基于HepG2細胞模型的香菇柄粉多酚抗氧化及抗增殖活性

李 謠，陳金龍，夏春燕，盧可可，吳素蕊，明 建,3,*（.西南大學食品科學學院，重慶 40075；.中華全國供銷合作總社昆明食用菌研究所，云南 昆明 6503；3.西南大學 國家食品科學與工程實驗教學中心，重慶 4 0075）

基于HepG2細胞模型的香菇柄粉多酚抗氧化及抗增殖活性

李 謠1，陳金龍1，夏春燕1，盧可可1，吳素蕊2，明 建1,3,*
（1.西南大學食品科學學院，重慶 400715；2.中華全國供銷合作總社昆明食用菌研究所，云南 昆明 650223；3.西南大學 國家食品科學與工程實驗教學中心，重慶 4 00715）

以人肝癌細胞HepG2為細胞模型，經過不同粉碎條件處理香菇柄粉后，研究香菇柄粉游離酚的細胞抗氧化及多酚抗增殖活性。結果表明：香菇柄粉游離酚的細胞抗氧化活性（cellular antioxidant activity，CAA）值為9.90～24.22 μmol QE/100 g，普通粉碎組最高，納米超微粉碎組最低，CAA值隨粉體粒徑減小而降低（不經磷酸鹽緩沖液（phosphate buffer saline，PBS）清洗）；氣流超微粉碎組CAA值為0.65 μmol QE/100 g，普通粉碎組和納米超微粉碎組未表現出細胞抗氧化活性（PBS清洗）。香菇柄粉游離酚的抗增殖活性（半數有效濃度（median effective concentration，EC50）值）為1.888～5.213 mg/mL，結合酚的抗增殖活性（EC50值）為2.225～4.751 mg/mL，氣流超微粉碎處理對香菇柄粉結合酚的抗增殖活性有增強作用。

香菇柄粉；多酚；細胞抗氧化活性；抗增殖活性

香菇（Lentinus edodes（Berk.）sing）又名香蕈、香信、香菌、冬菇，是僅次于雙胞蘑菇的世界第二大食用菌[1]。作為一種藥食兩用真菌，香菇不僅營養豐富，還具有降血脂、降血壓、抗菌、延緩衰老、免疫調節和抗腫瘤等多種生理活性[2-4]。香菇的食用部分由菌傘和菌柄兩部分組成，分別占干質量的75%和25%，兩者的化學成分有很大的不同，劉存芳等[5]研究發現每100 g干香菇菌柄中含糖類物質73 g、蛋白質6.8 g、脂溶性成分2.68 g、灰分6.1 g，還含有大量的維生素、礦物質，具有較高的營養價值，但是菌柄因不溶性粗纖維含量較高（約38 g/100 g），難以咀嚼，多被丟棄，不僅造成了極大的浪費還產生了許多環境問題[6]。目前，微粉化已被證明是一種改善富含纖維植物食品質地的有效方法，所以將香菇柄進行粉碎處理是對其開發利用的有效途徑之一[7-9]。

對于香菇多酚抗氧化活性的研究，目前主要是通過化學分析法進行測定，主要方法有1,1-二苯基-2-三硝基苯肼（1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl，DPPH）自由基清除法、2,2-聯氮-二（3-乙基-苯并噻唑-6-磺酸）二銨鹽（2,2’-azinobis-(3-ethylbenzthiazoline-6-sulphonate)，ABTS）自由基清除法、羥自由基清除法、鐵還原力法、β-胡蘿卜素亞油酸法以及氧化自由基吸收能力法（oxygen radical absorbance capacity，ORAC）等，如Cheung等[10]研究發現香菇多酚比草菇具有更強的自由基清除活性，在β-胡蘿卜素和亞油酸體系的抗氧化活性達到75.9%（20 mg/mL），DPPH自由基清除率為55.4%（6 mg/mL），自由基介導的紅細胞氧化性溶血抑制率為94.9%（5 mg/mL）。但是化學抗氧化分析方法是在體外進行的，不能反映機體對抗氧化劑的攝入情況以及機體內復雜的環境對抗氧化劑作用效果的影響。美國康奈爾大學劉瑞海教授于2007年建立了細胞抗氧化活性（cellular antioxidant activity，CAA）評價方法[11-13]。此方法以人體肝癌細胞HepG2為實驗模型，觀察抗氧化物質在細胞內的生物利用、分布、吸收和代謝等情況，比傳統的化學分析法更具有生物相關性，且實驗周期短、測定程序簡單，是一種測定抗氧化活性更合理的方法。

