夏艷秋,王 娜,闕菡雅,徐小艷,薛 騰,燕 貞,姚 武,劉 瑩,周 舫#
1)鄭州大學公共衛生學院勞動衛生學教研室 鄭州 450001 2)鄭州市疾病預防控制中心公共衛生科 鄭州 450000 3)鄭州大學第一附屬醫院呼吸內科 鄭州 450052
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NOX1 siRNA對TNF-α誘導的A549細胞凋亡的影響*
夏艷秋1),王娜1),闕菡雅2),徐小艷1),薛騰1),燕貞1),姚武1),劉瑩3)#,周舫1)#
1)鄭州大學公共衛生學院勞動衛生學教研室 鄭州 4500012)鄭州市疾病預防控制中心公共衛生科 鄭州 4500003)鄭州大學第一附屬醫院呼吸內科 鄭州 450052
A549細胞;NOX1;TNF-α;凋亡
目的:探討NOX1對TNF-α誘導的A549細胞凋亡的影響。方法:將A549細胞分為3組,空白組、TNF-α組和TNF-α+NOX1 siRNA組。TNF-α+NOX1 siRNA組細胞采用瞬時轉染技術轉染特異性NOX1 siRNA,轉染12 h后用含TNF-α(10 μg/L)的培養基繼續培養;空白組和TNF-α組細胞分別用培養基和含TNF-α的培養基培養。48 h后,采用Annexin V-FITC和PI雙染法檢測細胞凋亡率,DCFH熒光標記法檢測細胞中ROS的表達量,Western blot法檢測NOX1及p-JNK蛋白的表達水平。結果:與空白組相比,TNF-α組細胞凋亡率和ROS表達量升高(P<0.05),NOX1和p-JNK蛋白表達水平升高(P<0.05);與TNF-α組比較,TNF-α+NOX1 siRNA組細胞凋亡率和ROS表達量降低(P<0.05),細胞中NOX1和p-JNK蛋白表達水平也降低(P<0.05)。結論:NOX1可能通過增加ROS的表達,進而激活JNK/MAPK信號通路,引起A549細胞的凋亡。
肺癌是目前中國發病率和死亡率最高的惡性腫瘤[1]。研究[2-3]發現,當機體受到外界刺激時會產生大量的活性氧(reactive oxygen species, ROS),ROS作為第二信使參與細胞間信號通路的調控,它所介導的信號通路如MAPK、JNK、PI3K/Akt等對細胞的生長、增殖、凋亡起著重要的作用。機體產生ROS的途徑有很多,NADPH氧化酶NOX家族蛋白被認為是ROS的主要來源[4]。肺癌發生發展過程中需要ROS的參與[2]。NOX家族蛋白在肺組織中有著不同程度的表達,其中NOX1在肺癌組織中的表達水平高于正常組織[5]。目前關于NOX家族蛋白的研究多集中在高血壓、動脈粥樣硬化及急性肺損傷等,關于肺癌的研究較少。A549細胞為人肺腺癌細胞,可以穩定傳代。已有研究[6]發現,NOX1是腫瘤壞死因子(tumor necrosis factor-α, TNF-α)介導的細胞氧化應激內源性ROS生成的重要催化酶。作者采用TNF-α刺激A549細胞,并用siRNA沉默NOX1基因,觀察細胞凋亡率的改變,以及NOX1、p-JNK和ROS表達的改變,探討NOX1在A549細胞凋亡中的作用。
1.1材料A549細胞來自中科院上海細胞生物研究所,無支原體胎牛血清購自美國Gemini公司,RPMI 1640培養基購自北京索萊寶科技有限公司,兔抗人NOX1單克隆抗體、兔抗人p-JNK單克隆抗體均購自英國Abcam公司,羊抗兔IgG購自美國Cell 公司,Lipofectamine2000轉染試劑購自美國Invitrogen公司,細胞凋亡檢測試劑盒購自德國美天妮公司,Sunrise remote酶標儀購于奧地利TECAN公司,DYCZ-24DN電泳儀購于北京市六一儀器廠,流式細胞儀購于美國BD公司。
1.2NOX1 siRNA對A549細胞的干擾效果檢測
1.2.1轉染將A549細胞密度調整到(0.8~1.0)×105mL-1后接種至6孔板,每孔加2 mL單細胞懸液。細胞融合達到50%~70%時,采用Lipofectamine2000轉染試劑進行轉染,Mock組、NC組和NOX1 siRNA組分別加入轉染試劑、陰性對照siRNA和FAM-NOX1 siRNA。siRNA均由上海吉瑪制藥技術有限公司合成。轉染6~12 h后更換新的無抗生素培養基,熒光顯微鏡下觀察熒光及轉染情況并拍照;然后制備單細胞懸液,上流式細胞儀進行細胞分類和計數;確定轉染條件使其轉染率穩定在80%以上。
