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微囊藻群體形成影響因子及機理

2016-04-10 16:29:32靜李根保
水生生物學報 2016年2期
關鍵詞:研究

董 靜李根保

(1. 河南師范大學水產學院, 新鄉 453007; 2. 中國科學院水生生物研究所, 淡水生態與生物技術國家重點實驗室, 武漢 430072)

綜述

微囊藻群體形成影響因子及機理

董 靜1李根保2

(1. 河南師范大學水產學院, 新鄉 453007; 2. 中國科學院水生生物研究所, 淡水生態與生物技術國家重點實驗室, 武漢 430072)

富營養化導致的湖泊、水庫藍藻水華帶來了一系列環境和生態問題。微囊藻群體形成, 在水體表面的聚集是形成水華的重要策略之一。微囊藻群體形成有效抵御了草食性動物攝食、病毒、細菌的侵害, 耐受不良環境因子(紫外輻射、高光強、重金屬等)能力顯著增強。文章探討了野外微囊藻群體占優勢的機制并綜述了影響微囊藻群體形成的外源因子及作用機理, 包括非生物因子(營養、溫度、光照、重金屬、微囊藻毒素、乙醛酸)、生物因子(草食性動物、細菌、魚類、藻類)。基于現有研究, 本綜述還對未來研究進行展望:(1)非生物因子與生物因子協同效應對藻類形態影響研究; (2)人類活動對浮游藻類形態及動態的影響研究;(3)藻類形態對沉水植物的響應在未來淡水生態系統修復中的應用; (4)促進藻類群體形成的胞外多糖分泌在未來工業生產中的作用。

藍藻水華; 微囊藻; 群體形成; 非生物因子; 生物因子

由于水體富營養化, 世界范圍內的湖泊、池塘、河流和水庫正承受著藍藻水華威脅: 水體溶氧量的降低、物種多樣性降低、異味毒素的產生以及水體飲用價值、景觀價值、生態服務功能的下降。在野外水體中, 水華優勢種多以群體形態存在,以我國淺水湖泊太湖、巢湖、滇池為例, 微囊藻聚集成大個體群體, 形成有害藍藻水華。然而在室內長期培養后, 微囊藻主要以單細胞或者成對細胞形態存在[1]。群體特征的消失表明: 在室內培養過程中, 促進群體形成的因子在培養基中不存在。環境條件的變化導致了藻類形態的改變, 因此, 要了解這種形態改變的機制, 也就需要了解外界各種環境因素對其影響。本文綜述了群體形態在藍藻水華形成方面扮演的重要角色, 并探討了影響微囊藻群體形成的外源因子及其作用機理。

1 野外微囊藻群體占優勢機制

藍藻群體形態不僅有利于抵擋浮游動物攝食,免受病毒、細菌侵害[2], 還具有一些其他生態優勢:(1)群體大小與藻類晝夜遷移速率呈正相關, 晝夜遷移或浮力調控使得藍藻能夠調節自身在水體中的最優位置, 從而利用光照或者營養[3]; (2)群體微囊藻(Microcystis sp.)吸收磷的效率顯著高于單細胞[4];(3)群體微囊藻抗紫外輻射、抗高光強、抗化學物質(CuSO4、綠霉素、直鏈烷基苯磺酸)脅迫能力明顯高于單細胞[5—8]。

1.1 具有光保護效應

光抑制作用是浮游藻類保護光合器官的策略之一。太湖微囊藻水華期間, 群體形成對微囊藻細胞具有光保護效應, 能夠降低高光強下的光抑制[9]。藍藻具有3種抵抗光抑制的機制[10]。一是藍藻能夠介導細胞色素氧化酶光合作用, 具有另一種電子傳遞通道。二是群體藍藻能夠反射高光強。三是藍藻細胞葉綠素配額誘導色素自篩選。

有研究發現群體微囊藻的最大電子傳遞速率(ETRmax)、半飽和光強(Ik)顯著高于單細胞, 表明群體光合能力高于單細胞, 尤其是在高光強下。群體還能夠有效抵抗黑暗損失和強光強, 因為群體最大熒光效率(Fv/Fm)和非光化學淬滅(NPQ)顯著高于單細胞。NPQ可能是避免光破壞的重要機制[11]。