本實驗將香菇柄干燥后分別進行普通粉碎、氣流超微粉碎、納米超微粉碎處理，以人肝癌細胞HepG2為細胞模型，研究不同粉碎處理后香菇柄粉多酚物質的細胞抗氧化及抗增殖活性，為合理利用香菇柄、開發香菇柄功能產品提供一定的理論依據。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

香菇“808”購于重慶北碚農貿市場。

丙酮、氫氧化鈉、濃鹽酸、正己烷、乙酸乙酯、甲醇、沒食子酸、福林-酚試劑、碳酸鈉均為分析純 成都科龍化工試劑廠；二甲苯、磷酸鹽緩沖液（phosphate buffer saline，PBS）均為分析純 美國Fisher公司；2,2’-偶氮二異丁基脒二鹽酸鹽（2,2’-azobis(2-amidinopropane) dihydrochloride，ABAP）為分析純 美國Wako化學試劑公司；二甲基亞砜（dimethyl sulfoxide，DMSO）、2’,7’-二氯熒光素二乙酸酯（2’,7’-dichlorodihydrofluorescein diacetate，DCFH-DA）均為分析純，青霉素、鏈霉素、慶大霉素均為生化試劑 美國Sigma公司；Hank平衡鹽溶液（Hank balanced salt solution，HBSS）、WME培養基（William’s medium E）、表皮生長因子、肝素、胰島素以及其他細胞培養試劑均為生化試劑 美國Gibco生物科技公司；胎牛血清（fetal bovine serum，FBS） 美國Atlanta生物科技公司；HepG2人體肝癌細胞 美國模式培養物集存庫（American Type Culture Collection，ATCC）。

1.2 儀器與設備

JYL-C012型高速粉碎機 九陽股份有限公司；YSC-701型超微粉碎機 北京燕山正德機械有限公司；LNJ-120型氣流粉碎機 綿陽流能粉體設備有限公司；CJM-SY-B型高能納米沖擊磨 秦皇島市太極環納米制品有限公司；BHC-II A2系列生物安全柜 蘇凈安泰空氣技術有限公司；5180R型冷凍離心機 德國Eppendorf公司；DM IRB型倒置顯微鏡 德國Leica儀器有限公司；HERA cell 240型CO2培養箱 美國Thermo公司；T75細胞培養瓶、96孔黑色底部透明微孔板、96孔白色底部透明微孔板 美國Corning公司。

1.3 方法

1.3.1 材料預處理

香菇采摘后24 h內運輸至實驗室，挑選無病蟲害、大小均勻的個體，小心用水洗干凈后，將香菇柄沿香菇傘1 cm處切分。擺放在通風處至表面干燥，低溫烘干（45～60 ℃）至水分含量低于10%。

1.3.2 不同粉碎方式處理

普通粉碎香菇柄粉（coarse milled stipe，CMS）：烘干的香菇柄經高速粉碎機粉碎后，過100 目篩，得到普通粉碎香菇柄粉；氣流超微粉碎香菇柄粉（jet milled stipe，JMS）：將普通粉碎的香菇柄粉用LNJ-120氣流粉碎機粉碎2 h，得到氣流超微粉碎香菇柄粉，經Mastersizer 2000激光粒度測定儀測得香菇柄粉平均粒徑分別為7.00、7.05 μm；納米超微粉碎香菇柄粉（nanomicronized stipe，NMS）：將普通粉碎的香菇柄粉用CJM-SY-B高能納米沖擊磨（不銹鋼粉碎腔體，氧化鋯球粉碎磨介，5～35 ℃調頻）粉碎處理6 h，制得納米超微粉碎香菇柄粉，經Mastersizer 2000激光粒度測定儀測得香菇柄粉平均粒徑分別為0.54 μm和0.46 μm，最后于干燥陰涼處密封保藏，備用。

1.3.3 香菇柄粉多酚制備[14-15]