1.2.2轉染細胞中NOX1 mRNA的檢測轉染24 h后,Real-Time PCR法檢測細胞中NOX1 mRNA的表達。PCR引物序列見表1。反應體系25 μL:2×UltraSYBR Mixture 12.5 μL,10 μmol/L上、下游引物各1 μL,模板DNA 2 μL,無RNase水8.5 μL。反應條件: 95 ℃預變性10 min; 95 ℃變性15 s,59 ℃退火1 min,40個循環。在60 ℃收集SYBR GreenⅠ信號。熔解曲線分析過程:95 ℃ 15 s,60 ℃ 1 min,95 ℃ 15 s,60 ℃ 15 s 。以β-actin為內參照。采用 2-ΔΔCt法計算NOX1 mRNA的相對表達水平。

表1 PCR引物
1.3實驗分組實驗分為空白組、TNF-α組及TNF-α+NOX1 siRNA組。將A549細胞按1.2.1篩選出的實驗條件進行培養和轉染??瞻捉M用培養基培養,TNF-α組用含10 μg/L TNF-α的培養基培養48 h。TNF-α+NOX1 siRNA組細胞轉染NOX1 siRNA 12 h后用含10 μg/L TNF-α的培養基繼續培養48 h,然后進行以下檢測。
1.4觀測指標
1.4.1細胞凋亡率采用Annexin V-FITC和碘化丙啶(PI)雙染法檢測細胞凋亡率。用胰蛋白酶消化細胞,加入1×Binding Buffer 1 mL,1 000 r/min離心10 min,重復一次。加入1×Binding Buffer 100 μL吹打混勻,加入10 μL Annexin V-FITC避光混勻后放置15 min。用PBS清洗細胞2次,用1×Binding Buffer 500 μL重懸細胞后加入5 μL PI,立即上流式細胞儀檢測細胞凋亡,計算細胞凋亡率。重復3次。

1.4.3細胞中ROS的表達采用DCFH熒光標記法檢測細胞中ROS水平。按DCFH-DA終濃度為10 μmol/L加樣;清洗并消化細胞后,用稀釋好的探針重懸,置于37 ℃培養箱中孵育30 min,每隔3~5 min顛倒混勻一次,使探針與細胞充分接觸;用PBS洗滌細胞3次,以除去未進入細胞的DCFH-DA;用0.5 mL PBS重懸細胞,上流式細胞儀檢測,激發波長488 nm,發射波長525 nm,用FL1收集DCF的熒光信號。
1.5統計學處理采用SPSS 21.0對數據進行統計學分析,各指標的比較使用單因素方差分析,兩兩比較采用LSD-t法,檢驗水準α=0.05。
2.1NOX1 siRNA對A549細胞的干擾效果最終確定的A549細胞NOX1 siRNA的轉染條件為:6孔板;單細胞懸液密度為1.0×105mL-1,每孔2 000 mL;siRNA 8 μL/孔;Lipofectamine2000試劑4 μL/孔。在此條件下轉染24 h,Mock組、NC組及NOX1 siRNA組細胞中NOX1 mRNA的相對表達水平分別為(0.96±0.08)、(1.04±0.06)和(0.25±0.03),3組比較差異有統計學意義(F=103.380,P<0.001),提示所選用的NOX1 siRNA在確定的轉染條件下可有效沉默A549細胞NOX1基因的表達。
2.23組細胞凋亡率的比較見表2。與空白組相比,TNF-α組和TNF-α+NOX1 siRNA組細胞凋亡率較高(P<0.05);與TNF-α組比較,TNF-α+NOX1 siRNA組細胞凋亡率較低(P<0.05)。
2.33組細胞中NOX1和p-JNK蛋白表達水平的比較見圖1和表2。TNF-α組細胞NOX1與p-JNK蛋白表達水平較空白組升高(P<0.05);TNF-α+NOX1 siRNA組較TNF-α組降低(P<0.05)。

1:空白組;2:TNF-α組;3:TNF-α+NOX1 siRNA組。圖1 3組A549細胞中NOX1及p-JNK 蛋白的表達
2.43組細胞中ROS表達量的比較見表2。與空白組相比,TNF-α組和TNF-α+NOX1 siRNA組ROS水平上升(P<0.05);與TNF-α組比較,TNF-α+NOX1 siRNA組ROS水平下降(P<0.05)。

表2 3組細胞中NOX1和p-JNK蛋白表達水平、ROS表達量及細胞凋亡率的比較
*:與空白組比較,P<0.05;#:與TNF-α組比較,P<0.05。
研究[7]表明,NOX1與腫瘤的發生發展關系密切。Arnold等[8]在一個小鼠模型研究中發現,采用NOX1抑制劑過氧化氫酶抑制其表達后可減緩細胞的增殖,抑制腫瘤的形成。作者所在課題組前期實驗篩選出能夠抑制NOX1表達的siRNA,用siRNA特異性抑制NOX1表達后能夠抑制A549細胞的增殖活性,降低細胞內ROS表達量,但是細胞凋亡率卻沒有明顯變化,可能與NOX家族的其他成員在A549細胞中的表達有關,各成員之間可能存在交互作用,共同調控細胞的凋亡通路[9]。