1.2 有利于毒素含量的增加

群體形成促進藻類分泌毒素。相較于單細胞,大型群體微囊藻分泌的微囊藻毒素含量以及mcy B+基因比例顯著提高[12]。這與塔瑪亞歷山大藻Alexandrium tatmarensezai 類似, 毒素分泌增加可能也是抵擋攝食的有效策略之一[13]。

1.3 抵御攝食

藻類群體形成, 使得攝食者萼花臂尾輪蟲Brachionus calyciflorus、大型溞Daphnia magna、長額象鼻溞Bosmina longirostris和棘爪網紋蚤Ceriodaphnia reticulata的攝食率顯著降低[14]。

2 微囊藻群體形成機制研究

許多浮游藻類存在表型可塑性(Phenotypic plasticity), 即一種基因型在不同的環境條件下呈現出多種表型的現象。浮游藻類可能產生不同的表型來應對外界環境條件的變化, 改變自身形態形成群體或集聚是最常見的一種形式。

藻類形成群體有兩種機制: 一是在繁殖過程中, 子代細胞沒有從母細胞里面脫離下來; 另一個是單細胞的集聚。有研究表明太湖銅綠微囊藻群體以及柵藻群體形成, 并不是單細胞的黏連, 而是屬于第一種機制[15,16]。在母細胞細胞壁里, 母細胞分裂成大量單個細胞, 它們或是以單細胞形式釋放出來或是以群體形式存在。群體里的細胞數取決于親本細胞原生質含量必須有足夠的原生質才能滿足細胞分裂的需要, 因此群體形成的前提是藻類的正常生長[17]。

有很多非生物因子和生物因子在影響浮游藻類形態方面扮演重要角色, 尤其是群體和單細胞形態的轉變。盡管有很多關于微囊藻群體形成機制的研究, 但是仍然沒有足夠的數據來完全解釋群體形成的原因。胞外多糖(EPS)由C、H、O構成, 是構成群體微囊藻膠被的主要成分, 在藻類聚集方面扮演重要角色, 有研究表明, 在群體和單個銅綠微囊藻中, 其單糖含量沒有顯著差異, 群體微囊藻的黏連主要是由于多糖總含量的增加, 而不是多糖成分的改變。多糖含量與很多因子相關, 這些因子可能通過影響多糖分泌進而影響藻類的群體形成。

2.1 非生物因子

營養 在營養充足的情況下, 藻類光合產物轉換成蛋白質、核酸以及ATP用于細胞分裂、藻類生長和正常代謝活動, 在這種情況下, EPS積累減少, 限制生長的群體形態減少[18]。但是當營養不足時, 微囊藻分泌胞外多糖含量增加, 例如氮(N)或者磷(P)饑餓能夠促進EPS的合成, 從而促進藻類群體形成[19]。

除微囊藻外, 研究表明高C:N或C:P條件下, 即氮不足或磷缺乏時, 有利于衣藻Chlamydomonas mexicana[20]、藍桿藻Cyanothece sp.[21]、魚腥藻Anabaena sp.[22]、新月柱鞘藻Cylindrotheca closterium[23]以及具鞘微鞘藻Microcoleus vaginatus[24]EPS分泌的增加。因為氮不足或磷缺乏時, 藻類光合作用固定的有機物主要以不含氮磷的碳水化合物形式存在, 胞內碳水化合物的過量累積導致其逐步向胞外轉移釋放, 使得胞外多糖EPS含量顯著升高, 從而有利于藻類群體形成。

目前關于氮或磷對藻類形態影響還存在一定的爭議。有學者認為席藻Phormidium多糖含量對磷濃度沒有響應[25], 同樣Pereira等[26]發現P濃度的增加對藻類胞外聚合物含量影響很小。近期研究又發現, 葛仙米Nostoc sphaeroides在50和250 μmol/ L磷培養下, 62%—73%形成了群體, 但是在0.5和5 μmol/L磷培養下, 只有10%—15%的葛仙米形成群體[27], 這又表明較高磷濃度利于藻類群體形成。此外, Otero和Vincenzini[19]、Suresh Kumar等[28]研究認為氮濃度的增加能夠促進藻類EPS的合成。