準確稱取香菇柄粉2.0 g，加入丙酮（80%，4 ℃冷藏）50 mL，漩渦振蕩5 min后用均質機（12 000 r/min）均質3 min，于高速離心機中2 500×g分離10 min，取上清液。濾渣重復以上操作，并合并2 次的提取液，抽濾后將濾液轉移至圓底燒瓶，用旋轉蒸發儀在45 ℃旋轉蒸干。用超純水定容至25 mL，－80 ℃條件下貯存備用，此為香菇柄粉游離酚（free polyphenol）。向殘渣中加入20 mL 2 mol/L NaOH溶液，在氮氣環境下消化90 min，用鹽酸調至pH 2.0，然后使用正己烷除脂并棄去油脂層，加入30 mL乙酸乙酯，振蕩10 min后，4 000×g離心10 min，取上清液。乙酸乙酯重復提取5 次，合并上清液，抽濾后將濾液轉移至圓底燒瓶，用旋轉蒸發儀在45 ℃旋轉蒸干。用超純水定容至25 mL，－80℃條件下貯存備用，此為香菇柄粉結合酚（bound polyphenol）。多酚含量用福林-酚法進行測定[16]。

1.3.4 細胞培養

[17-18]的方法進行培養。HepG2細胞在含5% FBS的完全生長培養基（WME、2 mmol/L谷氨酸鹽、10 mmol/L 4-羥乙基哌嗪乙磺酸（2-[4-(2-hydroxyethyl)-1-piperazinyl]ethanesulfonic acid，Hepes）、5 μg/mL胰島素、0.05 μg/mL氫化可的松、50 U/mL青霉素、50 μg/mL鏈霉素、100 μg/mL慶大霉素）中，37 ℃、5% CO2條件下培養。

1.3.5 細胞抗氧化活性測定[12,18]

將對數生長期的HepG2細胞接種到96孔板中（只接種內部孔，為防止邊緣效應），每孔細胞數約為6×104個，于37 ℃、5% CO2條件下培養24 h后，移去殘余培養基，PBS清洗1 次。加入新鮮培養基、香菇柄粉游離酚（終質量濃度梯度為0、1、2、4、6、8、10 mg/mL）、DCFH-DA熒光探針溶液（終濃度為25 μmol/L）以及標準品槲皮素（終濃度梯度為0、1、2、4、6、8、10 μmol/L）。

將上述96孔板，于37 ℃、5% CO2條件下繼續培養1 h，移去殘余培養液，然后加入100 μL/孔PBS，清洗一次或不經PBS清洗，加入100 μL/孔ABAP溶液（終濃度為600 μmol/L），然后，立即于發射波長538 nm，入射光波長485 nm條件下測定熒光強度，每5 min測定一次，測定1 h。對照組用DCFH-DA和ABAP處理，不加香菇柄粉游離酚；空白組用DCFH-DA處理，不加入ABAP和香菇柄粉游離酚。

減去空白和初始熒光值后，香菇柄粉游離酚質量濃度對應時間-熒光值曲線下的面積即為CAA值，計算公式如下。

式中：∫SA為加入不同質量濃度香菇柄粉游離酚提取物后的時間-熒光值曲線下積分面積；∫CA為空白組的時間-熒光值曲線下積分面積。

香菇柄粉游離酚提取物的半數有效質量濃度（median effective concentration，EC50）根據lg（fa/fu）對lg（劑量）的中效原理來計算[19]，式中：fa為香菇柄粉游離酚作用效應（CAA值）；fu為（1－CAA）值，EC50值以3 次平行實驗結果取計算平均值，再將EC50值轉化為CAA值。香菇柄粉游離酚的CAA值以每100 g香菇柄粉相當于槲皮素的含量表示（μmol QE/100 g）。

1.3.6 細胞毒性測定[12,16-17]

取對數生長期的HepG2細胞接于96孔白板，使每孔細胞數約為4×104個，于37 ℃、5% CO2培養24 h后，移去殘余培養基，PBS清洗1 次。其中，樣品孔中加入100 μL含香菇柄粉多酚的培養基（每個質量濃度梯度做3 個平行孔）?？刂瓶字屑尤?00 μL的培養基，于37 ℃、5% CO2條件下培養24 h后開始測板：移去96孔板內殘余培養基，PBS清洗1 次，加50 μL/孔亞甲基藍溶液（98% HBSS、0.67%戊二醛、0.6%亞甲基藍）染色，于37 ℃培養1 h，然后移去染色液，并用去離子水清洗該96孔板至清洗液無色，吸去板中多余水分并風干2～3 min，加100 μL/孔洗脫液（49% PBS、50%乙醇、1%醋酸），然后漩渦振蕩20 min，使孔內已染色的細胞形成均勻的細胞懸浮液。最后，于570 nm波長處讀取各孔中染色細胞懸浮液的吸光度。減少的吸光度計算公式如下。

1.3.7 細胞抗增殖能力的測定[12,20-21]