為了進一步研究NOX1在A549細胞凋亡中的作用,作者采用TNF-α刺激A549細胞,發現細胞凋亡率增加,細胞中ROS表達量升高,同時NOX1和p-JNK蛋白表達水平也升高;用siRNA抑制NOX1的表達后,細胞凋亡率降低,細胞中ROS表達量和p-JNK蛋白表達水平也降低。TNF-α所誘導的細胞凋亡一部分是通過NOX1及其產生的ROS來完成的。Zanetti等[10]發現尼古丁能夠通過激活NOX1而使內源性ROS升高,從而導致肺上皮細胞纖維化,誘導細胞凋亡;采用NOX1抑制劑或是NOX1 siRNA特異性抑制其表達后,細胞凋亡率下降。這與作者此次研究的結果一致。TNF-α作用于細胞后,激活細胞內的腫瘤壞死因子受體1(TNFR1),該受體與NOX1相結合后,位于啟動子區域的NOX1結合蛋白GEL1和DDX19A表達量明顯上升,NOX1基因被激活[11]。NOX1蛋白表達水平上升引起相應的ROS水平升高,激活JNK的磷酸化引起MAPK通路介導的細胞凋亡。由此可見,在氧化應激狀態下,A549細胞中p-JNK表達水平與NOX1蛋白有關,NOX1可能通過影響ROS表達量來調控p-JNK的表達。JNK的活化與ROS 誘導的凋亡信號調節激酶1(ASK1) 有關,ASK1在ROS介導的JNK通路活化過程中起橋梁作用[12]。
綜上所述,NOX1可能通過增加ROS的表達,進而激活JNK/MAPK信號通路,引起A549細胞的凋亡。
[1]YU S,YANG CS, LI J,et al.Cancer prevention research in China[J].Cancer Prev Res(Phila),2015,8(8):662
[2]ROY K,WU Y,MEITZLER JL,et al.NADPH oxidases and cancer[J].Clin Sci,2015,128(12):863
[3]BRANDES RP,WEISSMANN N,SCHRODER K.Nox family NADPH oxidases:molecular mechanisms of activation[J].Free Radic Biol Med,2014,76:208
[4]BEDARD K,KRAUSE KH.The NOX family of ROS-generating NADPH oxidases:physiology and pathophysiology[J].Physiological Reviews,2007,87(1):245
[5]YAN S,LIU G,PEI C,et al.Inhibition of NADPH oxidase protects against metastasis of human lung cancer by decreasing microRNA-21[J].Anticancer Drugs,2015,26(4):388
[6]KIM KA,KIM JY,LEE YA,et al.NOX1 participates in ROS-dependent cell death of colon epithelial Caco2 cells induced byEntamoebahistolytica[J].Microbes Infect,2011,13(12/13):1052
[7]SANCHO P,FABREGAT I.NADPH oxidase NOX1 controls autocrine growth of liver tumor cells through up-regulation of the epidermal growth factor receptor pathway[J].J Biol Chem,2010,285(32):24815
[8]ARNOLD RS, SHI J, MURAD E,et al.Hydrogen peroxide mediates the cell growth and transformation caused by the mitogenic oxidase Nox1[J].Proc Natl Acad Sci U S A,2001,98(10):5550
[9]徐小艷,王曉衛,闕菡雅,等.沉默NOX1表達對A549細胞增殖的影響[J].鄭州大學學報(醫學版),2016,51(3):330
[10] ZANETTI F,GIACOMELLO M,DONATI Y,et al.Nicotine mediates oxidative stress and apoptosis through cross talk between NOX1 and Bcl-2 in lung epithelial cells[J].Free Radic Biol Med,2014,76:173