通過已有研究結果可以看出藍藻多糖產生對外界營養水平的響應具有藻株依賴性, 可能是不同藻株產生多糖的生理機制不同。此外, 究竟在藻類單細胞-群體形態轉變過程中, 營養閾值在怎樣的一個范圍內是值得今后密切關注的。因為這對研究藍藻水華生理生態學特征具有重要的意義。未來的水體富營養化究竟對藻類形態是一個怎樣的影響?通過相關研究能夠為控制藍藻水華提供一定的科學參考, 例如我們可以通過調控營養水平改變微囊藻形態, 讓野外水體中微囊藻由群體形態慢慢裂解, 從而破壞其聚集優勢。

溫度 Aaronson[29]認為低溫能夠增加單位細胞碳水化合物含量。胞內積累的過量多糖可能逐漸釋放到胞外, 導致胞外多糖含量增加(Extracellular polysaccharides)。目前關于溫度對藻類形態影響研究還相對較少, 有研究認為低溫有利于柵藻、海洋硅藻、Bellerochea、棕囊藻P. globosaand和P. antarctica群體形成, 海洋優勢種類在高溫下黏液分泌減少、群體比例降低[30]。與營養影響相似,溫度對藻類形態影響也存在爭議。Moreno等[22]研究發現魚腥藻Anabaena sp.胞外多糖含量隨溫度升高顯著增加。

迄今為止, 溫度對微囊藻形態影響研究還未見報道。楊州和李佳佳[31]推測溫度可能通過影響胞外多糖的分泌從而在促進微囊藻群體形成方面扮演著重要角色。面對氣候變暖的巨大威脅, 此方面的研究也是必不可少的。通過溫度對微囊藻形態影響研究, 能夠進一步為微囊藻水華的控制提供科學依據。

光照 在低光強下, 浮游藻類細胞主要合成蛋白質[32], 高光強能夠促進碳水化合物的積累, 從而促進藻類群體形成[19,33]。肖艷[34]采用梯度光強[0、10、25、80、120和200 μmol/(m2·s)]培養6株微囊藻, 結果表明隨著光強的增加, 6種微囊藻群體大小顯著增加。除了微囊藻, 研究報道隨著光強的增加, 葛仙米(Nostoc sphaeroides)、柵藻Scenedesmus、顆粒直鏈藻Melosira granulata、彎角藻Eucampia群體形成顯著增加[35—38]。這些可能是高光強下藻類細胞快速分裂造成的。光強對浮游藻類群體建成影響在野外水體中也得到了證實, Naselli-Flores等[39]指出在富營養化水體中, 光照是浮游藻類形成聚集體的重要因子; Naselli-Flores和Barone[40]的研究表明, 在地中海水庫的不同水層中,藻類形態與獲得的光強有重要關系。這表明光強對浮游藻類群體形成具有重要影響。

除了高光強影響下碳水化合物的積累, 細胞疏水性在微囊藻單細胞-群體形態轉變過程中也扮演重要角色, 單細胞具有親水性, 群體轉向單細胞時,細胞疏水性顯著降低。Yang等[41]認為高光強能夠降低藻類細胞疏水性, 從而影響其群體形成。群體微囊藻比單細胞具有更厚的多糖外被[1], 微囊藻單細胞低疏水性可能與薄的多糖外被有關[42]。

重金屬 重金屬例如鉛、鎘、銅、鋅是微囊藻水華底泥表層的常見污染物, 它們能夠通過沉積物的再懸浮進入水柱中[43]。銅綠微囊藻會持續承受重金屬脅迫[44], 促進EPS的合成。Bi等[45]研究發現高濃度Pb(Ⅱ)(20.0和40.0 mg/L)處理銅綠微囊藻能夠顯著提高藻類可溶性胞外多糖含量和結合態胞外多糖含量, 促進中小型群體形成, 而且高濃度更顯著。這表明重金屬可能在自然水體中銅綠微囊藻水華形成過程中扮演著重要角色。除微囊藻外, 重金屬在促進其他藍藻EPS分泌方面也具有重要作用, Sharma等[46]研究表明Cr(VI)積累增加了黏球藻Gloeocapsa calcarea 和點狀念珠藻Nostoc punctiforme EPS含量; 集胞藻Synechocystis sp.在Cd(Ⅱ)處理后EPS含量也顯著增加[47]。