取對數生長期的HepG2細胞接于96孔板，使每孔細胞數約為2.5×104個，于37 ℃、5% CO2培養24 h后，移去殘余培養基，PBS清洗1 次。其中，樣品孔中加入100 μL含香菇柄粉多酚的培養基（每個質量濃度梯度做3個平行孔），控制孔中加入100 μL的培養基，于37 ℃、5% CO2條件下培養72 h后開始測板，測板操作同上述細胞毒性實驗。細胞增殖抑制率計算公式如下。

1.4 數據處理

數據采用SigmaPlot12.5統計分析，實驗重復3次，結果用±s表示，并用SPSS軟件進行統計處理，采用方差分析（analysis of variance，ANOVA）進行Turkey多重比較分析（P＜0.05）。

2 結果與分析

2.1 不同粉碎方式處理后的香菇柄粉中多酚含量

不同粉碎方式處理后香菇柄粉中多酚含量如圖1所示?？傮w來看，香菇柄粉總酚含量約為4 mg/g，主要以游離酚為主，約占總多酚含量的94%。與普通粉碎組相比，氣流超微粉碎處理組中總酚含量顯著上升（P＜0.05），而游離酚與結合酚變化差異不顯著；在納米超微粉碎處理組中，游離酚、結合酚、總酚含量均顯著下降（P＜0.05）。綜上所述，氣流超微粉碎處理組效果優于納米超微粉碎組，原因可能是由于氣流超微粉碎機的壓縮氣體在噴嘴處膨脹時可降溫，粉碎過程不伴隨熱量的生成，該處理在較低溫度下既能完成。然而納米超微粉碎是機械的研磨過程，會導致局部升溫，對酚類物質產生一定的破壞[22]。張小利等[16]通過高效液相色譜（high performance liquid hromatography，HPLC）對香菇柄多酚進行檢測發現，香菇柄多酚主要為沒食子酸、兒茶素、咖啡酸、蘆丁、阿魏酸和槲皮素，其中游離酚以沒食子酸和兒茶素為主，結合酚以沒食子酸、兒茶素和槲皮素為主。

圖1 不同粉碎方式處理的香菇柄粉中多酚含量Fig. 1 Polyphenol contents of Lentinus edodes stipe powders with different sizes

2.2 基于HepG2細胞模型的香菇柄粉游離酚細胞抗氧化活性

表1 不同粉碎處理的香菇柄粉游離酚CAA值Table 1 CAA values of free polyphenols inLentinus eodes stipe powders with different sizes μmol QE/100 g

HepG2細胞內ABAP產生的過氧 化氫自由基氧化還原型DCFH生成熒光物氧化型二氯熒光素（2’,7’-dichlorofluorescein，DCF），槲皮素標準品和香菇柄粉游離酚作為抗氧化劑抑制了反應的進行，反映在實驗中即為熒光強度的減小。細胞抗氧化能力的測定采用了2 種處理方法：不經PBS清洗，主要反映抗氧化劑在細胞膜表面的抗氧化活性；PBS清洗，主要反映抗氧化劑在細胞內部的抗氧化活性。由圖2～4可知，槲皮素標準品抑制熒光物DCF生 成的能力明顯強于香菇柄游離酚提取液，在2 種處理方法中，槲皮素標準品并沒有明顯的變化（圖2～4中a、b），而對于香菇柄粉游離酚未經PBS清洗處理組抑制DCF生成的能力明顯強于經PBS清洗處理組（圖2～4中c、d）。

圖2 普通粉碎香菇柄粉中游離酚的細胞抗氧化動力學曲線Fig. 2 Cellular antioxidant activity (CAA) kinetic curve of free polyphenols in coarse-milled Lentinus edodes stipe powder

圖3 氣流超微粉碎香菇柄粉游離酚的細胞抗氧化動力學曲線Fig. 3 CAA kinetic curve of free polyphenols in jet-milled Lentinus edodes stipe powder

圖4 納米超微粉碎香菇柄粉游離酚的細胞抗氧化動力學曲線Fig. 4 CAA kinetic curve of free polyphenols in nano-micronized Lentinus edodes stipe powder

