酸漿種子誘導分化試驗*

王　丹　舒　鈺

（黑龍江省林業科學研究所，哈爾濱　150081）

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酸漿種子誘導分化試驗*

王丹舒鈺

（黑龍江省林業科學研究所，哈爾濱150081）

摘要：采用MS基本培養基，添加不同種類和不同濃度的植物激素，通過變溫冷凍處理種子，將無污染的酸漿種子進行組織培養試驗，誘導發芽及分化，從而篩選酸漿種子誘導分化較適合的培養基。

關鍵詞：酸漿；種子；分化

*黑龍江省森林工業總局科技計劃資助項目（sgzjQ2014001）

酸漿（Physali alkekengi var.franchetii）別名紅姑娘，為茄科酸漿屬變種植物，1年或多年生草本［1-2］。果實成熟時呈橙紅色，可直接采摘做干花，也可生食，味微酸，漿果外包圍有膨大宿萼，果實富含維生素及鈣、鎂、硼、鋅、硒、鍺等多種對人體有益的營養元素［3-5］。近年來，酸漿市場需求量正逐步攀升，在食品、醫藥產業中前景可觀，具有巨大的潛在開發價值。酸漿野生資源良莠不齊、染病率較高，而對酸漿無性繁育技術方面的研究不僅可以降低染菌率、提高產量、保持其優良性狀，而且可為工廠化育苗及大規模生產打下基礎。本試驗通過對酸漿種子進行變溫處理，同時促其萌發形成子葉，再通過子葉誘導分化形成分化芽，可在較短的時間內獲得大量商品苗，并開辟了一條無性繁殖的新路徑。

1試驗材料和方法

1.1不同處理對種子萌發的影響

1.1.1變溫處理對種子萌發率的影響

酸漿種子種皮較硬，不易萌發，因此在進行組織培養或播種繁殖時均需對種子進行處理，通過變溫處理及浸泡燙種處理篩選出適宜種子萌發的方法，提高組織培養及大田播種中種子的萌發率。

試驗選取當年無污染成熟的種子，將10月中旬下霜之后的果實放置-15℃冰箱內冷凍24h，取出后置室溫（20℃）解凍，如此反復3次；再剝去果皮果肉，用去污粉搓洗種子，盡量搓去種皮表面的果肉及粘液，然后用流水沖洗多次；將不完整及干癟的種子剔除。試驗以不經冷凍處理的種子做對照。

1.1.2不同浸泡處理對種子萌發率的影響

先用60℃開水燙種，直至水溫冷卻，洗凈其種皮外的粘液，將洗好的種子放入無菌水或0.1mg/L赤霉素中浸泡24～72h（表1），將其種皮軟化，軟化后將種子用潮濕的紗布包好放入培養皿中，25℃恒溫箱內保存，每隔24h用20℃左右溫水沖洗1次，直至萌發為止。期間每隔10h換1次水，促其萌發。

表1　種子浸泡時間

1.2培養基的篩選

將變溫處理好的種子用漂白粉洗凈后放入超凈臺上，倒入適量75％酒精消毒8s，立即放入無菌水中沖洗，然后放入1％升汞溶液中滅菌8 min，無菌水沖洗4～5遍，無菌濾紙吸干，備用。

1.2.1誘導種子發芽培養基的篩選

將備好的種子放入誘導種子發芽培養基（MS+蔗糖30g/L+瓊脂7g/L）中，并加入不同的激素（表2）進行暗培養，每瓶10～15粒，待種臍露白后轉入光下培養。

表2　誘導種子發芽培養基　mg/L

1.2.2誘導子葉再分化培養基的篩選

暗培養7天后種臍露白轉入光照培養，光源采用日光燈，培養室內白天溫度為24～28℃，照明時間12～14h，光照強度1 500～1 800 lx，濕度50％～60％。當子葉長成1cm高時剪下切成0.5cm×0.5cm的小塊，接種于培養基J1～J4上進行光照培養（表3），蔗糖30g/L，瓊脂7g/L。

表3　誘導不定芽培養基　mg/L

1.3生根培養

將不定芽切成2.0cm～3.0cm長的小段，接入生根培養基MS+NAA（0.5mg/L）上生根。

2試驗結果和分析

2.1不同處理對種子萌發的影響

2.1.1變溫處理對種子萌發的影響

將變溫處理與未處理的種子暗培養7天，對酸漿種子露白數進行調查，發現經過變溫處理的種子更易發芽（圖1），這可能與酸漿種子休眠特性有關，通過變溫處理打破種子休眠，從而促進種子快速萌發。