微囊藻毒素 在藍藻水華發生的水體, 草食性動物減少或消失, 這部分可能是由于毒素的影響。有研究表明銅綠微囊藻能夠分泌毒素抵抗枝角類的攝食[48], 而棕鞭毛蟲能夠降解毒素, 所以銅綠微囊藻必須進化出其他的防御策略——群體形成, 從而抵御棕鞭毛蟲的攝食。

一個有趣的現象是: 一方面微囊藻群體形成有利于毒素基因表達和毒素的分泌[12], 而另一方面在微囊藻毒素影響下, 又進一步促進EPS的分泌、微囊藻群體形成。Sedmak和Eler?ek[49]發現3種微囊藻毒素能夠促進微囊藻群體形成, 細胞生物體積、光合色素含量、胞外多糖增加。分泌毒素和群體形態協同作用使得微囊藻在水體中持續占優勢。

乙醛酸 乙醛酸, 促進碳代謝的化學物質,有利于藻類多糖含量增加, 這在黏合細胞聚集形成群體方面扮演著重要角色。乙醛酸能夠誘導一些藍藻多糖含量的增加, 例如魚腥藻Anabaena cylindrica[50]、Cyanospira capsulate[51]在添加乙醛酸處理時, 導致細胞內多糖聚集以及可溶性胞外多糖分泌, 總的多糖含量隨著乙醛酸濃度增加而升高。同樣, 乙醛酸處理能夠促進柵藻群體形成, 群體大小與多糖含量成正相關[52]。

2.2 生物因子

草食性動物 環境因子影響浮游藻類的表型, 藻類面臨的最危險環境是草食性動物的攝食。浮游藻類并不是毫無抵御能力、輕易被攝食的食物顆粒。在自然水體中, 草食性動物和微囊藻通常是共存的, 它們可能也是誘導微囊藻群體形成的重要因子[53]。藻類降低被捕食風險的有效方式之一是群體大小的增加, 因為淡水浮游動物主要以2—30 μm大小的藻類為食[54]。

Ha 等[55]研究表明枝角類多刺裸腹蚤(Moina macrocopa)攝食銅綠微囊藻(Microcystis aeruginosa)時, 能誘導其群體形成。原生動物棕鞭毛蟲(Ochromonas sp.)誘導銅綠微囊藻大型群體形成, 群體形成后單個細胞的胞外多糖(EPS)以及偽空泡顯著增加, 但是單糖含量并沒有顯著變化[1]。滴蟲Monas guttula能有效誘導微囊藻群體形成[56]。楊桂軍等[57]發現棘爪網紋蚤Ceriodaphnia cornuta 攝食銅綠微囊藻時, 也能誘導其群體形成。

除微囊藻外, 其他藻類在草食性動物誘導下的群體響應也得到了廣泛研究。例如藻青蛋白豐富的雙色藻Cyanobium sp.在棕鞭毛蟲攝食壓力下, 由單細胞形態聚集成40 mm的微小群體[58]; 小球藻Chlorella vulgaris在棕鞭毛蟲Ochromonas vallescia誘導下形成8-細胞群體[59]; 衣藻Chlamydomonas reinhardtii在萼花臂尾輪蟲Brachionus calyciflorus誘導下形成四集藻形態[60]; 枝角類大型溞Daphnia能誘導空星藻Coelastrum sp.[61]、集星藻Actinastrum sp.[62]、柵藻Scenedesmus群體形成[63]。

目前關于草食性動物誘導藻類群體形成機理尚不完全明確, 然而草食性動物分泌的化學信息物質(Infochemical)-種間激素-Kairomone可能是維持藻類群體形態的關鍵因子之一。Von Elert和Franck[64]研究認為誘導柵藻群體形成的化學物質是非揮發性的、具有熱穩定性的低分子量有機質,活性部分是中等親脂性的烯羧酸。Lürling和Beekman[65]認為浮游動物分泌的化學活性物質與普遍使用的陰離子表面活性劑相似(FFD-6、介質十二烷基硫酸鹽), 能誘導斜生柵藻群體形成。Van Holthoon等[66]首次嘗試分析了大型溞分泌的化學信息物質。Yasumoto 等通過液相層析法從10 kg大型溞樣品中分離出了8種硫代脂肪酸, 在低濃度(<1 ng/ mL)的條件下就具有生物活性。柵藻對這8種硫代脂肪酸均具有響應, 該類化學信息物質的兩性分子特征對其活性具有重要作用, 然而迄今為止, 沒有證據證明這些物質是由活體大型溞分泌的,而且與小型捕食者例如輪蟲分泌的硫代脂肪酸還未進行對比[67,68]。 此外, 大型溞分泌的誘導柵藻群體形成的物質是否對其他柵藻有相同效應, 而且其他溞類或者其他草食性動物是否會分泌相同或者相似的群體誘導物質尚不清楚, 在微囊藻群體形成過程中扮演重要角色的化學信息物質還有待進一步分析。