不同粉碎處理后的香菇柄游離酚細胞抗氧化活性（CAA值）如表1所示。在未經過PBS清洗處理組中，香菇柄粉游離酚CAA值順序為CMS-F＞JMS-F＞NMS-F；在經過PBS清洗處理組中，普通粉碎處理組和納米超微粉碎處理組未檢測出具有CAA活性，氣流超微粉碎組CAA值為0.65 μmol QE/100 g，可能是由于氣流超微粉碎處理能增加香菇柄粉游離酚的溶出率，同時改變多酚的物理結構，使其分子大小及顆粒大小降低，同時增加顆粒表面積，使香菇柄粉游離酚能順利進入到細胞內呈現出CAA活性[23-24]。Rosa等[25]研究了小麥糠顆粒大小對其抗氧化能力的影響，結果發現，當小麥糠表面積從0.09 m2增加到0.26～0.30 m2時，其抗氧化能力從30 mmol TEAC/kg增加到45 mmol TEAC/kg。整體而言，氣流超微粉碎處理能在一定程度上增強香菇柄游離酚的CAA活性，在各個粉碎處理組中，不經過PBS清洗處理的CAA活性顯著大于經過PBS清洗處理的CAA活性。

2.3 基于HepG2細胞模型的香菇柄粉多酚抗增殖活性

圖5 普通粉碎香菇柄粉多酚對HepG2細胞的毒性和增殖抑制作用Fig. 5 Inhibitory effect of polyphenols extracts from coarse-milledLentinus edodes stipe powder on human HepG2 liver cancer cells

圖6 氣流超微粉碎香菇柄粉多酚對HepG2細胞的毒性和增殖抑制作用Fig. 6 Inhibitory effect of polyphenols extracts from jet-milled Lentinus edodes stipe powder on human HepG2 liver cancer cells

不同粉碎方式處理的香菇柄粉中多酚對HepG2細胞的抗增殖活性和細胞毒性如圖5～7所示。普通粉碎處理組中，游離酚（圖5a）在質量濃度≥1.71 mg/mL時顯示細胞毒性，此時對HepG2細胞增殖的抑制率為45.02%；結合酚（圖5b）在質量濃度≥4 mg/mL時顯示細胞毒性，此時對HepG2細胞增殖的抑制率為89.33%。氣流超微粉碎處理組中，游離酚（圖6a）在質量濃度≥2.85 mg/mL時顯示細胞毒性，此時對HepG2細胞增殖抑制率為55.14%；結合酚（圖6b）在質量濃度≥1.71 mg/mL時顯示細胞毒性，此時對HepG2細胞增殖抑制率為44.87%。納米超微粉碎處理組中，游離酚（圖7a）和結合酚（圖7b）分別在質量濃度≥3.24 mg/mL、≥4.80 mg/mL時顯示細胞毒性，此時對HepG2細胞增殖抑制率均低于20%，可能是由于香菇柄經過納米超微粉碎處理后，其粒徑太小（＜1 μm），一方面容易造成香菇柄粉粉體凝結而影響多酚的溶出，另一方面對多酚分子本身也造成一定的破壞，從而使其抗增殖活性降低[26]。由此可知，當達到一定質量濃度時，香菇柄多酚均顯示出一定毒性，而在無細胞毒性質量濃度范圍內，香菇柄粉游離酚和結合酚提取物對HepG2細胞增殖均有抑制作用。

圖7 納米超微粉碎香菇柄粉多酚對HepG2細胞的毒性和增殖抑制作用Fig. 7 Inhibitory effect of polyphenols extracts from nano-micronizedLentinus edodes stipe powder on human HepG2 liver cancer cells

不同粉碎方式處理后的香菇柄粉中多酚對HepG2細胞的抗增殖EC50值和細胞毒性CC50值如表2所示。香菇柄粉中游離酚EC50值從1.888 mg/mL到5.213 mg/mL，結合酚EC50值從2.225 mg/mL到4.751 mg/mL。其中，在普通粉碎處理組和氣流超微粉碎處理組中，游離酚抗增殖活性高于結合酚，而在納米粉碎處理組中，結合酚抗增殖活性高于游離酚，抗增殖活性大小順序為CMS-F＞JMS-B＞JMS-F＞CMS-B＞NMS-B＞NMS-F。因此，氣流超微粉碎能在一定程度上增強香菇柄結合酚的抗增殖活性，而納米超微粉碎對香菇柄多酚的抗增殖活性并沒有增強作用。

表2 香菇柄粉多 酚對于HepG2細胞的抗增殖能力（EC50）和細胞毒性（CC50Table 2 Antiproliferation (EC50) and cytotoxicity (CC50) of polyphenols from Lentinus edodes stipe powders with different sizes on human HepG2 liver cancer cells