2.1.2浸泡燙種處理對種子萌發的影響

據報道，酸漿果實的汁液含有抑致種子發芽的物質，而通過開水燙種及洗種處理，洗去種皮外的粘性物質，將有利于種子發芽，因此，本試驗采用變溫處理的種子進行不同浸泡處理的誘導試驗。隨著無菌水與赤霉素浸泡時間的延長，發芽率也隨之增大（表4、圖2、圖3），48h與24h差異較顯著，48h與72h差異不明顯，當浸泡72h時達到最高；同時用赤霉素浸泡種子的發芽率明顯高于無菌水，在72h時達到最高78％。浸泡不僅可將種皮外抑制種子萌芽的物質去除，還可以使酸漿種子的種皮軟化，破除種子的硬實特性，促進種子萌芽。但若超過72h，發芽率將明顯降低。因此在大田播種前應對種子進行燙種處理，并用0.1mg/L的赤霉素浸泡48～72h，可顯著提高種子的萌發率。

表4　不同浸泡處理對種子發芽率的影響

圖1　變溫處理對發芽率的影響

圖2　不同浸泡處理的種臍露白時間

圖3　不同浸泡處理的發芽率

2.2誘導分化培養基的篩選

2.2.1誘導種子發芽培養基的篩選

在暗培養處理7天后，F3培養基里的種子在種臍處裂開，長出胚結構，露出子葉、胚軸，子葉慢慢展開變大；F1培養基中未見分化跡象，F2培養基則在15天時出現分化，這可能與6-BA、GA3的用量有關，說明種子的分化需要有適當的生長調節物質，單純使用6-BA并不能使種子發生分化，當加入一定量的GA3時，可促進種子的萌芽，因此F3培養基為最適種子萌發培養基。

2.2.2誘導子葉再分化培養基的篩選

光培養7天后，4種培養基上子葉均開始膨大彎曲，陸續產生愈傷組織及綠色的芽點，再過7天時愈傷組織分化可見3～5片葉芽，長勢健壯，葉片翠綠；其中以培養基J3上產生的分化葉最多、分化率最高，達95％，且能形成大量健壯的不定芽，有利于快速繁殖。J1、J2、J4號培養基較次之，其中J4號培養基的分化苗長勢較弱，呈玻璃化徒長現象（表5）。說明WPM培養基不適宜對酸漿進行分化及壯苗培養。

表5　不同培養基對子葉再分化的影響

2.3生根培養及移栽

將不定芽剪成2～3cm長，接入生根培養基MS+NAA（0.5mg/L）上，10天后生根率達到100％。再繼續培養10天，待不定芽全部長出白色且粗壯的根系后，進行馴化移栽。首先在培養室將封口膜打開煉苗3天，然后取出，將植株根部洗凈，移栽到營養缽中，覆膜保濕，大約1周后，發出新葉，去掉覆膜，移栽成活率達97％。

3結論

3.1最佳的取材時間為10月中旬下霜之后，在對種子進行組織培養誘導分化試驗中，首先要通過-15℃及20℃室溫的變溫處理，反復3次，打破種子的休眠，從而提高種子的發芽率。

3.2大田播種需通過燙種浸泡處理，選擇最適宜的浸泡溶液GA3（0.1mg/L），浸泡時間48～72h促進種子萌發。最適宜的誘導種子發芽培養基為F3，在啟動時間、污染率和分化率等方面都優于F1、F2。最適宜的誘導子葉再分化的培養基為J3，在展葉時間、增殖葉數、分化率、長勢等各方面都優于其他培養基。

參考文獻

［1］中國科學院《中國植物志》編委會.中國植物志［M］.北京：科學出版社，1980.

［2］栗東霞.冬春日光溫室酸漿栽培技術［J］.現代農業科技，2007（12）：34-36.

［3］王洪成.酸漿優質豐產栽培模式及其利用價值的研究［J］.黑龍江農業科學，2007（3）：65-66.

［4］趙金鳳，蔡龍，張旨安.酸漿栽培技術［J］.現代化農業，2006（5）：14.

［5］王家東，王榮榮.酸漿開發利用研究的進展［J］.農技服務，2007，24（11）：109-112.

（責任編輯：張亞楠）

Test of P.alkekengi var.franchetii Seeds Induced Differentiation

WANGDan
（Landscape Department of Heilongjiang Academy of Forestry Institute，Harbin Heilongjiang 150081）

AbstractUsing MS as basic culture medium，adding different kinds and different concentrations of plant hormones，the temperature of freezing treatment seeds，no pollution will be seeds for tissue culture experiment，induced germination and differentiation，and screening of seeds is more suitable for the differentiation inducing medium.

Key wordsP.alkekengi var.franchetii；Seed；Differentiation

中圖分類號：S665.9，S602.2

文獻標識碼：A

文章編號：1001-9499（2016）03-0014-03

作者簡介：第1王丹（1982-），女，碩士，助理研究員，主要從事園林育種研究。

收稿日期：2016-02-17