細菌 細菌和有害藻類之間的相互作用對闡明有害藻類水華動態具有重要意義。有研究表明異養型細菌群落在微囊藻水華發生扮演重要角色, 紫桿菌屬Porphyrobacter、黃桿菌屬Flavobacteriaceae、黃色桿菌Xanthobacter autotrophicus可能是誘導群體形成的種類[89,70]。在有菌培養下, 銅綠微囊藻ETRmax增加說明異養細菌對銅綠微囊藻的PSⅡ有促進作用, 因而細胞聚集后, 銅綠微囊藻光合活性增強, 解釋了群體微囊藻光合參數[4]、藻類生長率、Chl.a含量的增加, 這些生理特征使得微囊藻能夠在水體中占優勢。

Shen等[70]研究發現在群體微囊藻細胞中, 可溶性胞外多糖含量濃度增加, 表明異養細菌群落在細胞聚集和黏液形成方面扮演重要角色。群體銅綠微囊藻光合活性增強, 因此光合產物(碳水化合物含量)增加, 這與Fogg[71]結果一致, 快速生長的浮游藻類能將同化的光合產物分泌到水環境中。

魚類 濾食性硬骨魚類潘氏細鯽Tanichthys albonubes、青鳉Oryzias latipes濾液也能誘導銅綠微囊藻群體形成[69]。

藻類 在淡水生態系統中, 信息流不僅存在于攝食者與被攝食者之間, 藻類-藻類之間的相互作用也是信息化學活性物質分泌的重要誘導力之一。

以往研究主要關注的藻類相互作用是對生長(生物量、光合活性)的影響, 例如柱孢藻Cylindrospermopsis raciborskii[72]、水華魚腥藻Anabaena flosaquae[73]、常絲藻Tychonema bourrellyi[74]、斜生柵藻Scenedesmus obliquus[75]能分泌活性物質抑制銅綠微囊藻生長。然而銅綠微囊藻濾液能夠促進斜生柵藻[75]、水華魚腥藻[73]的生長。發揮作用的活性物質包括硫化物、萘系衍生物、雪松烯衍生品、醌類、酚類衍生物、聯苯衍生物、蒽衍生物以及鄰苯二甲酸酯類[73]。

對于藻類-藻類相互作用誘導的形態改變也有報道, 但是相關研究還幾乎處于空白。僅有兩個報道, Mello等[72]通過模擬實驗表明柱孢藻Cylindrospermopsis raciborskii 能誘導銅綠微囊藻群體形成;絲狀綠藻滸苔Uronema confervicolum (Ulotrichales)能誘導四尾柵藻 Desmodesmus quadrispina (Chlorococcales) 群體形成[76], 隨著四尾柵藻群體形成, 沉降率增加, 減小了對滸苔的遮擋。藻類相互作用誘導的形態改變也是減少競爭的生態策略之一。關于此方面的研究還有待進一步開展, 從而為自然水體藻類群體形成提供依據。

3 討論與展望

世界范圍內富營養淡水水體中藍藻水華頻繁發生, 關于藍藻水華形成的生態生理特征以及占優勢的機制得到了廣泛的研究。具有異形胞的種類例如魚腥藻、束絲藻、柱胞藻能夠固定N2[77]。因此認為, 它們的優勢在于能夠固定N2, 一些不能固定N2的種類, 例如微囊藻, 能夠快速吸收可溶性的無機氮[78], 高效的氮吸收能力, 以及強大的磷儲存能力[79]解釋了為什么藍藻能夠在N限制的水體占優勢。近年來, 越來越多的研究發現微囊藻群體形態在藻類聚集形成水華方面扮演重要角色, 正如棕囊藻能在海洋中占優勢歸功于它們能夠形成群體, 群體形成使得藻類抵御攝食、病毒、細菌、抗脅迫能力增強。以我國淺水湖泊太湖、巢湖、滇池為例, 微囊藻聚集成大個體群體, 形成有害藍藻水華。藍藻水華的暴發給湖泊生態系統帶來嚴重的危害。然而在室內培養過程中, 群體特征逐漸消失,因而推測在自然水體中可能存在誘導群體形成的因子。誘導微囊藻群體形成的環境因子研究得到了廣泛關注, 包括上述的溫度、光照、營養、攝食、細菌可能通過影響微囊藻EPS合成和分泌從而誘導藻類群體形成。