3 結 論

本實驗將香菇柄干燥后分別進行普通粉碎、氣流超微粉碎、納米超微粉碎處理，再以人肝癌細胞HepG2為細胞模型，對不同粉碎處理后香菇柄粉中多酚物質的細胞抗氧化及抗增殖活性進行了研究。結果表明，香菇柄總酚含量約為4 mg/g，主要以游離酚為主，約占總酚的94%。細胞抗氧化活性評價結果顯示，未經PBS清洗處理的香菇柄粉中游離酚CAA值為9.90～24.22 μmol QE/100 g，CAA活性順序為CMS-F＞JMS-F＞NMS-F；在經PBS清洗處理的普通粉碎處理組和納米超微粉碎處理組未檢測出CAA活性，氣流超微粉碎組CAA值為0.65 μmol QE/100 g。因此，未經PBS清洗處理的香菇柄粉中多酚物質的CAA活性顯著大于經過PBS清洗處理的CAA活性。同時，在無細胞毒性濃度范圍內，香菇柄粉游離酚和結合酚提取物對HepG2細胞增殖均有抑制作用，游離酚EC50值為1.888～5.213 mg/mL，結合酚EC50值為2.225～4.751 mg/mL，抗增殖活性大小為CMS-F＞JMS-B＞JMS-F＞CMS-B＞NMS-B＞NMS-F。綜上所述，香菇柄粉多酚具有一定的細胞抗氧化及抗增殖活性，氣流超微粉碎能在一定程度上增強香菇柄粉多酚的細胞抗氧化及抗增殖活性，而納米超微粉碎對香菇柄粉多酚的抗氧化及抗增殖活性并沒有增強作用。

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Antioxidant and Antiproliferative Activity of Polyphenols in Lentinus edodes Stipe Powder on HepG2 Cells

LI Yao1, CHEN Jinlong1, XIA Chunyan1, LU Keke1, WU Surui2, MING Jian1,3,*
(1. College of Food Science, Southwest University, Chongqing 400715, China; 2. Kunming Edible Fungi Institute, All China Federation of Supply and Marketing Cooporatives, Kunming 650223, China; 3. National Food Science and Engineering Experimental Teaching Center, Southwest University, Chongqing 400715, China)

The antioxidant activity of free phenols and anti-proliferation activity of polyphenols in Lentinus edodes stipe powder after different crushing treatments on human liver cancer HepG2 cells were investigated in this study. The results showed that the cellular antioxidant activity (CAA) decreased with the decrease in power size. Specifi cally, the CAA value of free phenols from Lentinus edodes stipe powder ranged from 9.90 to 24.22 μmol QE/100 g; the coarse-ground group indicated the highest CAA value, while and the nano-ground group exhibited the lowest CAA level. The CAA of free phenols in Lentinus edodes stipe powder without washing with phosphate buffer saline (PBS) became lower with decreasing particle size. With PBS washing, only the jet-milled group had antioxidant activity with a CAA value of 0.65 μmol QE/100 g. The antiproliferative activity assay showed that EC50values of free phenols from Lentinus edodes stipe powder were 1.888–5.213 mg/mL while those of bound phenols were 2.225–4.751 mg/mL. This study shows that jet milling can improve the antiproliferative activity of Lentinus edodes stipe powder.

Lentinus edodes stipe powder; polyphenols; cellular antioxidant activity; antiproliferative activity

10.7506/spkx1002-6630-201611033

R151.2

A

1002-6630（2016）11-0190-07

李謠, 陳金龍, 夏春燕, 等. 基于HepG2細胞模型的香菇柄粉多酚抗氧化及抗增殖活性[J]. 食品科學, 2016, 37(11): 190-196. DOI:10.7506/spkx1002-6630-201611033. http://www.spkx.net.cn

LI Yao, CHEN Jinlong, XIA Chunyan, et al. Antioxidant and antiproliferative activity of polyphenols in Lentinus edodes stipe powder on HepG2 cells[J]. Food Science, 2016, 37(11): 190-196. (in Chinese with English abstract) DOI:10.7506/ spkx1002-6630-201611033. http://www.spkx.net.cn

2015-12-15

國家自然科學基金面上項目（31471576）；“十二五”國家科技支撐計劃項目（2013BAD16B01）

李謠（1992—），女，碩士研究生，研究方向為食品化學與營養學。E-mail：liyao427@163.com

*通信作者：明建（1972—），男，教授，博士，研究方向為食品化學與營養學。E-mail：mingjian1972@163.com