-314. DOI：10.3321/j.issn：1001-4454.2004.05.001.

［17］ 陳永芳， 蘆韋華， 王芳， 等. 新疆紫草毛狀根的誘導及培養［J］.西北植物學報， 2008， 28（12）： 2423-2428. DOI：10.3321/ j.issn：1000-4025.2008.12.010.

［18］ 蘆韋華， 陳永芳， 王芳， 等. 理化條件對新疆紫草毛狀根培養及紫草素含量的影響［J］. 華中農業大學學報， 2012， 31（1）： 50-54. DOI：10.3969/j.issn.1000-2421.2012.01.009.

［19］ 張桂， 暢天獅， 劉俊果， 等. 從芹菜中提取黃酮類物質的研究［J］. 食品科學， 2002， 23（8）： 121-124. DOI：10.3321/ j.issn：1002-6630.2002.08.031.

［20］ 楊春霞， 黃麗莉， 章挺， 等. 苦豆子愈傷組織培養及其藥用成分含量測定［J］. 中國農學通報， 2011， 27（18）： 153-157.

［21］ WEISS D， HALEVY A H. Stamens and gibberellin in the regulation of corolla pigmentation and growth in Petunia hybrida［J］. Planta，1989， 179（1）： 89-96. DOI：10.1007/bf00395775.

［22］ 晏瓊， 胡宗定， 吳建勇. 生物與非生物誘導子協同作用對丹參毛狀根培養生產丹參酮的影響［J］. 中國中藥雜志， 2006， 31（3）： 188-191. DOI：10.3321/j.issn：1001-5302.2006.03.003.

［23］ 王學勇， 崔光紅， 黃璐琦， 等. 誘導子對丹參毛狀根中丹參酮類成分積累影響［J］. 中國中藥雜志， 2007， 32（10）： 976-978. DOI：10.3321/ j.issn：1001-5302.2007.10.030.

［24］ GE Xiuchun， WU Jianyong. Thanshinone production and isoprenoid pathways in Salviam iltionrrhiza hairy roots induced by Ag+and yeast elicittor［J］. Plant Science， 2004， 168（2）： 487-491. DOI：10.1016/ j.plantsci.2004.09.012.

［25］ 尹雅樂， 戚金亮， 龐延軍， 等. 乙烯調控紫草寧合成相關基因的克隆和表達研究［C］. 南京： 江蘇省遺傳學會， 2008.

［26］ KRISA S， TEGUO P W， DECENDIT A， et al. Production of13C-labelled anthocyanins by Vitis vinifera cell suspension cultures［J］. Phytochem， 1999， 51（5）： 651-656. DOI：10.1016/s0031-9422（99）00068-0.

［27］ 曲均革， 虞星炬， 張衛， 等. 前體飼喂、誘導子和光照聯合使用對葡萄細胞培養合成花青素的影響［J］. 生物工程學報， 2006， 22（2）： 229-305. DOI：10.3321/j.issn：1000-3061.2006.02.022.

［28］ 楊英， 何峰， 季家興， 等. 四種前體對脹果甘草細胞懸浮培養生產甘草黃酮的調控效果評價［J］. 武漢植物學研究， 2007， 25（5）： 484-489. DOI：10.3969/j.issn.2095-0837.2007.05.012.

［29］ 胡燕梅， 韓曉紅， 周全. 銀杏液體懸浮細胞培養產生黃酮的研究［J］. 江西農業大學學報， 2011， 33（2）： 360-363. DOI：10.3969/ j.issn.1000-2286.2011.02.030.

Effects of Exogenous Substances on the Content of Secondary Metabolites in Arnebia euchroma Johnst Hairy Roots

GE Sunan1， ZHANG Shengxuan1， WANG Fang1，*， WEI Huan1， XIE Wenlei1， XIE Jian1， LI Chi1， ZHAO Hu2，*
（1. College of Agronomy， Xinjiang Agricultural University， ürümqi 830052， China；2. School of Biotechnology and Food Engineering， Fuyang Normal College， Fuyang 236037， China）

Objective： To investigate the effects of different exogenous substances on the content of secondary metabolites in Arnebia euchroma Johnst hairy roots and consequently provide a theoretical basis for further development and utilization of Arnebia euchroma Johnst hairy roots. Methods： The contents of secondary metabolites were measured by spectrophotometry from Arnebia euchroma Johnst hairy roots cultured in the presence of AgNO3alone and in combination with L-phenylalanine or L-phenylalanine plus sodium acetate. Results： The contents of shikonin， total polyphenols and total flavonoids in hairy roots cultured for 30 days at an AgNO3concentration of 5 mg/L respectively increased by 6， 1.3， 1.8 times compared with the control （CK）. In addition， when AgNO3concentration was 3 mg/L， the anthocyanin content reached its peak， a 1.4-fold increase over the control. Peak contents of shikonin， anthocyanins and total flavonoids were observed after culture in the presence of both 25 mg/L L-phenylalanine and 5 mg/L AgNO3， which were increased by 1.3， 2.4 and 2.2 times， respectively，compared with the CK. The content of total polyphenols was not higher than that in the CK， but it was still the highest among three treatment groups. The contents of shikonin and total polyphenols reached their highest levels at 50 mg/L among different sodium acetate concentrations combined with 5 mg/L AgNO3and 25 mg/L L-phenylalanine， whereas the highest content of anthocyanin was observed when the sodium acetate concentration was 200 mg/L. The content of total flavonoids in hairy roots with sodium acetate treatments at various concentrations was significantly lower than that of the control. Conclusion：The addition of AgNO3and L-phenylalanine can cooperatively promote the accumulation of secondary metabolites in Arnebia euchroma Johnst hairy roots. Meanwhile， AgNO3， L-phenylalanine and sodium acetate can cooperatively promote the accumulation of shikonin， polyphenol and anthocyanin， but significantly inhibit the accumulation of total flavonoids.

Arnebia euchroma （Royle） Johnst； hairy roots； secondary metabolites； elicitor； precursor

10.7506/spkx1002-6630-201609030

Q943.1

A

1002-6630（2016）09-0160-05

葛素囡， 張生翾， 王芳， 等. 外源物質對新疆紫草毛狀根次生代謝產物含量的影響［J］. 食品科學， 2016， 37（9）： 160-164. DOI：10.7506/spkx1002-6630-201609030. http：//www.spkx.net.cn

GE Sunan， ZHANG Shengxuan， WANG Fang， et al. Effects of exogenous substances on the content of secondary metabolites in Arnebia euchroma Johnst hairy roots［J］. Food Science， 2016， 37（9）： 160-164. （in Chinese with English abstract） DOI：10.7506/spkx1002-6630-201609030. http：//www.spkx.net.cn

2015-05-18

國家自然科學基金地區科學基金項目（31060205）；阜陽師范學院自然科學研究項目（2013FSKJ04ZD）

葛素囡（1989—），女，碩士研究生，研究方向為植物細胞工程。E-mail：940747841@qq.com

*通信作者：王芳（1962—），女，教授，碩士，研究方向為植物細胞工程。E-mail：Wangfang1hao@126.com趙胡（1977—），男，講師，博士，研究方向為植物次生代謝調控。E-mail：zhaohu8196@sina.com