3.1 野外綜合環境因子誘導群體形成

室內誘導的微囊藻群體與野外水體中有很大的不同, 無論是在大小還是形狀[80], 例如棕鞭毛蟲誘導的銅綠微囊藻群體僅僅是由幾個或者幾十個銅綠微囊藻細胞構成的, 遠遠小于自然水體中銅綠微囊藻細胞群體[80]。這說明棕鞭毛蟲誘導的群體形成是非常微弱的。野外環境中的各種非生物因子, 例如溫度、光照、營養和風力, 在銅綠微囊藻群體形成方面可能也扮演重要角色[80]。

另外, 在自然條件下, 食草性動物的種群密度變化很大, 使得它們分泌的化學信號物質的濃度變化也是很大的, 生物降解使得化學信號隨著時間的推移而減弱。因而野外大型藻類群體的維持還受到其他環境因子的影響, 進一步說明藻類群體形成可能是非生物因子和生物因子協同效應的結

果[15, 81]。

迄今為止, 很少有研究報道生物因子和非生物因子是如何相互作用影響浮游藻類形態的[82,83]。非生物因子對藻類的防御型表達可能具有重要影響, 這些因子如何調節物種間相互作用對研究浮游生物群落生態學具有重要意義。Wang等[84]研究發現低氮水平下, 棕鞭毛蟲對銅綠微囊藻群體形成影響增強。該結果對預測野外水體中攝食和營養濃度對銅綠微囊藻群體形成影響有重要意義。

淡水生態系統正承受著富營養化和氣候變化的雙重影響, 因而研究非生物因子和生物信息物質的相互作用對預測環境變化如何影響浮游生物動態具有重要意義。群體形成后, 氮或磷的吸收如何受到影響需要進一步研究, 該研究對了解人類活動對水生生態系統影響具有重要意義。

此外, 目前關于環境因子(溫度、光照、營養、攝食、細菌)誘導的藻類群體形成主要是通過一對一的實驗。藻類形態可塑性應該朝向另一個新階段發展, 應該從群落水平以及整個生態系統水平進行研究[142]。其他環境因子例如pH、溶解氧等對群體形成影響研究也是必要的。

3.2 人類活動對藻類形態影響

除草劑廣泛用于農業生產中, 在表層水體中往往能監測到其存在[85]。Lürling[80]認為農業生產中添加的除草劑賽克津能夠抑制斜生柵藻Scenedesmus obliquus從單細胞向群體的轉變。單細胞比例的增加顯著提高了柵藻被攝食者攝食的機率。

人類活動造成的溫室氣體排放增加, 使得全球氣溫升高。模型預測表明, 至2017—2100年, 全球平均溫度將升高1.5—5.8℃, 導致海面溫度升高[87],從而改變浮游藻類動態。研究表明: 溫度升高能夠使得P. globosa群體變小或沒有群體形成[88], 然而藻類總生物量顯著升高。低溫促進P. globosaand和P. antarctica群體形成, 溫度的升高能降低群體形成和黏液分泌, 海面溫度進一步升高可能顯著改變以棕囊藻占優勢的水生生態系統的生態及生物地理化學循環, 能進一步導致群體降解[88]。

目前, 關于人類活動造成的農藥排放、氣候變暖、重金屬污染、富營養化對淡水生態系統浮游藻類形態影響研究還罕見報道。尤其是水華優勢種類—微囊藻有怎樣的響應值得密切關注和廣泛研究。這些研究將對藍藻水華控制提供進一步的科學參考。