[11] 徐采云,李理,袁偉鋒,等.Nox1基因啟動子表達載體的構建[J]. 熱帶醫學雜志,2013(5):528
[12]CIRCU M L,AW T Y.Reactive oxygen species,cellular redox systems,and apoptosis[J].Free Radic Biol Med,2010,48(6):749
(2016-03-21收稿責任編輯王曼)
Influence of NOX1 siRNA on apoptosis of A549 cells induced by TNF-α
XIAYanqiu1),WANGNa1),QUEHanya2),XUXiaoyan1),XUETeng1),YANZhen1),YAOWu1),LIUYing3),ZHOUFang1)
1)DepartmentofOccupationalHealth,CollegeofPublicHealth,ZhengzhouUniversity,Zhengzhou450001 2)DepartmentofPublicHealth,CenterforDiseasePreventionandControlofZhengzhou,Zhengzhou4500003)DepartmentofRespiratoryDiseases,theFirstAffiliatedHospital,ZhengzhouUniversity,Zhengzhou450052
A549 cell;NOX1;TNF-α;apoptosis
Aim: To investigate the effect of NOX1 on apoptosis of A549 cells induced by TNF-α. Methods: A549 cells were allocated into 3 groups:blank control group,TNF-α group and TNF-α+NOX1 siRNA group. Cells in TNF-α+NOX1 siRNA group were transfected with NOX1 siRNA through the transient transfection technology for 12 h,then cultured with TNF-α(10 μg/L) for 48 h. Cells in blank control group and TNF-α group were only cultured with medium and TNF-α(10 μg/L) for 48 h,respectively.After culture, the apoptosis rate was detected by Annexin V-FITC and PI staining,the ROS level in cells was detected by DCFH fluorescent probe method, and the expressions of NOX1 and p-JNK protein were detected through Western blot.Results: Compared with blank control group,the apoptosis rate,ROS level and the expres-sions of NOX1 and p-JNK were increased in TNF-α group(P<0.05); while compared with TNF-α group, the apoptosis rate,ROS level and the expressions of NOX1 and p-JNK were decreased in TNF-α+NOX1 siRNA group(P<0.05).Conclusion: NOX1 could increase ROS level, then active JNK/MAPK signal pathway, and induce A549 cell apoptosis.
10.13705/j.issn.1671-6825.2016.05.009
周舫,女,1974年7月生,博士,教授,研究方向:職業腫瘤和應激醫學,E-mail: zhoufang23@sina.com;劉瑩,女,博士,副主任醫師,研究方向:支氣管肺癌和支氣管哮喘的發病機制與早期診治,E-mail:66862001@163.com
*河南省高等學校重點科研項目16A330008
R734.2