3.3 生態修復

在野外調查中發現, 高生物多樣性水生植物存在情況下, 有害浮游藻類(銅綠微囊藻)往往生物量較低[89]。迄今為止, 已經有大量研究報道表明沉水植物例如金魚藻(Ceraophyllum demersum)[90]、苦草(Vallisneria gigantea)、大茨藻(Najas marina)、輪藻(Chara sp.)、狐尾藻(Myriophyllum spicatum)[91]、伊樂藻(Elodea sp.)[92]能夠顯著抑制藍藻, 尤其是抑制微囊藻的生長及生物量的增加。正因為此, 沉水植物在水體生態修復中扮演著極其重要的角色。

我國淺水湖泊滇池沉水植物占優勢時期, 浮游藻類以柵藻、盤星藻、空星藻等綠藻門種類為主[93]。有學者認為水生植物顯著提高附著浮游動物生物多樣性和生物量[94]。那么綠藻是如何抵御浮游動物的攝食, 從而維持其在水生植物占優勢水體的豐富度呢?Gross等[95]提出, 除了藻類生物量,水生植物分泌的活性物質還可能影響藻類細胞形態。Mulderij等[96]研究認為, 水劍葉Stratiotes aloides 培養液能夠促進斜生柵藻群體形成, 這是首次報道的沉水植物誘導的柵藻群體形成研究。隨后, 本文作者通過金魚藻-斜生柵藻共培養以及濾液培養實驗證明, 金魚藻也能夠分泌活性物質促進斜生柵藻[97]。沉水植物可能通過誘導綠藻群體形成, 一方面提高了綠藻在水體中抵抗攝食的能力;另一方面群體形成使得綠藻沉降水底比例增加, 緩解了與沉水植物之間的競爭; 從而維持了其在自然水體中的生物量和優勢度。

水生植物分泌的化感活性物質對浮游藻類形態影響研究能夠補充生物間相互作用內容。目前關于水生植物對藻類形態影響研究還幾乎處于空白。根據藍藻和綠藻對沉水植物的不同響應機制能夠為水體藻類群落結構調控及水生態修復提供重要科學依據。

3.4 群體形成經濟與生態價值

從20世紀50年代早期至今, 發現100多種藍藻包括銅綠微囊藻, 能夠分泌胞外多糖(EPS)[98—99]。藍藻的胞外多糖分為兩大類: 結合態胞外多糖(bEPS)

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INFLUENCING FACTORS AND MECHANISMS ON COLONY FORMATION OF MICROCYSTIS: A REVIEW

DONG Jing1and LI Gen-Bao2
(1. College of Fisheries, Henan Normal University, Xinxiang 453007, China; 2. State Key Laboratory of Freshwater Ecology and Biotechnology, Institute of Hydrobiology, Chinese Academy of Sciences, Wuhan 430072, China)

Cyanobacterial blooms in lakes and reservoirs caused by eutrophication coming with a series of environmental and ecological problems. Colony formation of Microcystis and aggregation at the surface of water column is one of the most important factors of forming cyanobacterial blooms. Compared with single-cell, Microcystis colonies have higher tolerance ability to adverse conditions (ultraviolet radiation, high light, heavy metal and so on) and are more resistance to predation, virus and bacteria, and the potential mechanisms were discussed in this review article. We also reviewed the recent findings of affecting factors on phytoplankton colony formation including abiotic factors (nutrition,temperature, light, heavy metal, microcystin, and glyoxylic acid), and biotic factors (herbivore, bacteria, fish, and algae). We also made the prospect for future researches: (1) Synergistic effects of abiotic-biotic factors on algae morphology; (2) Influences of human activities on phytoplankton morphology and community structure; (3) Applications of the responses of phytoplankton morphology to submerged plants in future aquatic ecosystems; (4) The application of exopolysaccharide secretion by algae in future industrial production.

Cyanobacterial blooms; Microcystis; Colony formation; Abiotic factors; Biotic factors

10.7541/2016.50

Q934

A

1000-3207(2016)02-0378-10

2015-04-14;

2015-09-07

國家自然科學基金青年基金項目(31500380)資助 [Supported by the National Natural Science Fund (31500380)]

董靜(1988—), 女, 河南焦作人; 博士, 講師; 主要從事藻類環境生物學研究。E-mail: happydj111@163.com

李根保, E-mail: ligb@ihb.ac.cn

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